Summary

HiPSC elde edilen kalp kası yamalar implantasyonu eskiden şiling şimdi domuz modelinde miyokardiyal yaralanma sonra

Published: March 18, 2019
doi:

Summary

Burada insan IPS-hücre cardiomyocytes eskiden şiling şimdi domuz modelinde türetilmiş bir kalp kası yama implantasyonu ve ardından sol ventrikül cryoinjury indüksiyon için bir iletişim kuralı mevcut.

Abstract

Yetişkin memeliler kalbinde sınırlı yenilenme kapasitesi nedeniyle, miyokard infarktüsü, cardiomyocytes geri dönüşü olmayan bir kaybına sonuçlanır. Bu kaybı kalp kası alakalı miktarda kütle kalp yetmezliği neden olabilir. Kalp transplantasyonu yanı sıra, son aşama kalp yetmezliği için iyileştirici tedavi seçeneği yoktur. Organ bağışı yetersizliği dönemlerinde, organ bağımsız tedavi şekilleri ihtiyaç vardır. Sol Ventriküler yardımcı umut verici bir tedavi seçeneği ancak, özellikle hedef tedavi yan etkileri inme, enfeksiyonlar ve kanamalar gibi sınırlı olarak aygıtlardır. Son yıllarda kök hücre enjeksiyon, kardiyak ataları veya miyokard doku Mühendisliği dahil olmak üzere çeşitli kardiyak onarım stratejiler araştırdık. Büyük miktarda İnsan İndüklenmiş pluripotent kök hücrelerden (IPSC) elde edilen cardiomyocytes farklılaşma hücre biyolojisi son gelişmeler sağlar. Şu anda değerlendirme altında kalp onarım stratejileri yapay kalp doku nakli için biridir. Mühendislik kalp doku (EHT) bir yerli kalp doku fonksiyonel özellikleri ile üç boyutlu tüp bebek oluşturulan cardiomyocyte ağdır. HiPSC türetilen cardiomyocytes EHT-yamalar oluşturduk. Burada bir kobay hiPSC implantasyonu tarafından takip içinde sol ventrikül miyokard cryoinjury indüksiyon EHT sol Ventriküler duvarda türetilmiş için bir iletişim kuralı mevcut.

Introduction

Kalp yetmezliği olan hastalarda sayısı bizim yaşlanan nüfus artmaktadır. Son aşama kalp yetersizliği, orthotopic kalp nakli sadece iyileştirici tedavi seçeneğidir. Ancak, özellikle Avrupa ülkelerinde artan bir organ donör sıkıntısı var. Bu nedenle, alternatif tedavi seçenekleri gereklidir. Mekanik dolaşım destek son başarıları umut verici, ama özellikle uzun vadeli çalıştırmak, kanama, pompa trombozu ve bulaşıcı komplikasyonlar1gibi yan etkileri ile sınırlı.

Yetişkin insan kalbi endojen yenilenme kapasitesi son derece sınırlıdır. Bu nedenle, kardiyak rejenerasyon terapileri son aşama kalp yetmezliği hastaların2,3için bir alternatif tedavi seçeneği haline gelebilir. Hücre kök hücre tabanlı enjeksiyon veya doku Mühendisliği yaklaşımlar olmuştur dahil olmak üzere farklı teknikleri3,4,5nitelendirdi.

İnsan İndüklenmiş pluripotent kök hücreler (hiPSC), aynı zamanda insan embriyonik kök hücreleri (hESC) etkin bir şekilde kendiliğinden insan cardiomyocytes6, hangi kalp rejeneratif alanında büyük bir başarı olmuştur dayak için ayrıştırılan terapiler.

Cardiomyocytes ve mekanik ve elektrik ile yerel kalp kaplin uygun bir dizi yaşama Miyokardiyum akut miyokard infarktüsü sonrası değiştirmek için ve başarısız olan kalp fonksiyon geliştirmek için önemlidir. Kardiyak rejeneratif terapileri ile insan IP’leri türetilmiş hücre cardiomyocytes potansiyelini araştırmak için uygun araştırma modeli gereklidir. Ideal modeli düşük maliyetli olmalı ve bir insan benzeri fizyolojisi ve Elektrofizyoloji. Domuz gibi büyük hayvan modeller bu bakış açısından ideal olacaktır, ancak, bu deneylerin çok pahalıdır ve cardiomyocytes büyük miktarda sol ventrikül etkilerini görmek için cardiomyocytes uygun sayısını değiştirmek için gerekli olacak bir domuz infarktüsü modelindeki işlev.

Hücre tabanlı insan kalp rejenerasyon doğru temel biyolojik soruları cevaplamak için örneğin, hücre hayatta kalma, vaskülarizasyon ve elektrik kaplin, küçük hayvan modelleri daha uygundur. Onların Elektrofizyoloji daha çok insanlar7durumda benzeyen gibi kullanılabilir küçük hayvan modellerden, eskiden şiling şimdi domuz en yararlı, sıçanlar ve fareler, karşılaştırıldığında türüdür. Bu eskiden şiling şimdi domuz modelinde, sol ventrikül transmural cryoinjury indüklenen. Bir hafta sonra bir üç boyutlu, miyokard infarktüsü implantasyonu indüksiyon kendiliğinden kalça-hücre elde edilen cardiomyocyte yenerek yama gerçekleştirildi. Cardiomyocyte hücre survival implantasyonu sonrası 28 gün histolojik inceleme tarafından incelendi.

Protocol

Hayvan insana ilişkin Bakım Kılavuzu laboratuvar hayvanlarının ilkeleri için uygun olarak alınan, Enstitüsü ile laboratuvar hayvan kaynakları tarafından hazırlanan ve ulusal sağlık Enstitüleri tarafından yayınlandı. Tüm hayvan iletişim kuralları sorumlu yerel otorite tarafından kabul edildi (” Amt für Gesundheit und Verbraucherschutz, Hansestadt Hamburg” / hayvan iletişim kuralı # 109/16). 1. hayvan alın Ticari olarak 500-600 g ağırlığındaki kadın es…

Representative Results

Bu eskiden şiling şimdi domuz modeli hiPSC implantasyonu EHT-yamalar türetilmiş sonra kalp rejenerasyon araştırmak için uygun bir modeldir. O tekrarlanarak büyük transmural miyokard yaralanmalara yol açar. Yara izi boyutu dört hafta sonra cryoinjury Histoloji tarafından değerlendirilir. Mason trichrome boyama büyük transmural izleri (Şekil 2) ortaya koymaktadır. Yara izi boyutu çok sayıda yaralı hayvanları tekrarlanabilirlik8yüksek derecede yans?…

Discussion

Küçük hayvan modelleriyle hücre transplantasyonu yaralı kalpler9,10,11‘ giderek artan etkisi eğitim kullanılabilir. Eskiden şiling şimdi domuz manken tüm küçük hayvan yüzünden onun (Elektro) modelleri seçtik fizyolojisi bu insanların en çok benzer. Küçük hayvan modelleri basit konaklama, yönetilebilir maliyeti ve birkaç işgücünün avantajları. Fare ve sıçanlar ile karşılaştırıldığında, Gine p…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Hiçbir fon bu çalışma için kabul edildi

Materials

Ventilator (VetFlo Dual Mode) Kent Scientific
Forene abbvie 1000009819
Carprofen Zoetis 256692
Atropin Braun PZN 00648037
Buprenorphin Sigma
Metal stamp
Electric soldering iron Claytools
3-0 prolene suture Ethicon
4-0 prolene suture Ethicon 662SLH
5-0 prolene suture Ethicon 8710H
8-0 prolene suture Ethicon 8841H
Tungsten Carbide Scissor  FST No. 14568-12
Stainless sterilization Container FST No. 20890-51
Graefe Forceps FST No.11652-10
Extra fine Graefe Forceps FST No.11150-10
Forceps FST No. 11022-15
Halsted- Mosquito FST No. 13009-12
Forceps FST No.13003-10
Baby Mixter FST No. 13013-14
Needle holder (Castroviejo with Tungsten Casbide Jaws)  FST No. 12565-14
Needle Holder (Halsey) FST No. 12501-13
Alm Retractor with Blumt Teeth FST No. 17008-07
Spring Scissor FST No. 15000-00
Compress 5×5 Fink + Walter PZN 08821417
Venflon Pro Safety Becton Dickinson PZN11123964
Cautery High Temp 2" Bovie Medical Corporation 0100607151011055

References

  1. Kirklin, J. K., et al. Seventh INTERMACS annual report: 15,000 patients and counting. The Journal of heart and lung transplantation: the official publication of the International Society for Heart Transplantation. 34, 1495-1504 (2015).
  2. Soonpaa, M. H., Field, L. J. Survey of studies examining mammalian cardiomyocyte DNA synthesis. Circulation research. 83, 15-26 (1998).
  3. Shiba, Y., Hauch, K. D., Laflamme, M. A. Cardiac applications for human pluripotent stem cells. Current pharmaceutical design. 15, 2791-2806 (2009).
  4. Shiba, Y., et al. Human ES-cell-derived cardiomyocytes electrically couple and suppress arrhythmias in injured hearts. Nature. 489, 322-325 (2012).
  5. Chong, J. J., et al. Human embryonic-stem-cell-derived cardiomyocytes regenerate non-human primate hearts. Nature. 510, 273-277 (2014).
  6. Kattman, S. J., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell stem cell. 8, 228-240 (2011).
  7. Watanabe, T., Rautaharju, P. M., McDonald, T. F. Ventricular action potentials, ventricular extracellular potentials, and the ECG of guinea pig. Circulation research. 57, 362-373 (1985).
  8. Weinberger, F., et al. Cardiac repair in guinea pigs with human engineered heart tissue from induced pluripotent stem cells. Science translational medicine. 8, 363ra148 (2016).
  9. Shiba, Y., et al. Electrical Integration of Human Embryonic Stem Cell-Derived Cardiomyocytes in a Guinea Pig Chronic Infarct Model. Journal of Cardiovascular Pharmacology and Therapy. 19, 368-381 (2014).
  10. van Laake, L. W., et al. Human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes survive and mature in the mouse heart and transiently improve function after myocardial infarction. Stem cell research. 1, 9-24 (2007).
  11. Zimmermann, W. H., et al. Engineered heart tissue grafts improve systolic and diastolic function in infarcted rat hearts. Nature medicine. 12, 452-458 (2006).
  12. Johns, T. N., Olson, B. J. Experimental myocardial infarction. I. A method of coronary occlusion in small animals. Annals of surgery. 140, 675-682 (1954).
  13. van den Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: a comparison with coronary artery ligation. Heart and circulatory physiology. , H1291-H1300 (2005).
check_url/fr/58810?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Castro, L., Geertz, B., Reinsch, M., Aksehirlioglu, B., Hansen, A., Eschenhagen, T., Reichenspurner, H., Weinberger, F., Pecha, S. Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model. J. Vis. Exp. (145), e58810, doi:10.3791/58810 (2019).

View Video