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Article de méthode

Préparation de rythmiquement actifs In Vitro néonatale rongeurs tronc cérébral-moelle épinière et fine tranche

11.3K vues

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DOI :

10.3791/58870

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23 mars 2019

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Dans cet article

Résumé

Ce protocole tant visuellement communique la préparation du tronc cérébral-moelle épinière et clarifie la préparation des tranches transversale du tronc cérébral d’une façon complète étape par étape. Il a été conçu pour accroître la reproductibilité et la probabilité d’obtenir des tranches viables, durables et rythmiquement actifs pour l’enregistrement de sortie neuronale des régions respiratoires du tronc cérébral.

Résumé

Mammifères rythme inspiratoire est généré à partir un réseau de neurones dans une région du bulbe rachidien appelé la preBötzinger complexe (pBC), produisant un signal conduisant à la contraction rythmique des muscles inspiratoires. Activité neuronale rythmique générée en pBC et transportés aux autres piscines neuronales au lecteur que la musculature de la respiration peut être étudiée en utilisant diverses approches, y compris en bloc nerf enregistrements et tranche transversale. Cependant, méthodes publiées antérieurement n’ont pas largement décrit le processus de dissection du tronc cérébral-moelle épinière de manière transparente et reproductible pour de futures études. Nous présentons ici une vue d’ensemble d’une méthode permettant de façon reproductible couper en tranches de tronc cérébral rythmiquement actifs contenant le circuit neuronal nécessaire et suffisant pour la production et de transmission entraînement inspiratoire. Ce travail s’appuie sur les précédents protocoles d’électrophysiologie de tronc cérébral-moelle épinière pour accroître la probabilité d’obtention fiable des tranches viables et rythmiquement actifs pour l’enregistrement de la sortie neuronale de la pBC, neurones prémoteur hypoglosse (XII pMN), et motoneurones hypoglosse (XII MN). Le travail présenté élargit les précédentes méthodes publiées en fournissant des illustrations détaillées, étape par étapes de la dissection, de chiot tout rat, à in vitro de tranches contenant les radicelles XII.

Introduction

Le réseau de neurones respiratoire du tronc cérébral fournit un domaine fertile pour comprendre les caractéristiques générales des réseaux de neurones rythmiques. En particulier, l’intérêt est dans le développement de rongeurs nouveau-nés respirer et comprendre comment le rythme de la respiration se développe. Cela peut être fait en utilisant une approche à plusieurs niveaux, y compris en pléthysmographie animaux vivo, in vitro en bloc les enregistrements de nerf et in vitro couper les enregistrements qui contiennent le générateur de rythme de respiration. Réductionniste in vitro en bloc et tranche enregistrements constituent une méthode avantageuse à utiliser pour in....

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Protocole

Le protocole suivant a été accepté et approuvé par l’animalier institutionnel et utilisation Comité (IACUC) de l’Université de Loma Linda. Lignes directrices des NIH pour le traitement éthique des animaux sont respectées dans toutes les expériences animales réalisées au laboratoire. Toutes les normes éthiques ont été accueillis par des individus effectuant ce protocole.

1. les solutions

  1. Préparer le liquide céphalorachidien artificiel (aCSF).
    1. Préparer le FSCA fraîche le soir avant une expérience en lots de 1 L à l’aide de ce qui suit recette : 7,250 g NaCl (124 mM), 0,224 g KCl (3 mM), 2,100 g NaHCO....

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Résultats

La méthode présentée ici permet un chercheur intéressé à obtenir des tranches rythmiquement actives du tronc cérébral de façon reproductible et fiable couper une tranche viable et solide qui permettra d’enregistrer la production automobile fictive pendant plusieurs heures. Tous les éléments de circuits neuronaux au minimum nécessaire pour la production et de transmission rythme inspiratoire peuvent être capturées dans une fine tranche à l’aide de cette méthode. Ces éléments incluent : la .......

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Discussion

Adapter le protocole présenté ici dans un bloc fr ou tranche workflow est avantageuse pour les laboratoires et études qui tient à utiliser soit en bloc du tronc cérébral-moelle épinière et/ou mince tranche de préparations pour des enregistrements de l’électrophysiologie. La méthode de dissection et tranche présenté, combinée à méthodes précédemment signalées par d’autres17,18,19, permettra la préparation reproductible de tissu r.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

S.B.P est récipiendaire d’une bourse de recherche de Loma Linda University Summer Undergraduate.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
NaClFisher ScientificS271-500
KClSigma AldrichP5405-1KG
NaHCO3Fisher ScientificBP328-1
NaH2PO4 &bull ; H2OSigma AldrchS9638-25G
CaCl2&bull ; 2H2OSigma AldrichC7902-500G
MgSO4&bull ; 7H2OSigma AldrichM7774-500G
D-GlucoseSigma AldrichG8270-1KG
Source de lumière froide Lampe halogène 150 WAmScopeH2L50-AY
Microscope de dissectionLeicaM-60
Vibratome 1000 PlusVibratomeW3 69-0353
Base magnétiqueKaneticMB-B-DG6C
Isoflurane, USPPatterson VétérinaireNDC 14043-704-06
Épée Classic Double Edge BladesWilkinson97573
HistoclearSigma-AldrichH2779
Dumont #5 Fine ForcepsFine Science Tools11254-20
Dumont #5/45 ForcepFine Science Tools11251-35
Lames de scalpel #10Fine Science Tools10010-00
Scalpel Handel #3Fine Science Tools10003-12
Ciseaux à ressort droits  ;Fine Science Tools15024-10
Pince à motif étroit dentelée/droiteOutils de science fine11002-12
Castroviejo Micro Dissection Spring Cisseurs ; DroiteRobozRS-5650
Ciseaux Vannas 3" CourbéeRobozRS-5621
Épingles à insectes, 0Fine Science Tools/884060426000-35  ;
Épingles à insectes, 0, SSFine Science Tools26001-35
Épingles à insectes, 00Outils à insectes26000-30
Épingles à insectes, 00, SSFine Science Tools26001-30
Épingles à insectes, 000Outils à sciences fines26000-25
Épingles à insectes, 000, SSFine Science Tools26001-25
Minutien goupilles, 0,10 mmFine Science Tools26002-10
Broches Minutien, 0,15 mmFine Science Tools26002-15
Goupilles Minutien, 0,2 mmFine Science Tools26002-20
Fisher Tissue prep Parafin  ;pêcheurT56-5
Graphite  ;pêcheur  ;G67-500
Delrin Plastique  ;Grainger3HMT2
Aiguille Hypodermique de calibre 18BD305195

Références

  1. Hilaire, G., Duron, B. Maturation of the Mammalian Respiratory System. Physiological Reviews. 79, 325-360 (1999).
  2. Pinkerton, K. E., Joad, J. P. The Mammalian Respiratory System and Critical Windows of Exposure for Children's Health. Environment....

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Réimpressions et autorisations

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