Summary

リズミカルにアクティブな準備体外新生児齧歯動物脳幹-脊髄損傷で薄くスライス

Published: March 23, 2019
doi:

Summary

このプロトコル両方視覚脳幹脊髄標本を通信し、包括的なステップバイ ステップの方法で脳幹横スライスの準備を明確にします。それは、再現性を高め、脳幹の呼吸の地域から神経の出力を記録するための実行可能な長期的なリズミカル-アクティブのスライスを得ることの可能性を高めるために設計されました。

Abstract

哺乳類の呼吸のリズムは、髄質の複雑な preBötzinger を呼ばれる (pBC)、吸息筋のリズミカルな収縮を駆動信号を生成する領域の神経ネットワークから生成されます。リズミカルな神経活動は pBC で生成され、呼吸筋は、en のブロック神経録音横スライスの録音など、様々 なアプローチを使用して学ぶことができるドライブに他の神経細胞のプールに行った。ただし、以前に公開されたメソッドがない広範囲プロセスを説明脳幹 – 脊髄解離将来研究のための透明性と再現性のある方法で。ここでは、再現性をもって発生し、吸気ドライブを送信するための必要かつ十分な神経回路を含むリズミカル アクティブ脳幹スライスをカットするために使用法の包括的な概要を提案します。この作品は pBC、舌下神経 (XII pMN) 核ニューロンからニューロンの出力を記録するための現実的かつリズミカルにアクティブなスライスを確実に得られる可能性を高めるために前の脳幹 – 脊髄電気生理学のプロトコル上に構築し、舌下神経運動ニューロン (XII MN)。作品発表は、XII 根を含むスライスを全体のラットの子犬から、解剖の詳細なステップバイ ステップのイラストを提供することによって以前の公開メソッドを拡張します。

Introduction

脳幹の呼吸のニューラル ネットワークは、リズミカルなニューラル ネットワークの一般的な特徴を理解するための肥沃なドメインを提供します。特に、関心は新生児齧歯動物呼吸と呼吸のリズムを開発する方法を理解することの開発中です。これは生体全体の動物脈、体外で en のブロック神経録音を含むマルチレベルのアプローチを使用して行われ、体外、呼吸リズム ジェネレーターを含む録音をスライスします。体外 en のブロックおよびスライスの録音での還元は、呼吸器 rhythmogenesis および齧歯動物の開発の脳幹 – 脊髄領域における神経回路の背後にあるメカニズムを問い合わせるときに使用する有利な方法です。発展途上の呼吸器系には、約 40 のセルタイプ、中央呼吸1,2のそれらを含むパターンを発射することによって特徴づけられるが含まれています。中央呼吸ネットワークには腹吻側の延髄1,3にあるリズミカルに活発に神経細胞のグループが含まれます。哺乳類の呼吸 rhythmogenesis が生成されます、autorhythmic からの介在ネットワーク複雑な preBötzinger と呼ばれる (pBC) されているローカライズ実験を介して新生児の哺乳類のスライスと en の両方のブロックの準備脳幹・脊髄の3,4,5,6,7,8 をコードします。この地域は、心臓の洞房結節 (SA) と同様の機能を提供していて、ドライブ呼吸の吸気タイミング システムを生成します。PBC から吸気のリズムは (舌下神経の運動核を含む) 脳幹と脊髄のモーター プール (横隔膜の運動ニューロンでダイアフラムを駆動する) など9の他の地域に運ばれます。

律動は脳幹脊髄 en bloc 準備またはさまざまな C3 C5 神経根、XII 神経根を含む細胞集団からスライスを使用して得られる可能性があります (XII MN) 舌下神経運動核、舌下神経核ニューロン (XII pMN) と10,3,1211,pBC。データ コレクションのこれらのメソッドは、研究所の握りを成功されているが、多くのプロトコル フィールドに入る新たな研究者の完全に再現性のある方法で表示されません。現実的かつリズミカルにアクティブな en ブロックやスライスの準備を取得すると、郭清とスライス切断プロトコルのすべてのステップを通じて、細部への急性の注意が必要です。まだ以前のプロトコルは、広く様々 なレコーディング手順や電気生理学に記述可能なティッシュの準備を得ることの最も重要な部分の詳細を欠いている: 脳幹 – 脊髄の解剖とスライスの手順を実行します。

脳幹 – 脊髄電気生理学録音リズミカルにアクティブと実行可能なアンのブロックやスライスの準備を効率よく取得すべての手順が正しく、慎重に、かつ迅速に実行することが必要です (通常、全体の手順関連ここですることができます約 30 分で実行されます)。ない記載されている以前も脳幹 – 脊髄電気生理学プロトコルの重要なポイントは、神経根と、vibratome のスライスのプロシージャの郭清を含まれます。このプロトコルは段階的に最初は視覚的に新たな研究の分野での専門家脳幹 – 脊髄の解剖を伝えます。このプロトコルはまた徹底的に手術手技、ランドマーク、およびスライスとen のブロックの各実験に必要な正確な回路が含まれて準備を標準化することで未来の研究者を支援するために他の手順をについて説明します。ここで説明されている手順は、ラットおよびマウスの新生仔に使用できます。

Protocol

次のプロトコルは、受け入れし、機関動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) ロマリンダ大学によって承認されています。動物の倫理的な処置のための NIH のガイドラインは、研究室で実行されるすべての動物実験に続いています。すべての倫理的な標準は、このプロトコルを実行する個人によって支持されました。 1. ソリューション 人工脳脊髄液 (アプライド) …

Representative Results

ここで紹介した方法では、再現性をもって、確実に多くの時間のため架空のモーター出力の記録は、実行可能な堅牢なスライスを削減する脳幹のリズミカルにアクティブのスライスを得ることに興味がある研究者をことができます。生成し、吸気リズムを送信するための最低限必要な神経回路要素のすべては、このメソッドを使用して薄いスライスでキャプチャでき?…

Discussion

En bloc にここに示すプロトコルの適応またはスライス ワークフローが研究所に有利、どちらか en のブロック脳幹 – 脊髄を利用および/または薄いしたい研究スライス電気生理学の録音のための準備。郭清とスライス方法提示、17,18,19以前他の報告方法を組み合わせる、堅牢かつ実行可能な組織とは、範囲に広く適応可能の?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.B.P は、Loma リンダ大学夏学部研究員の受信者であります。

Materials

NaCl Fisher Scientific S271-500
KCl Sigma Aldrich P5405-1KG
NaHCO3 Fisher Scientific BP328-1
NaH2PO4 •H2O Sigma Aldrch S9638-25G
CaCl2•2H2O Sigma Aldrich C7902-500G
MgSO4•7H2O Sigma Aldrich M7774-500G
D-Glucose Sigma Aldrich G8270-1KG
Cold-Light source Halogen lamp 150W AmScope H2L50-AY
Dissection Microscope Leica M-60
Vibratome 1000 Plus Vibratome W3 69-0353
Magnetic Base Kanetic MB-B-DG6C
Isoflurane, USP Patterson Veterinary NDC 14043-704-06
Sword Classic Double Edge Blades Wilkinson 97573
Histoclear Sigma-Aldrich H2779
Dumont #5 Fine Forceps Fine Science Tools 11254-20
Dumont #5/45 Forcep Fine Science Tools 11251-35
Scalpel Blades #10 Fine Science Tools 10010-00
Scalpel Handel #3 Fine Science Tools 10003-12
Spring Scissors Straight  Fine Science Tools 15024-10
Narrow Pattern Forcep Serrated/straight Fine Science Tools 11002-12
Castroviejo Micro Dissecting Spring Scissors; Straight Roboz RS-5650
Vannas Scissors 3" Curved Roboz RS-5621
Insect pins, 0 Fine Science Tools/8840604 26000-35 
Insect pins, 0, SS Fine Science Tools 26001-35
Insect pins, 00 Fine Science Tools 26000-30
Insect pins, 00, SS Fine Science Tools 26001-30
Insect pins, 000 Fine Science Tools 26000-25
Insect pins, 000, SS Fine Science Tools 26001-25
Minutien pins, 0.10 mm Fine Science Tools 26002-10
Minutien pins, 0.15 mm Fine Science Tools 26002-15
Minutien pins, 0.2 mm Fine Science Tools 26002-20
Fisher Tissue prep Parafin  fisher T56-5
Graphite  fisher  G67-500
Delrin Plastic  Grainger 3HMT2
18 Gauge Hypodermic Needle BD 305195

References

  1. Hilaire, G., Duron, B. Maturation of the Mammalian Respiratory System. Physiological Reviews. 79, 325-360 (1999).
  2. Pinkerton, K. E., Joad, J. P. The Mammalian Respiratory System and Critical Windows of Exposure for Children’s Health. Environmental Health Perspectives. 108, 6 (2000).
  3. Smith, J. C., Ellenberger, H. H., Ballanyi, K., Richter, D. W., Feldman, J. L. Pre-Bötzinger complex: a brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals. Science. 254, 726-729 (1991).
  4. Smith, J. C., et al. Respiratory rhythm generation in neonatal and adult mammals: the hybrid pacemaker-network model. Respiration Physiology. 122, 131-147 (2000).
  5. Ramirez, J. M., Schwarzacher, S. W., Pierrefiche, O., Olivera, B. M., Richter, D. W. Selective lesioning of the cat pre-Bötzinger complex in vivo eliminates breathing but not gasping. The Journal of Physiology. 507, 895-907 (2004).
  6. Butera, R. J., Rinzel, J., Smith, J. C. Models of Respiratory Rhythm Generation in the pre-Bötzinger Complex: II. Populations of Coupled Pacemaker Neurons. Journal of Neurophysiology. 82, 398-415 (1999).
  7. Suzue, T. Respiratory rhythm generation in the in vitro brain stem-spinal cord preparation of the neonatal rat. Journal of Physiology (London). 354, 173-183 (1984).
  8. Feldman, J. L., Del Negro, C. A., Gray, P. A. Understanding the rhythm of breathing: so near, yet so far. Annual Review of Physiology. 75, 423-452 (2013).
  9. Rekling, J. C., Shao, X. M., Feldman, J. L. Electrical Coupling and Excitatory Synaptic Transmission between Rhythmogenic Respiratory Neurons in the PreBötzinger Complex. Journal of Neuroscience. 20, 113 (2000).
  10. Rousseau, J. -. P., Caravagna, C. Electrophysiology on Isolated Brainstem-spinal Cord Preparations from Newborn Rodents Allows Neural Respiratory Network Output Recording. Journal of Visualized Experiments. , e53071 (2015).
  11. Segev, A., Garcia-Oscos, F., Kourrich, S. Whole-cell Patch-clamp Recordings in Brain Slices. Journal of Visualized Experiments. (112), e54024 (2016).
  12. Koizumi, H., et al. Functional Imaging, Spatial Reconstruction, and Biophysical Analysis of a Respiratory Motor Circuit Isolated In Vitro. Journal of Neuroscience. 28, 2353-2365 (2008).
  13. Danneman, P., Mandrell, T. Evaluation of five agents/methods for anesthesia of neonatal rats. Laboratory Animal Science. 47, 386-395 (1997).
  14. Umezawa, N., et al. Orexin-B antagonized respiratory depression induced by sevoflurane, propofol, and remifentanil in isolated brainstem-spinal cords of neonatal rats. Respiratory Physiology & Neurobiology. 205, 61-65 (2015).
  15. Bierman, A. M., Tankersley, C. G., Wilson, C. G., Chavez-Valdez, R., Gauda, E. B. Perinatal hyperoxic exposure reconfigures the central respiratory network contributing to intolerance to anoxia in newborn rat pups. Journal of Applied Physiology. 116, 47-53 (2014).
  16. Formenti, A., Zocchi, L. Error signals as powerful stimuli for the operant conditioning-like process of the fictive respiratory output in a brainstem-spinal cord preparation from rats. Behavioural Brain Research. 272, 8-15 (2014).
  17. Negro, C. A. D., et al. Sodium and Calcium Current-Mediated Pacemaker Neurons and Respiratory Rhythm Generation. Journal of Neuroscience. 25, 446-453 (2005).
  18. Johnson, S. M., Koshiya, N., Smith, J. C. Isolation of the Kernel for Respiratory Rhythm Generation in a Novel Preparation: The Pre-Bötzinger Complex “Island”. Journal of Neurophysiology. 85, 1772-1776 (2001).
  19. Funk, G. D., et al. Functional respiratory rhythm generating networks in neonatal mice lacking NMDAR1 gene. Journal of Neurophysiology. 78, 1414-1420 (1997).
  20. Campos, M., Bravo, E., Eugenín, J. Respiratory dysfunctions induced by prenatal nicotine exposure. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 36, 1205-1217 (2009).
  21. Ballanyi, K., Volker, A., Richter, D. W. Anoxia induced functional inactivation of neonatal respiratory neurones in vitro. NeuroReport. 6, 165-168 (1994).
  22. Ruangkittisakul, A., et al. High Sensitivity to Neuromodulator-Activated Signaling Pathways at Physiological [K+] of Confocally Imaged Respiratory Center Neurons in On-Line-Calibrated Newborn Rat Brainstem Slices. Journal of Neuroscience. 26, 11870-11880 (2006).
  23. Rybak, I. A., et al. Modeling the ponto-medullary respiratory network. Respiratory Physiology & Neurobiology. 143, 307-319 (2004).
  24. Ruangkittisakul, A., Kottick, A., Picardo, M. C. D., Ballanyi, K., Del Negro, C. A. Identification of the pre-Bötzinger complex inspiratory center in calibrated ‘sandwich’ slices from newborn mice with fluorescent Dbx1 interneurons. Physiological Reports. 2, (2014).
  25. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (1997).
  26. Franklin, K. B. J., Paxinos, G. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Palahnuk, S. B., Abdala, J. A., Gospodarev, V. V., Wilson, C. G. Preparation of Rhythmically-active In Vitro Neonatal Rodent Brainstem-spinal Cord and Thin Slice. J. Vis. Exp. (145), e58870, doi:10.3791/58870 (2019).

View Video