Summary

Semiconductor sekvensering for Preimplantation genetisk testing for avvik

Published: August 25, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en halvleder sekvensering metode for Preimplantation genetisk testing for avvik (PGT-A) med fordelene av kort behandlingstid, lave kostnader, og høy gjennomstrømming.

Abstract

Kromosomavvik, en av de viktigste årsakene som fører til embryonale utvikling arrest, implantat svikt, eller graviditet tap, har vært godt dokumentert i menneskelig embryo. Preimplantation genetisk testing for avvik (PGT-A) er en genetisk test som i betydelig grad forbedrer reproduktive utfall ved å påvise kromosom unormalt av embryo. Neste generasjons sekvensering (NGS) gir en høy gjennomstrømming og kostnadseffektiv tilnærming for genetisk analyse og har vist klinisk anvendelse i PGT-A. Her presenterer vi en rask og lav pris halvleder sekvensering-basert NGS metode for screening av avvik i embryo. Det første trinnet i arbeidsflyten er hele Genova forsterkning (WGA) av biopsied embryo prøven, etterfulgt av byggingen av sekvensering biblioteket, og etterfølgende sekvensering på halvleder sekvensering systemet. Vanligvis, for en PGT-A-applikasjon, kan 24 prøver lastes inn og sekvensert på hver chip genererer 60 − 80 millioner leser på en gjennomsnittlig lese lengde på 150 base parene. Metoden gir en raffinert protokoll for å utføre mal forsterkning og berikelse av sekvensering biblioteket, noe som gjør PGT-A deteksjon reproduserbar, høy gjennomstrømming, kostnadseffektiv, og tidsbesparende. Kjøretiden for denne halvleder Sequencer er bare 2 − 4 timer, forkorte behandlingstiden fra å motta prøver å utstede rapporter i 5 dager. Alle disse fordelene gjør denne analysen en ideell metode for å oppdage kromosom aneuploidies fra embryo og dermed tilrettelegge sitt brede program i PGT-A.

Introduction

Velge god kvalitet levedyktig embryo med normal kromosom kopi tall (euploid) for overføring i assistert reproduksjon bidrar til å forbedre graviditets utfall. Tradisjonelt er det godt etablerte morfologiske vurderingssystemet mye brukt for embryo evaluering på grunn av sin enkle tilgjengelighet og ikke-invasiv natur. Det har imidlertid vist seg at morfologiske vurderingen bare kan gi begrenset informasjon om embryo kvalitet1 og implantation potensial2. En fundamental grunn er dens manglende evne til å evaluere den kromosom sammensetningen av embryo.

Kromosomavvik (unormal kopi antall kromosomer) er en av de viktigste årsakene som fører til embryonale utviklingen arrest, implantation svikt eller graviditet tap. Forekomsten av avvik har blitt godt dokumentert i menneskets embryo, og sto for 60% − 70% i en kløft-fase embryo3,4 og 50% − 60% i blastocysts5. Dette har til en viss grad bidratt til flaskehalsen for å forbedre graviditets raten på in-vitro befruktning (IVF) behandling, som har opprettholdt på rundt 35% − 40%6,7. Derfor, velge euploid embryo for overføring antas å være gunstig for å forbedre graviditets utfall. For dette formål har Preimplantation genetisk testing for avvik (PGT-A) blitt videreutviklet for å undersøke embryo levedyktighet ved hjelp av genetiske tilnærminger. Det er økende antall randomiserte kontrollerte studier og Kohortstudier som støtter den avgjørende rollen til PGT-A. Det har blitt bevist at anvendelsen av PGT-A reduserer spontanabort rate og øker klinisk graviditet rate og implantation rate8, pågående graviditet rate og live fødselsrate9.

Historisk sett har ulike metoder blitt anvendt i PGT-A, slik som fluorescens in situ hybridisering (fisk), komparativ genomisk hybridisering (CGH), array-CGH, og singel nukleotid polymorfisme (SNP)-Microarray. Tidligere studier har indikert at PGT-A for kløft-scenen embryo av FISH gir resultater som er dårlig i samsvar med de som oppnås ved omfattende kromosom screening (CCS) av tilsvarende blastocysts ved hjelp av 59273array-CGH eller SNP-microarray5927310. Disse avvikene kan tilskrives kromosom mosaikk, fisk tekniske gjenstander, eller embryonale selv-korreksjon av kromosom segregering feil under utvikling11. Det har blitt allment anerkjent at bruk av blastocyst trophectoderm (te) biopsier for array-baserte pgt-A som Array-CGH eller SNP-Microarray er effektivt for å identifisere kromosom ubalanse i embryo10,12. Nylig, én celle neste generasjons sekvensering (NGS) gir en høy-gjennomstrømning og kostnadseffektiv tilnærming for genetisk analyse og har vist klinisk anvendelse i pgt-en13,14,15, som gjør det til en lovende alternativ til tiden tilgjengelige metoder.

Her presenterer vi en rask, robust, og lavprisalternativ halvleder sekvensering-basert NGS metode for screening av avvik i menneskelig embryo. Det for det første steg av arbeidsflyten er hele Genova forsterkning (WGA) av det biopsied embryo eksemplar, benytter en enkelt-cellen WGA utstyr, føle etter av bygging av sekvensering bibliotek, og etterfølgende sekvensering på halvleder sekvensering system.

Gjennom å oppdage H+ ioner som er gitt ut fra hver deoxyribonucleoside trifosfat INNLEMMELSE under DNA strand syntese, overfører systemet de kjemiske signalene (pH endring) tatt av halvleder elementer til direkte digitale data , som ytterligere tolkes i DNA-sekvens informasjon. Eliminerer kravet til dyre optisk deteksjon og komplekse sekvensering reaksjoner, denne enkle sekvensering kjemi reduserer totale reagens kostnader og forkorter sekvensering kjører tid i 2 − 4 timer16. Enda viktigere, basert på produsentens ytelsesspesifikasjoner, kan den halvleder sekvensering plattformen generere opptil 15 GB sekvensering data (avhengig av kvaliteten på biblioteket) per Run, som er betydelig høyere enn noen av de andre sequencere produserer bare rundt 3 − 4 GB data (med 2 x 75 BP lese lengde)17. I kliniske anvendelser av PGT-A, kan denne plattformen oppnå 24 prøver per chip genererer opp til 80 000 000 leser17 og minst 1 000 000 unike leser av hver prøve. Lese dybden kan sikre at hvert utvalg har minst 0,05 x hele Genova dekning. De ovennevnte fordelene med denne plattformen gjør det til en ideell screening metode og dermed tilrettelegge sine brede applikasjoner i PGT-A18.

Protocol

Etisk godkjenning ble gitt av Joint Chinese University of Hong Kong-nye territorier East Cluster Clinical Research etikk Committee (referansenummer: 2010,432). Forsknings lisens ble godkjent av rådet for Human reproduktiv teknologi i Hong Kong (Number R3004). 1. hele Genova forsterkning Før start, sjekk volumet av magnetiske perler (tabell av materialer) for å sikre at det ikke er mindre enn 135 μL (med 20% overflødig) for hver prøve. Hold de magnetiske perlene…

Representative Results

Basert på denne endrede protokollen var plattformen for halvleder sekvensering for første gang, søkt om PGT-A. Vi testet på biopsier fra blastomeres og blastocyst embryo. Det er en foreslo det det biopsied celler gjennomgå WGA snarest å forhindre alle nedbrytning av DNA. En tidligere studie sammenlignet resultatene av ulike WGA metoder og indikerte at metoden vi beskrev her hadde den beste ensartethet på bin størrelsen på 100 KB20. Betenke det gjennomføre…

Discussion

Forskjellig fra andre sekvensering kjemikalier, den Sequencer beskrevet her bruker halvledere for påvisning av nukleotider. Brikken i seg selv er en elektronisk enhet som oppdager hydrogen ioner av polymerase-drevet base innlemmelse17, som gjør at 2-4 h sekvensering tid av Proton programmet. Dessuten er chip en mikrotiterplateleser chip som gjør at lokalisering av ett mål molekyl, som er forskjellig fra flyten cellen sekvensering kjemi av andre Sequencer tilbydere. Denne protokollen er en modi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av General Research Fund (Ref nr. 14162417) fra Hong Kong, National Natural Science Foundation i Kina (Ref nr. 81860272), den store forsknings plan av Provincial Science and Technology Foundation of Guangxi (Ref nr. AB16380219), og Kina postdoktor Science Foundation Grant (Ref nr. 2018M630993) fra Kina.

Materials

PCR tubes, 0.2 mL Axygen PCR-02D-C
UltraPure 0.5M EDTA, pH 8.0 ThermoFisher 15575020
PBS, pH 7.4, Ca2+ and Mg2+ free ThermoFisher 10010023
1.0 M NaOH (1.0N) solution SIGMA-ALDRICH S2567 For Melt-off solution. Molecular grade
Eppendorf LoBind Tubes, 1.5 mL Fisher Scientific 13-698-791
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
ELGA PURELAB Flex 3 Water Purification System or
Equivalent 18 MΩ water system
ThermoFisher 4474524
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
PicoPLEX WGA Amplification buffer Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
PicoPLEX WGA Amplification enzyme Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
Ion OneTouch Amplification Plate In kit: Ion OneTouch 2 Supplies (Part No. A26367). Extended kit component in Sheet 5
Ion PI Annealing Buffer
MyOne Beads Capture Solution
Agilent 2100 Bioanalyzer instrument Agilent G2939AA
Ion OneTouch Breaking Solution (black cap) In kit: Ion PI Hi‑Q OT2 Solutions 200 (Part No. A26429). Extended kit component in Sheet 5
Dynabeads MyOne Streptavidin C1 ThermoFisher 65001
PicoPLEX WGA Cell extraction buffer Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-00.
PicoPLEX WGA Cell extraction enzyme Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
Ion PI Chip Kit v3 ThermoFisher A26771
Ion Chip Minifuge, 230 V ThermoFisher 4479673
Ion PI dATP ThermoFisher A26772
Ion PI dCTP ThermoFisher A26772
Ion PI dGTP ThermoFisher A26772
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
ThermoQ–Temperature Dry Bath TAMAR HB-T2-A
NEBNext dsDNA Fragmentase New England Biolabs M0348L
NEBNext dsDNA Fragmentase New England Biolabs M0348L
Ion PI dTTP ThermoFisher A26772
Ion OneTouch 2 Instrument ThermoFisher INS1005527 ThermoFisher Catalog number: 4474778.
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
Ion One Touch ES ThermoFisher 8441-22 ThermoFisher Catalog number: 4469495. Extended kit component in Sheet 5
Ethanol SIGMA-ALDRICH 51976 This can be replaced by any brand's molecular grade absolute ethanol.
PicoPLEX WGA Extraction enzyme dilution buffer Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-01.
PicoPLEX WGA Extraction enzyme dilution buffer Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-02.
Qubit 3.0 Fluorometer ThermoFisher Q33216 This model has been replaced by Qubit 4 Fluorometer, Catalog number: Q33226.
Qubit ds DNA HS Assay kit ThermoFisher M2002-02
Qubit Assay Tubes ThermoFisher Q32856
Ion PI Foaming Solution ThermoFisher A26772
Index for barcoding of libraries BaseCare this is a in-house prepared index. Users can buy commercial product from ThermoFisher Ion Xpress Barcode Adapters Kits (Cat. No. 4474517)
Ion PI Loading Buffer ThermoFisher A26772
Solid(TM) Buffer Kit-1X Low TE Buffer ThermoFisher 4389764
Agencour AMPure XP Kit Beckman Coulter A63880
DynaMag-2 magnet (magnetic rack) ThermoFisher 12321D
Ion PI Master Mix PCR buffer
Sorvall Legend Micro 17 Microcentrifuge Micro 17 75002430
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252
Nuclease-free water ThermoFisher AM9922 This can be replaced by other brand.
PicoPLEX WGA Nuclease-free water Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
Ion OneTouch Oil bottle Ion PI Hi‑Q OT2 Solutions 200 (Part No. A26429). Extended kit component in Sheet 5
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252 Extended kit component in Sheet 3
double-strand DNA standard This is a in-house prepared DNA standard for calibration of Qubit before quantification of library.
PicoPLEX WGA Preamplification buffer Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
PicoPLEX WGA Preamplification enzyme Rubicon Genomics R30050 This can be replaced by SurePlex DNA Amplification System,catalog number: PR-40-415101-03.
Library Amplification Primer Mix ThermoFisher 4471252 Extended kit component in Sheet 3
Ion OneTouch Reaction Filter Extended kit component in Sheet 5
Recovery Router Extended kit component in Sheet 5
Recovery Tubes Extended kit component in Sheet 5
ISP Resuspension Solution
Ion Proton ThermoFisher DA8600 This model is imported by Da An Gene Co.,LTD. of Sun Yat-Sen University from ThermoFisher and has been certified by China Food and Drug Administration for clinical application. The catalog number in ThermoFisher is 4476610.
Ion PI Hi‑Q Sequencing Polymerase ThermoFisher A26772
Ion PI Sequencing Primer
server for sequencer Lenovo T260
Ion PI Sphere Particles
Platinum PCR SuperMix High Fidelity ThermoFisher 4471252
Nalgene 25mm Syringe Filters ThermoFisher 724-2045 Pore size: 0.45μm. Specifically for aqueous fluids.
Ion PI Hi‑Q W2 Solution ThermoFisher A26772
Ion PI 1X W3 Solution ThermoFisher A26772
Ion OneTouch Wash Solution C1
The Ion PGM Hi‑Q View Sequencing Kit ThermoFisher A30044 Extended kit component in Sheet 2
Ion Plus Fragment Library Kit ThermoFisher 4471252 Extended kit component in Sheet 3
Ion PI Hi-Q Sequencing 200 Kit (1 sequencing run per initialization) ThermoFisher A26772 Extended kit component in Sheet 4
Ion PI Hi‑Q OT2 200 Kit ThermoFisher A26434 Extended kit component in Sheet 5

References

  1. Balaban, B., Urman, B. Effect of oocyte morphology on embryo development and implantation. Reproductive BioMedicine Online. 12 (5), 608-615 (2006).
  2. Capalbo, A., et al. Correlation between standard blastocyst morphology, euploidy and implantation: An observational study in two centers involving 956 screened blastocysts. Human Reproduction. 29 (6), 1173-1181 (2014).
  3. Magli, M. C., Gianaroli, L., Ferraretti, A. P. Chromosomal abnormalities in embryos. Molecular and Cellular Endocrinology. 183, 29-34 (2001).
  4. Trussler, J. L., Pickering, S. J., Ogilvie, C. M. Investigation of chromosomal imbalance in human embryos using comparative genomic hybridization. Reproductive BioMedicine Online. 8 (6), 701-711 (2004).
  5. Fragouli, E., et al. Cytogenetic analysis of human blastocysts with the use of FISH, CGH and aCGH: Scientific data and technical evaluation. Human Reproduction. 26 (2), 480-490 (2011).
  6. Calhaz-Jorge, C., et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2013: Results generated from European registers by ESHRE. Human Reproduction. 32 (10), 1957-1973 (2017).
  7. Dyer, S., et al. International committee for monitoring assisted reproductive technologies world report: Assisted reproductive technology 2008, 2009 and 2010. Human Reproduction. 31 (7), 1588-1609 (2008).
  8. Dahdouh, E. M., Balayla, J., García-Velasco, J. A. Comprehensive chromosome screening improves embryo selection: A meta-analysis. Fertility and Sterility. 104 (6), 1503-1512 (2015).
  9. Chen, M., Wei, S., Hu, J., Quan, S. Can Comprehensive Chromosome Screening Technology Improve IVF/ICSI Outcomes? A Meta-Analysis. PloS One. 10 (10), e0140779 (2015).
  10. Northrop, L. E., Treff, N. R., Levy, B., Scott, J. T. SNP microarray-based 24 chromosome aneuploidy screening demonstrates that cleavage-stage FISH poorly predicts aneuploidy in embryos that develop to morphologically normal blastocysts. Molecular Human Reproduction. 16 (8), 590-600 (2010).
  11. Barbash-Hazan, S., et al. Preimplantation aneuploid embryos undergo self-correction in correlation with their developmental potential. Fertility and Sterility. 92 (3), 890-896 (2009).
  12. Fragouli, E., et al. Comprehensive cytogenetic analysis of the human blastocyst stage. Fertility and Sterility. 90 (11), S36 (2008).
  13. Fiorentino, F., et al. Development and validation of a next-generation sequencing-based protocol for 24-chromosome aneuploidy screening of embryos. Fertility and Sterility. 101 (5), 1375-1382 (2014).
  14. Fiorentino, F., et al. Application of next-generation sequencing technology for comprehensive aneuploidy screening of blastocysts in clinical preimplantation genetic screening cycles. Human Reproduction. 29 (12), 2802-2813 (2014).
  15. Wells, D., et al. Clinical utilisation of a rapid low-pass whole genome sequencing technique for the diagnosis of aneuploidy in human embryos prior to implantation. Journal of Medical Genetics. 51 (8), 553-562 (2014).
  16. Quail, M. A., et al. A tale of three next generation sequencingplatforms: comparison of Ion Torrent, PacificBiosciences and Illumina MiSeq sequencers. BMC Genomics. 13 (1), 1-13 (2012).
  17. Goodwin, S., McPherson, J. D., McCombie, W. R. Coming of age: ten years of next-generation sequencing technologies. Nature Reviews Genetics. 17 (6), 333-351 (2016).
  18. Bono, S., et al. Validation of a semiconductor next-generation sequencing-based protocol for preimplantation genetic diagnosis of reciprocal translocations. Prenatal Diagnosis. 35 (10), 938-944 (2015).
  19. Harton, G. L., et al. ESHRE PGD Consortium/Embryology Special Interest Groupbest practice guidelines for polar body and embryo biopsy for preimplantation genetic diagnosis/screening (PGD/PGS). Human Reproduction. 26 (1), 41-46 (2011).
  20. Liu, W. Q., et al. The performance of MALBAC and MDA methods in the identification of concurrent mutations and aneuploidy screening to diagnose beta-thalassaemia disorders at the single- and multiple-cell levels. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 32 (2), 1-8 (2018).
  21. Zhang, X., et al. The comparison of the performance of four whole genome amplification kits on ion proton platform in copy number variation detection. Bioscience Reports. 37 (4), BSR20170252 (2017).
  22. Munné, S., Grifo, J., Wells, D. Mosaicism: “survival of the fittest” versus “no embryo left behind”. Fertility and Sterility. 105 (5), 1146-1149 (2016).
  23. Del Carmen Nogales, M., et al. Type of chromosome abnormality affects embryo morphology dynamics. Fertility and Sterility. 107 (1), 229-235 (2017).
  24. Harton, G. L., et al. ESHRE PGD consortium best practice guidelines for amplification-based PGD. Human Reproduction. 26 (1), 33-40 (2011).
  25. Deleye, L., et al. Shallow whole genome sequencing is well suited for the detection of chromosomal aberrations in human blastocysts. Fertility and Sterility. 104 (5), 1276-1285 (2015).
  26. Bielanska, M., Tan, S. L., Ao, A. Chromosomal mosaicism throughout human preimplantation development in vitro: incidence, type, and relevance to embryo outcome. Human Reproduction. 17 (2), 413-419 (2002).
  27. Treff, N. R., et al. Evaluation of targeted next-generation sequencing-based preimplantation genetic diagnosis of monogenic disease. Fertility and Sterility. 99 (5), 1377-1384 (2013).
check_url/59273?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gui, B., Zhang, Y., Liang, B., Kwok, Y. K. Y., Lui, W. T., Yeung, Q. S. Y., Kong, L., Xuan, L., Chung, J. P. W., Choy, K. W. Semiconductor Sequencing for Preimplantation Genetic Testing for Aneuploidy. J. Vis. Exp. (150), e59273, doi:10.3791/59273 (2019).

View Video