Summary

유세포측정을 통한 BK-폴리오마바이러스 비코딩 제어 영역 구동 전사 활성 측정

Published: July 13, 2019
doi:

Summary

이 원고에서, 프로토콜은 tdTomato 및 eGFP를 발현하는 양방향 리포터 플라스미드로 형질감염된 HEK293T 세포를 이용하여 BK-폴리오마바이러스 전사 활성의 FACS 기반 측정을 수행하기 위해 제시된다. 이 방법은 바이러스 전사에 대한 신규 화합물의 영향을 정량적으로 결정할 수 있게 한다.

Abstract

BK-폴리오마바이러스(BKPyV)와 같은 폴리오마바이러스는 면역 손상 환자에서 심각한 병리학을 유발할 수 있습니다. 그러나, 매우 효과적인 항 바이러스는 현재 사용할 수 없기 때문에, 잠재적인 항 바이러스 에이전트의 영향을 측정 하는 방법이 필요. 여기서, BKPyV 비코딩 제어 영역(NCCR)의 분석을 가능한 이중 형광 리포터는 tdTomato 및 eGFP를 통해 바이러스 유전자 발현에 대한 잠재적항바이러스 약물의 영향을 정량화하기 위해 구축되었다. 식. 또한, 본 프로토콜에서 면역손상신장 이식 환자의 혈액 유래 DNA로부터 예시적으로 수득된 BKPyV-NCCR 앰플리칸을 복제함으로써, NCCR 재배열이 바이러스 성 유전자 발현에 미치는 영향을 결정할 수 있다. 환자 유래 앰플리톤의 클로닝에 이어, HEK293T 세포를 리포터 플라스미드로 형질전환시키고, 잠재적인 항바이러스제로 치료하였다. 이어서, 세포는 평균 형광 강도 72시간 후 형질감염을 측정하기 위한 FACS 분석을 실시하였다. 또한 잠재적인 세포 주기 억제 효과가 있는 약물의 분석을 테스트하기 위해 형질감염 및 따라서 형광 세포만 사용됩니다. 이러한 분석이 큰 T 항원 발현 세포에서 수행되기 때문에, 조기 및 후기 발현의 영향은 상호 독립적인 방식으로 분석될 수 있다.

Introduction

폴리오마바이러스는 시미미안 바이러스 40(SV40)을 시제품 종으로 가진 작은 이중 가닥 DNA(dsDNA) 바이러스의 독립적인 군을 나타낸다. 1 차적인 감염은 일반적으로 질병 현상 없이 진행하고 일반적으로 면역 유능한 호스트에 있는 잠복 감염을 일으키는 원인이 되는 유년기 도중 주로 생깁니다. BK-폴리오마바이러스 (BKPyV)는 주로 신장 관 세포에서 신병요법을 일으키지 않고 지속하지만, 신장 이식 후 면역 능력이 손상된 경우 바이러스가 재활성화되어 심각한 손상및 이식 이식 장애를 일으킬 수 있습니다. 높은 비혈증에 도달할 때 기능 (1 x 104 BKPyV DNA 사본 / mL) 1,2. 신장 이식 수혜자의 대략 10%에서, BK-polyomavirus (BKPyV)의 재활성화는 신장 동종 이식 실패의 고위험과 관련되었던 80%까지 관련되었던 polyomavirus 관련되는 신장 병증 (PyVAN)귀착됩니다3,4 . 승인된 항바이러스제를 사용할 수 없기 때문에 현재 치료법은 면역 억제의 감소에 기초합니다. 흥미롭게도, mTOR 억제제는 항 바이러스 효과가있는 것 같다; 따라서, 면역억제 요법을 mTOR 계 면역억제로 전환하면 BKPyV 비레미아 5,6,7의 진행을 방지하는 대안적 접근법을 나타낼 수 있다. 그러나, mTOR 계 항바이러스 메커니즘은 현재 아직 불완전하게 이해된다. 따라서, 임상적으로 관련된 농도에서 잠재적항바이러스제의 영향을 측정하는 방법이 요구된다.

BKPyV의 원형 게놈은 약 5kb의 비코딩 제어 영역(NCCR)을 품고 복제의 기원역할을 하며, 이와 일치하게 초기 및 후기 단계 mRNA 전사체의 발현을 유도하는 양방향 프로모터로 구성된다. NCCR-재배열, 결실 및 중복이 병원성 BKPyV 8에서 발견되기 때문에 PVAN5,9,전형(wt)의 비교를 통해 유의하게 축적된 환자들로부터 재배열 (rr) NCCR 활동은 바이러스 복제 피트니스를 특성화하는 데 도움이됩니다.

1에 요약된 바와 같이, 이 프로토콜은 기자 플라스미드 5로부터 발현된 두 개의 형광단 tdTomato 및 eGFP의 형광을 정량화함으로써 BKPyV NCCR 전사 활성을 측정하는 일반적인 방법을설명한다. 9,10,11. 절차는 SV40 대형 T 항원(lTAg)의 존재에서 수행되며, 이는 NCCR 활성 초기에 및 후기에 대한 잠재적항바이러스제의 영향을 별도로 분석할 수 있다5. 이 분석은 NCCR 활성에 대한 재배열의 영향을 추가로 분석하고 wt-NCCrRs5,9. 리포터 플라스미드는 각각 tdTomato 및 eGFP에 대한 두 전사체의 비교가능한 효율적인 처리를 보장하기 위해 각 형광부 개방 판독 프레임의 SV40 후기 폴리아데닐화 신호 하류를 항구합니다. qRT-PCR 기반 방법5,12에비해, 이 FACS 기반 접근법은 감염된 세포 배양에 대한 복잡한 추출 프로토콜이 없고 비용이 많이 들지 않으므로 저렴한 비용과 높은 처리량 호환 대안을 나타냅니다. 면역 형광 염색을 위한 항체가 필요합니다. 더욱이, 정의된 양의 형광세포가 유세포분석을 통해 분석되기 때문에, 세포주기 억제제의 분석도 정량적 방식으로 가능하다.

Protocol

이 프로토콜은 뒤스부르크 – 에센 대학의 의료 학부의 윤리위원회에 의해 승인 된 인간의 연구의 지침을 따릅니다 (14-6028-BO). 1. 혈액 또는 소변 샘플 수집 및 폴리오마 바이러스 DNA의 격리 EDTA 관 또는 수집 관에 있는 소변에 있는 혈액의 적어도 3 mL를 수집합니다. 샘플을 2,500 x g에서 15 분 동안 원심 분리합니다. 필요한 경우, 파이펫 플라즈마를 새로운 튜?…

Representative Results

본 대표적인 실험에서, BK-폴리오마바이러스 비코딩 제어 영역 구동 전사 활성은 유세포측정을 통해 측정하였다. 또한, BKPyV 재활성화 후 환자를 치료하는데 사용될 수 있는 mTOR 억제제는 바이러스 성 초기 유전자 발현의 억제를 위해 시험되었다. 이를 위해, 이중 형광-리포터 분석이 이전에 출판된바와 같이 사용되었다 5. 실험 설정의 전체 워크플로 우표 …

Discussion

이 문서에서는, BKPyV 비코딩 제어 영역(NCCR) 구동 초기 및 후기 프로모터 활성의 분석을 허용하는 일반적으로 사용되는 방법이 제시된다. NCCR 활성은 동시에 측정될 수 있으며 형질감염된 세포의 라시스가 필요하지 않습니다. 더욱이, 비교적 많은 수의 세포를 분석할 수 있으며 형광 값의 정상화를 위한 추가 마커의 병용형화가 필요하지 않다.

이 방법의 중요한 부분은 복제된 N…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 우수한 기술 지원을 바바라 블레크만 감사합니다. 이러한 연구는 뒤스부르크 – 에센 의과 대학의 IFORES 프로그램과 대학 얼라이언스 루르와 메르카토르 연구 센터 루르 (MERCUR)의 RIMUR 프로그램에 의해 지원되었다. 저자들은 헬렌 세르츠니그 박사의 펠로우십과 지속적인 지원에 대해 위르겐-만초-스티퉁에게 감사를 표한다. 수집 및 환자 자료의 사용은 대학 뒤스부르크 – 에센의 의료 학부의 윤리위원회에 의해 승인되었습니다 (14-6028-BO).

Materials

100 bp ladder NEB N3231 Any ladder with a range up to 1 kb can be substituted
2-log ladder NEB N0550 Any ladder with a range up to 10 kb can be substituted
Agar-Agar, Kobe I Carl Roth 5210.3
AgeI-HF NEB R3552
Ampicillin Natriumsalz Cellpure Carl Roth HP62.1
Aqua ad iniectabilia Bbraun 2351744 can be substituted by any manufacturer
BD FACSCanto™ II BD Biosciences
BD FACSDiva BD Biosciences
DAPI Sigma 10236276001
DFC450C camera module Leica Any camera can be used
DMEM Gibco 41966-029 can be substituted by any manufacturer
DMIL LED microscope Leica Any fluorescence microscope can be used
DNA Blood Mini Kit Qiagen 51104 can be substituted by any manufacturer
E.coli DH5alpha Competent Cells Thermo Scientific 18258012
FBS Superior MerckMillipore 50615 Any FBS can be used
FlowJo v10.5.3 FlowJo, LLC Any flow cytometry software FBS can be used
Gel Loading Dye, Purple (6X)  NEB B7024 Any 6x loading dye can be substituted
HEK293T cells ATCC 11268 These cells constitutively express the simian virus 40 (SV40) large T antigen, and clone 17 was selected specifically for its high transfectability.
HERAcell® 240i CO2 Incubator Thermo Scientific can be substituted by any manufacturer
HotStar PCR kit Qiagen 203203
Intas Gel documentation system Intas Any visualisation system for stained DNA containing agarose gels can be used
Low Melt Agarose Biozym 850081 can be substituted by any manufacturer
Opti-MEM Invitrogen 31985070 can be substituted by any manufacturer
pBKV (34-2) ATCC 45025 Plasmid harboring the full-length genome of BKPyV strain Dunlop; was used as a positive control; DNA Seq. Acc.: KP412983
PBS Gibco 14190-136
PCR Cycler MJ Mini 48-Well Personal Cycler Bio-Rad discontinued product Any thermocycler can be used
PCR Nucleotide Mix, 10 mM Promega #C1145 can be substituted by any manufacturer
PCR1 and PCR2 Primers metabion not applicable Desalted. Dilute to (10 µM) with PCR grade water
PenStrep (100x) Gibco 15140-122 can be substituted by any manufacturer
Roti®-GelStain Carl Roth 3865 A fluorescence based stain for measuring dsDNA concentration
SpeI-HF NEB R3133
T4-DNA Ligase NEB M0202
TransIT LT1 Mirus MIR2300
Trypsin 0.05% – EDTA Gibco 25300-054 can be substituted by any manufacturer
ZymoPURE II Plasmid Kit Zymo D4201 can be substituted by any manufacturer

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Citer Cet Article
Korth, J., Sertznig, H., Moyrer, S., Doevelaar, A. A. N., Westhoff, T. H., Babel, N., Witzke, O., Kribben, A., Dittmer, U., Widera, M. Measurement of BK-polyomavirus Non-Coding Control Region Driven Transcriptional Activity Via Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (149), e59755, doi:10.3791/59755 (2019).

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