Summary

Mätning av BK-polyomavirus icke-kodning kontroll region driven transkriptionell aktivitet via flödescytometri

Published: July 13, 2019
doi:

Summary

I detta manuskript, ett protokoll presenteras för att utföra FACS-baserade mätningar av BK-polyomavirus transkriptionell aktivitet genom att använda HEK293T celler transfekterade med en dubbelriktad reporter plasmid uttrycker tdtomato och egfp. Denna metod gör det möjligt att kvantitativt bestämma påverkan av nya föreningar på viral transkription.

Abstract

Polyomaviruser, som BK-polyomavirus (BKPyV), kan orsaka allvarliga patologier hos patienter med nedsatt immunförsvar. Eftersom mycket effektiva antivirala läkemedel för närvarande inte är tillgängliga krävs dock metoder för att mäta effekten av potentiella antivirala medel. Här har en dubbel fluorescensreporter som gör det möjligt att analysera den icke-kodande kontroll region (NCCR) som är driven i början och slutet av promotorn för att kvantifiera effekten av potentiella antivirala läkemedel på virus genuttryck via tdTomato och eGFP Uttryck. Genom kloning av BKPyV-NCCR-amplikoner som i detta protokoll exemplärt har erhållits från det blodbaserade DNA hos immunsupprimerade njurtransplanterade patienter kan effekten av NCCR-omordningar på viral genuttryck bestämmas. Efter kloning av patienten härledda amplicons, HEK293T celler var transfekterade med rapportör-plasmider, och behandlas med potentiella antivirala medel. Därefter utsattes celler för FACS-analys för mätning av medelvärdet för fluorescensintensiteter 72 h efter transfektion. För att också testa analysen av läkemedel som har en potentiell cell cykelhämmande effekt, endast transfekterade och därmed fluorescerande celler används. Eftersom denna analys utförs i stora T antigen uttrycker celler, effekterna av tidigt och sent uttryck kan analyseras på ett ömsesidigt oberoende sätt.

Introduction

Polyomaviruses representerar en självständig familj av små dubbelsträngade DNA (dsDNA) virus med Simian virus 40 (SV40) som en prototyp art. Den primära infektionen uppstår främst under barndomen, som vanligtvis fortsätter utan sjukdomssymtom och oftast orsaka latent infektioner i immunförsvaret kompetenta värdar. BK-polyomavirus (BKPyV) består i huvudsak av njurtubuli celler utan att orsaka nefropatier, men i händelse av försämring av immun-kompetensen efter njurtransplantation kan viruset återaktivera och orsaka allvarliga skador och försämrad transplantat funktion när man når en hög viremia (1 x 104 bkpyv DNA kopior/ml)1,2. Hos cirka 10% av mottagarna av njurtransplantat, reaktivering av BK-polyomavirus (bkpyv) resulterar i en polyomavirus associerad nefropati (pyvan), som var upp till 80% förknippad med en hög risk för renal allograffel3,4 . Eftersom inga godkända antivirala medel finns tillgängliga, är nuvarande behandling baserad på reduktion av immunsuppression. Intressant, mTOR-hämmare verkar ha en antiviral effekt; Således, byta immunsuppressiv behandling till mTOR-baserad immunsuppression kan utgöra en alternativ metod för att förhindra progression av bkpyv viremia5,6,7. Men den mTOR-baserade antivirala mekanismen är för närvarande fortfarande ofullständigt förstådd. Därför krävs metoder för att mäta effekten av potentiella antivirala medel i kliniskt relevanta koncentrationer.

Den cirkulära genomet i BKPyV består av cirka 5 KB härbärga en icke-kodning kontroll region (NCCR) som fungerar som ett ursprung för replikering och samtidigt en dubbelriktad promotor kör uttrycket av tidiga och sena fas mRNA utskrifter. Eftersom spontant förekommande nccr-omordningar, borttagningar och dubbleringar påträffas i patogena bkpyv8 och ackumuleras signifikant hos patienter som lider av PVAN-5,9, en jämförelse av arketetypikal (WT) och omarrangerade (RR) NCCR-aktiviteter är till hjälp för att karakterisera viral replikativ kondition.

Som sammanfattas i figur 1, beskriver detta protokoll en metod som ofta används för att mäta BKPyV nccr-transkriptionsaktivitet genom att kvantifiera fluorescensen hos två fluorofomedel tdTomato och egfp som uttrycks från en reporter plasmid5, 9,10,11. Förfarandet utförs i närvaro av SV40 stora T-antigen (lTAg), som gör det möjligt att analysera effekterna av potentiella antivirala medel på tidig och sen NCCR-aktivitet separat5. Denna analys analyserar ytterligare effekten av omordningar på nccr-aktiviteten och jämförelse med WT-nccrs5,9. Reportern plasmid hamnar den SV40 sena polyadenylering signalen nedströms varje fluorophore öppen läsbild för att säkerställa jämförbar och effektiv bearbetning av båda avskrifter för tdTomato och eGFP, respektive. Jämfört med QRT-PCR-baserade metoder5,12, detta FACS-baserade tillvägagångssätt representerar en låg kostnad och hög genomströmning kompatibelt alternativ eftersom inga komplicerade utvinning protokoll för infekterade cellkulturen och inga dyra antikroppar mot immunfluorescens färgning behövs. Dessutom, eftersom en definierad mängd fluorescerande celler analyseras via flödescytometri, är analysen av cell cykelhämmande medel också möjligt på ett kvantitativt sätt.

Protocol

Detta protokoll följer de riktlinjer för mänsklig forskning som godkänts av etikkommittén för medicinska fakulteten vid universitetet i Duisburg-Essen (14-6028-BO). 1. insamling av blod-eller urinprov och isolering av polyomavirus DNA Samla in minst 3 mL blod i EDTA-rör eller urin i inhämtande rör. Centrifugera provet på 2 500 x g i 15 min. Vid behov Pipettera plasma i ett nytt rör och förvara plasmaproverna vid 4 ° c i flera dagar eller frys vid-20 °…

Representative Results

I detta representativa experiment mättes BK-polyomavirus icke-kodande kontroll region driven transkriptionell aktivitet via flödescytometri. Dessutom testades en mTOR-hämmare, som kan användas för att behandla patienter efter reaktivering av BKPyV, för sin hämning av det virala tidiga genuttrycket. För detta ändamål användes en dual Fluorescence-reporter-analys som publicerades tidigare5. Det övergripande arbetsflödessystemet i den experimentella insta…

Discussion

I den här artikeln presenteras en vanlig metod som gör det möjligt för analys av BKPyV icke-kodning Control-region (NCCR) driven tidig och sen promotor aktivitet. Nccr-aktiviteten kan mätas samtidigt och behöver inte lys av de transfekterade cellerna. Dessutom kan ett relativt stort antal celler analyseras och co-transfektion av ytterligare markörer för normalisering av fluorescensvärden är inte nödvändigt.

En kritisk del av denna metod är att den klonade nccr bör innehålla exak…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Barbara Bleekmann för utmärkt teknisk hjälp. Dessa studier stöttades av IFORES-programet av universitetar av Duisburg-Essen läkarundersökning skolar och RIMUREN-programet av Universitetaralliansen Ruhr och Mercator forskning centrerar Ruhr (MERCUR). Författarna tackar Jürgen-Manchot-Stiftungen för doktorat gemenskap av Helene Sertznig och konstant service. Insamling och användning av patientmaterial har godkänts av etikkommittén för den medicinska fakulteten vid universitetet Duisburg-Essen (14-6028-BO).

Materials

100 bp ladder NEB N3231 Any ladder with a range up to 1 kb can be substituted
2-log ladder NEB N0550 Any ladder with a range up to 10 kb can be substituted
Agar-Agar, Kobe I Carl Roth 5210.3
AgeI-HF NEB R3552
Ampicillin Natriumsalz Cellpure Carl Roth HP62.1
Aqua ad iniectabilia Bbraun 2351744 can be substituted by any manufacturer
BD FACSCanto™ II BD Biosciences
BD FACSDiva BD Biosciences
DAPI Sigma 10236276001
DFC450C camera module Leica Any camera can be used
DMEM Gibco 41966-029 can be substituted by any manufacturer
DMIL LED microscope Leica Any fluorescence microscope can be used
DNA Blood Mini Kit Qiagen 51104 can be substituted by any manufacturer
E.coli DH5alpha Competent Cells Thermo Scientific 18258012
FBS Superior MerckMillipore 50615 Any FBS can be used
FlowJo v10.5.3 FlowJo, LLC Any flow cytometry software FBS can be used
Gel Loading Dye, Purple (6X)  NEB B7024 Any 6x loading dye can be substituted
HEK293T cells ATCC 11268 These cells constitutively express the simian virus 40 (SV40) large T antigen, and clone 17 was selected specifically for its high transfectability.
HERAcell® 240i CO2 Incubator Thermo Scientific can be substituted by any manufacturer
HotStar PCR kit Qiagen 203203
Intas Gel documentation system Intas Any visualisation system for stained DNA containing agarose gels can be used
Low Melt Agarose Biozym 850081 can be substituted by any manufacturer
Opti-MEM Invitrogen 31985070 can be substituted by any manufacturer
pBKV (34-2) ATCC 45025 Plasmid harboring the full-length genome of BKPyV strain Dunlop; was used as a positive control; DNA Seq. Acc.: KP412983
PBS Gibco 14190-136
PCR Cycler MJ Mini 48-Well Personal Cycler Bio-Rad discontinued product Any thermocycler can be used
PCR Nucleotide Mix, 10 mM Promega #C1145 can be substituted by any manufacturer
PCR1 and PCR2 Primers metabion not applicable Desalted. Dilute to (10 µM) with PCR grade water
PenStrep (100x) Gibco 15140-122 can be substituted by any manufacturer
Roti®-GelStain Carl Roth 3865 A fluorescence based stain for measuring dsDNA concentration
SpeI-HF NEB R3133
T4-DNA Ligase NEB M0202
TransIT LT1 Mirus MIR2300
Trypsin 0.05% – EDTA Gibco 25300-054 can be substituted by any manufacturer
ZymoPURE II Plasmid Kit Zymo D4201 can be substituted by any manufacturer

References

  1. Drachenberg, C. B., et al. Histological patterns of polyomavirus nephropathy: correlation with graft outcome and viral load. American Journal of Transplant. 4 (12), 2082-2092 (2004).
  2. Korth, J., et al. Impact of low-level BK polyomavirus viremia on intermediate-term renal allograft function. Transplant Infectious Disease. 20 (1), (2018).
  3. Hirsch, H. H., et al. European perspective on human polyomavirus infection, replication and disease in solid organ transplantation. Clinical Microbiology and Infection. 20 Suppl 7, 74-88 (2014).
  4. Masutani, K., et al. The Banff 2009 Working Proposal for polyomavirus nephropathy: a critical evaluation of its utility as a determinant of clinical outcome. American Journal of Transplantation. 12 (4), 907-918 (2012).
  5. Korth, J., et al. Impact of immune suppressive agents on the BK-Polyomavirus non coding control region. Antiviral Research. 159, 68-76 (2018).
  6. Hirsch, H. H., Yakhontova, K., Lu, M., Manzetti, J. BK Polyomavirus Replication in Renal Tubular Epithelial Cells Is Inhibited by Sirolimus, but Activated by Tacrolimus Through a Pathway Involving FKBP-12. Amerian Journal of Transplantation. 16 (3), 821-832 (2016).
  7. Sanchez Fructuoso, A. I., et al. Mammalian target of rapamycin signal inhibitors could play a role in the treatment of BK polyomavirus nephritis in renal allograft recipients. Transplant Infectious Disease. 13 (6), 584-591 (2011).
  8. Moens, U., Johansen, T., Johnsen, J. I., Seternes, O. M., Traavik, T. Noncoding control region of naturally occurring BK virus variants: sequence comparison and functional analysis. Virus Genes. 10 (3), 261-275 (1995).
  9. Gosert, R., et al. Polyomavirus BK with rearranged noncoding control region emerge in vivo in renal transplant patients and increase viral replication and cytopathology. Journal of Experimental Medicine. 205 (4), 841-852 (2008).
  10. Bethge, T., et al. Sp1 sites in the noncoding control region of BK polyomavirus are key regulators of bidirectional viral early and late gene expression. Journal of Virology. 89 (6), 3396-3411 (2015).
  11. Gosert, R., Kardas, P., Major, E. O., Hirsch, H. H. Rearranged JC virus noncoding control regions found in progressive multifocal leukoencephalopathy patient samples increase virus early gene expression and replication rate. Journal of Virology. 84 (20), 10448-10456 (2010).
  12. Bernhoff, E., Gutteberg, T. J., Sandvik, K., Hirsch, H. H., Rinaldo, C. H. Cidofovir inhibits polyomavirus BK replication in human renal tubular cells downstream of viral early gene expression. American Journal of Transplantation. 8 (7), 1413-1422 (2008).
  13. Widera, M., et al. HIV-1 persistent viremia is frequently followed by episodes of low-level viremia. Medical Microbiology Immunology. , (2017).
  14. Zhang, S., Cahalan, M. D. Purifying plasmid DNA from bacterial colonies using the QIAGEN Miniprep Kit. Journal of Visualized Experiment. (6), 247 (2007).
  15. Drew, R. J., Walsh, A., Laoi, B. N., Crowley, B. Phylogenetic analysis of the complete genome of 11 BKV isolates obtained from allogenic stem cell transplant recipients in Ireland. Journal of Medical Virology. 84 (7), 1037-1048 (2012).
  16. Dorries, K., Vogel, E., Gunther, S., Czub, S. Infection of human polyomaviruses JC and BK in peripheral blood leukocytes from immunocompetent individuals. Virology. 198 (1), 59-70 (1994).
  17. Teutsch, K., et al. Early identification of renal transplant recipients with high risk of polyomavirus-associated nephropathy. Medical Microbiology Immunology. 204 (6), 657-664 (2015).
  18. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). Journal of Visualized Experiment. (41), (2010).
  19. Korth, J., et al. The detection of BKPyV genotypes II and IV after renal transplantation as a simple tool for risk assessment for PyVAN and transplant outcome already at early stages of BKPyV reactivation. Journal of Clinical Virology. 113, 14-19 (2019).
  20. Caputo, A., Barbanti-Brodano, G., Wang, E., Ricciardi, R. P. Transactivation of BKV and SV40 early promoters by BKV and SV40 T-antigens. Virology. 152 (2), 459-465 (1986).
  21. Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. A guide to choosing fluorescent proteins. Nature Methods. 2 (12), 905-909 (2005).
check_url/fr/59755?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Korth, J., Sertznig, H., Moyrer, S., Doevelaar, A. A. N., Westhoff, T. H., Babel, N., Witzke, O., Kribben, A., Dittmer, U., Widera, M. Measurement of BK-polyomavirus Non-Coding Control Region Driven Transcriptional Activity Via Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (149), e59755, doi:10.3791/59755 (2019).

View Video