דנ א של מיקרולוווין הגנוזות וזרימה Cy, בדיקות פלוטודיה של פורמאלין-קבוע פרפין-מוטבע רקמות טוחנת
Summary
שומות hydatidiform הם הריונות אנושיים חריגים עם aetiologies הטרוגנית שניתן סיווג על פי תכונות מורפולוגיות שלהם תרומת הורים הגנום הטוחנת. כאן, פרוטוקולים של הננו-DNA מיקרולוווין של דנ א וזרימה cy, הרקמה הקבועה של formalin-מוטבע הרקמות הטוחנת מתוארים בפרוטרוט, יחד עם התוצאות ‘ פרשנות ואינטגרציה.
Abstract
Hydatidiform שומה (HM) הוא הריון אנושי נורמלי מאופיין התפשטות trophoblastic מוגזמת ופיתוח עובריים חריגים. ישנם שני סוגים של HM מבוסס על הערכה מורפולוגית מיקרוסקופית, להשלים HM (CHM) חלקי HM (PHM). אלה יכולים להיות מחולקת עוד יותר על בסיס תרומת הורים הגנום הטוחנת. אפיון כזה של HM, לפי מורפולוגיה וניתוחי גנוטיפ, הוא חיוני לניהול המטופלים ולהבנה הבסיסית של הפתולוגיה הזאת מעניינת. זה מתועד היטב כי ניתוח מורפולוגית של HM הוא כפוף השונות הבינמתבונן רחב והוא לא מספיק על עצמו כדי לסווג במדויק HM לתוך CHM ו PHM ולהבדיל אותם מפני הפלות הלא טוחנת הידרופית. ניתוח הקלדה מבוצע בעיקר ב-DNA ורקמות מ-formalin קבוע פרפין-מוטבע (FFPE) מוצרים של תפיסה, אשר יש פחות מאשר איכות אופטימלית ולכן עלול להוביל למסקנות שגויות. במאמר זה, פרוטוקולים מפורטים עבור מולטיטפלקס והזרמת cy, ניתוח הרקמות הטוחנת של FFPE מסופקים, יחד עם הפרשנות של תוצאות שיטות אלה, פתרון בעיות שלהם, אינטגרציה עם הערכה מורפולוגית , p57KIP2 אימונוהיסטוכימיה, ו זריחה באתרו היברידיזציה (דג) כדי להגיע לאבחנה נכונה ואיתנה. כאן, המחברים חולקים את השיטות והלקחים שנלמדו במהלך 10 השנים האחרונות מהניתוח של כ 400 מוצרים של ההתעברות.
Introduction
שומה מולה (HM) הוא הריון אנושי נורמלי המאופיינת התפתחות עובריים חריגים, היפרהפצה של trophoblast פיצוץ, ו הידרוpic ניוון של villi כוריוני (CV). מבחינה היסטורית, HM היה מחולק לשני סוגים, להשלים HM (CHM) חלקי HM (PHM) מבוסס רק על הערכה מורפולוגית1. עם זאת, הוכח כי הערכה מורפולוגית לבד אינה מספיקה כדי לסווג HM לתוך שני סוגי המשנה (CHM ו-phm) ולהבדיל אותם מפני הפלות לא-טוחנת2,3,4.
בגלל CHM ו PHM יש נטיות שונים כדי ממאירות, ולכן חשוב לקבוע במדויק את סוג גנוטיפ של HM כדי לספק מעקב מתאים וניהול לחולים. כתוצאה מכך, בעשורים האחרונים פותחו מספר מתודולוגיות והתפתחו לצורך זיהוי התרומה הורית לרקמות הטוחנת ולהשגת סיווג נכון של HM. אלה כוללים ניתוח קריוטיפ, פולימורפיזם פסים כרומוזומלית, אנטיגן לוקיציט אנושי (hla) סרולוגית הקלדה, מגבלת אורך קטע ההגבלה, מספר משתנה של הטנדם חוזר, גנוטיפ מיקרולוווין, הזרמת cy, ו p57 KIP2 אימונוהיסטוכימיה. זה איפשר חלוקה מדויקת של התפיסות HM מבוסס על תרומת הורים כדי genomes שלהם, כדלקמן: CHM, אשר דיפלואידי דמוי מונוספרמיק או דיפלואידי אנדרוגנטי, ו phm, אשר הם triploid, מפזרים ב 99% ו מונוספרמיק ב 1% מהמקרים5,6,7,8. יתר על כן, יש עוד סוג של גנוטיפ של HM אשר התפתחה בשני העשורים האחרונים, אשר הוא דיפלואידי biparental ורים. האחרון הוא בעיקר וחוזר ועלול להשפיע על בן משפחה בודד (במקרים משפחתיים) או לפחות שני בני משפחה. אלה דיפלואידי הורים שומות נגרמות בעיקר על ידי מוטציות רצסיבי ב NLRP7 או KHDC3L בחולים9,10,11,12. Diploid ביורית HM בחולים עם מוטציות רצוניות ב NLRP7 ניתן לאבחן כמו CHM או phm על ידי ניתוח מורפולוגית וזה נראה קשור לחומרת המוטציות בחולים13,14. בנוסף לסיווג של HM על פי הגנוטיפים שלהם, המבוא והשימוש של מספר שיטות גנוסטי מותר את ההבחנה של ישויות טוחנת שונות מפני הפלות שאינן מולרי, כגון תפיסות הורים ו תפיסות מסוגים אחרים5,15. תפיסות כאלה אולי יש כמה התפשטות trophoblast פיצוץ ומורפולוגיה villous חריגים המחקים, במידה מסוימת, כמה תכונות מורפולוגיות של HM.
המטרה של מאמר זה היא לספק פרוטוקולים מפורטים עבור מולטיפלקס וזרימה cy, לזרום עם הרקמה הקבועה של הפרפין-מוטבע (FFPE) רקמות, וניתוחים מקיפים של תוצאות שיטות אלה ושילובם עם שיטות אחרות עבור אבחנה נכונה וחותכת של רקמות טוחנת.
Protocol
Representative Results
Discussion
HM הם הריונות אנושיים חריגים עם חבלות הטרוגנית יש סוגים שונים היסטולוגית ו-genotypic, מה שהופך סיווג מדויק שלהם ואבחון מאתגרת. הערכה מורפולוגית היפואוולוגית הוכחה לעתים קרובות מדויק, ולכן לא אמין על עצמו לסווג HM לתוך CHM ו PHM ולהבדיל אותם מפני שאינם טוחנת הפלות. לכן, אבחנה מדויקת של HM דורש שימוש בש…
Divulgations
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
המחברים מודים סופי Patrier מריאן Parésy עבור שיתוף את הפרוטוקול המקורי cy, לנסות הפרוטוקולים, פרונגה ו Qiagen לספק אספקה וריאגנטים. עבודה זו נתמכת על ידי הרבייה והמכון הקנדי לחקר בריאות (מגב-130364) לR.S.
Materials
| BD FACS Canto II | BD BioSciences | 338960 | |
| Capillary electrophoresis instrument: Genomes Applied Biosystems 3730xl DNA Analyzer | Applied biosystems | 313001R | Service offered by the Centre for Applied Genomics (http://www.tcag.ca) |
| Citric acid | Sigma | 251275 | |
| Cytoseal 60, histopathology mounting medium | Fisher | 23244257 | |
| Eosin Y stock solution (1%) | Fisher | SE23-500D | |
| FCSalyzer – flow cytometry analysis software | SourceForge | – | https://sourceforge.net/projects/fcsalyzer/ |
| FFPE Qiagen kit | Qiagen | 80234 | |
| Forceps | Fine Science Tools | 11295-51 | For sectioning and for the cleaning process |
| Glacial Acetic Acid (Concentrated) | Sigma | A6283-500mL | |
| Glass coverslips: Cover Glass | Fisher | 12-541a | |
| Hematoxylin | Fisher | CS401-1D | |
| Highly deionized formamide: Hi-Di Formamide | Thermofisher | 4311320 | |
| IHC platform: Benchmark Ultra | Roche | – | |
| Kimwipes | Ultident | 30-34120 | |
| Microtome | Leica | RM2135 | |
| Microtome blades | Fisher | 12-634-1C | |
| Nitex filtering mesh, 48 microns | Filmar | 74011 | http://www.filmar.qc.ca/index.php?filet=produits&id=51&lang=en ; any other filter is suitable, but this is an inexpensive and effective option from a non-research company |
| p57 antibody | Cell Marque | 457M | |
| Pasteur pipette | VWR | 53499-632 | |
| PCR machine | Perkin Elmer, Applied Biosystems | GeneAmp PCR System 9700 | |
| PeakScanner 1.0 | Applied Biosystems | 4381867 | Software for genotyping analysis. |
| Pepsin from porcine gastric mucosa | Sigma | P7012 | |
| Polystyrene round-bottom tubes | BD Falcon | 352058 | |
| Positively charged slides: Superfrost Plus 25x75mm | Fisher | 1255015 | |
| PowerPlex 16 HS System | Promega Corporation | DC2102 | |
| Propidium Iodide | Sigma | P4864 | |
| Ribonuclease A from bovine pancreas | Sigma | R4875 | |
| Separation matrix: POP-7 Polymer | Thermofisher | 4352759 | |
| UltraPure Agarose | Fisher | 16500-500 | |
| Xylene | Fisher | X3P1GAL |
References
- Szulman, A. E., Surti, U. The syndromes of hydatidiform mole. II. Morphologic evolution of the complete and partial mole. American Journal of Obstetrics & Gynecology. 132 (1), 20-27 (1978).
- Fukunaga, M., et al. Interobserver and intraobserver variability in the diagnosis of hydatidiform mole. The American Journal of Surgical Pathology. 29 (7), 942-947 (2005).
- Gupta, M., et al. Diagnostic reproducibility of hydatidiform moles: ancillary techniques (p57 immunohistochemistry and molecular genotyping) improve morphologic diagnosis for both recently trained and experienced gynecologic pathologists. The American Journal of Surgical Pathology. 36 (12), 1747-1760 (2012).
- Howat, A. J., et al. Can histopathologists reliably diagnose molar pregnancy?. Journal of Clinical Pathology. 46 (7), 599-602 (1993).
- Banet, N., et al. Characteristics of hydatidiform moles: analysis of a prospective series with p57 immunohistochemistry and molecular genotyping. Modern Pathology. 27 (2), 238-254 (2014).
- Lipata, F., et al. Precise DNA genotyping diagnosis of hydatidiform mole. Obstetrics & Gynecology. 115 (4), 784-794 (2010).
- Buza, N., Hui, P. Partial hydatidiform mole: histologic parameters in correlation with DNA genotyping. International Journal of Gynecologic Pathology. 32 (3), 307-315 (2013).
- Fisher, R. A., et al. Frequency of heterozygous complete hydatidiform moles, estimated by locus-specific minisatellite and Y chromosome-specific probes. Human Genetics. 82 (3), 259-263 (1989).
- Murdoch, S., et al. Mutations in NALP7 cause recurrent hydatidiform moles and reproductive wastage in humans. Nature Genetics. 38 (3), 300-302 (2006).
- Parry, D. A., et al. Mutations causing familial biparental hydatidiform mole implicate c6orf221 as a possible regulator of genomic imprinting in the human oocyte. American Journal of Human Genetics. 89 (3), 451-458 (2011).
- Nguyen, N. M., Slim, R. Genetics and Epigenetics of Recurrent Hydatidiform Moles: Basic Science and Genetic Counselling. Current Obstetrics and Gynecology Reports. 3, 55-64 (2014).
- Sebire, N. J., Savage, P. M., Seckl, M. J., Fisher, R. A. Histopathological features of biparental complete hydatidiform moles in women with NLRP7 mutations. Placenta. 34 (1), 50-56 (2013).
- Nguyen, N. M., et al. Comprehensive genotype-phenotype correlations between NLRP7 mutations and the balance between embryonic tissue differentiation and trophoblastic proliferation. Journal of Medical Genetics. 51 (9), 623-634 (2014).
- Brown, L., et al. Recurrent pregnancy loss in a woman with NLRP7 mutation: not all molar pregnancies can be easily classified as either “partial” or “complete” hydatidiform moles. International Journal of Gynecologic Pathology. 32 (4), 399-405 (2013).
- Colgan, T. J., Chang, M. C., Nanji, S., Kolomietz, E. A Reappraisal of the Incidence of Placental Hydatidiform Mole Using Selective Molecular Genotyping. The International Journal of Gynecological Cancer. 26 (7), 1345-1350 (2016).
- Murphy, K. M., McConnell, T. G., Hafez, M. J., Vang, R., Ronnett, B. M. Molecular genotyping of hydatidiform moles: analytic validation of a multiplex short tandem repeat assay. The Journal of Molecular Diagnostics. 11 (6), 598-605 (2009).
