Summary

Combiner la microdissection de capture laser et le QPCR microfluidique pour analyser les profils transcriptionnels des cellules uniques : une approche de biologie des systèmes à la dépendance aux opioïdes

Published: March 08, 2020
doi:

Summary

Ce protocole explique comment collecter des neurones uniques, des microglies et des astrocytes du noyau central de l’amygdale avec une grande précision et une spécificité anatomique à l’aide de la microdissection de capture laser. En outre, nous expliquons notre utilisation de microfluidique RT-qPCR pour mesurer un sous-ensemble du transcriptome de ces cellules.

Abstract

L’hétérogénéité transcriptionnelle profonde dans les cellules simples anatomiquement adjacentes suggère que la fonctionnalité robuste de tissu puisse être réalisée par la diversité cellulaire de phénotype. Les expériences à cellule unique qui étudient la dynamique du réseau des systèmes biologiques démontrent des réponses cellulaires et tissulaires à diverses conditions à une résolution biologiquement significative. Ici, nous expliquons nos méthodes pour recueillir des cellules uniques à partir d’endroits anatomiquement spécifiques et mesurer avec précision un sous-ensemble de leurs profils d’expression génique. Nous combinons la microdissection de capture laser (LCM) avec des réactions microfluidiques de la chaîne quantitative de polymérase de transcription inverse (RT-qPCR). Nous utilisons également cette plate-forme microfluidique RT-qPCR pour mesurer l’abondance microbienne du contenu intestinal.

Introduction

La mesure des profils d’expression génique des cellules simples a démontré une hétérogénéité phénotypique étendue dans un tissu. Cette complexité a compliqué notre compréhension des réseaux biologiques qui régissent la fonction tissulaire. Notre groupe et d’autres ont exploré ce phénomène dans de nombreux tissus et conditions1,2,3,4,5,6. Ces expériences suggèrent non seulement que la régulation des réseaux d’expression génique sous-tend une telle hétérogénéité, mais aussi que la résolution à cellule unique révèle une complexité dans la fonction tissulaire que la résolution au niveau tissulaire ne parvient pas à apprécier. En effet, une petite minorité de cellules peut répondre à une condition ou un défi spécifique, mais l’impact de ces cellules sur la physiologie globale peut être considérable. En outre, une approche de biologie du système qui applique des méthodes multivariées à des jeux de données de haute dimension provenant de plusieurs types de cellules et tissus peut élucider les effets de traitement à l’échelle du système.

Nous combinons LCM et microfluidique RT-qPCR pour obtenir de tels ensembles de données. Nous adoptons cette approche ici en contraste avec la collecte de cellules individuelles via le tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) et en utilisant le séquençage de l’ARN (ARN-seq) pour mesurer leur transcriptome. L’avantage de LCM par rapport à FACS est que la spécificité anatomique exacte des cellules simples peut être documentée avec LCM, relativement et absolument. En outre, alors que l’ARN-seq peut mesurer plus de fonctionnalités que RT-qPCR, microfluidique RT-qPCR est moins cher et a une sensibilité plus élevée et la spécificité7.

Dans cette expérience représentative, nous avons étudié les effets de la dépendance aux opioïdes et le sevrage opioïde naltrexone-précipité sur le rat neuronal, microglia, et l’expression de gène d’astrocyte dans le noyau central de l’amygdale (CeA) et l’abondance de microflora intestinale4. Quatre groupes de traitement ont été analysés : 1) Placebo, 2) Morphine, 3) Naltrexone, et 4) Retrait(figure 1). Nous avons constaté que la dépendance aux opioïdes n’altait pas considérablement l’expression des gènes, mais que le sevrage des opioïdes incitait l’expression de gènes inflammatoires, Tnf en particulier. Les astrocytes étaient le type de cellule le plus affecté. Le microbiome intestinal a été profondément affecté par le sevrage des opioïdes comme indiqué par une diminution du rapport Firmicutes à Bacteroides, qui est un marqueur établi de dysbiose intestinale8,9.

Protocol

Cette étude a été réalisée conformément aux recommandations du Comité de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’Université Thomas Jefferson et du Drexel University College of Medicine. Le protocole a été approuvé par l’Université Thomas Jefferson et le Drexel University College of Medicine IACUC. 1. Modèle animal Insérez deux granules de sulfate de morphine à libération lente de 75 mg ou deux granules placebo sous-cutanée chez les rats sprague-Dawley m…

Representative Results

La sélection des cellules simples a été validée visuellement et moléculairement. Visuellement, la morphologie cellulaire a été vue avant la collecte de cellules. Les cellules recueillies ont ensuite été vues à la station DE QC et la tache cellulaire des noyaux (DAPI) chevauchait la fluorescence du marqueur de sélection de cellules uniques. La figure 2A montre des images représentatives d’une diapositive avec le cerveau pré-cerv…

Discussion

La biologie unicellulaire a démontré l’hétérogénéité des phénotypes cellulaires et la robustesse de la fonction tissulaire. Ces résultats ont permis de mieux comprendre l’organisation des systèmes biologiques à la fois à des échelles macro et micro. Ici, nous décrivons la combinaison de deux méthodes, LCM et qPCR microfluidique, pour obtenir des mesures de transcriptome à cellule unique qui fournissent la spécificité anatomique et l’exactitude transcriptionnelle à un coût relativement faible<str…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les travaux présentés ici ont été financés par NIH HLB U01 HL133360 attribué à JS et RV, NIDA R21 DA036372 décerné à JS et EVB, et T32 AA-007463 attribué à Jan Hoek à l’appui de SJO’S.

Materials

20X DNA Binding Dye Fluidigm 100-7609 NA
2x GE Assay Loading Reagent Fluidigm 85000802-R NA
48.48 Dynamic Array IFC for Gene Expression Fluidigm BMK-M-48.48 NA
96.96 Dynamic Array IFC for Gene Expression Fluidigm BMK-M-96.96 NA
Anti-Cd11β Antibody Genway Biotech CCEC48 Microglia Stain
Anti-NeuN Antibody, clone A60 EMD Millipore MAB377 Neuronal Stain
ArcturusXT Laser Capture Microdissection System Arcturus NA NA
Biomark HD Fluidigm NA RT-qPCR platform
Bovine Serum Antigen Sigma-Aldrich B4287
CapSure Macro LCM Caps ThermoFisher Scientific LCM0211 NA
CellDirect One-Step qRT-PCR Kit ThermoFisher Scientific 11753500 Lysis buffer solution components
DAPI ThermoFisher Scientific 62248 Nucleus Stain
DNA Suspension Buffer TEKnova T0221
Exonuclease I New Englnad BioLabs, Inc. M0293S NA
ExtracSure Sample Extraction Device ThermoFisher Scientific LCM0208 NA
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides ThermoFisher Scientific 22-037-246 Plain glass slides
GeneAmp Thin-Walled Reaction Tube ThermoFisher Scientific N8010611
GFAP Monoclonal Antibody ThermoFisher Scientific A-21294 Astrocyte Stain
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Superclonal™ Recombinant Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 ThermoFisher Scientific A28175 Seconadry Antibody
IFC Controller Fluidigm NA NA
RNaseOut ThermoFisher Scientific 10777019
SsoFast EvaGreen Supermix with Low Rox Bio-Rad PN 172-5211 Rox master mix
SuperScript VILO cDNA Synthesis Kit ThermoFisher Scientific 11754250 Contains VILO and SuperScript
T4 Gene 32 Protein New Englnad BioLabs, Inc. M0300S NA
TaqMan PreAmp Master Mix ThermoFisher Scientific 4391128 NA
TE Buffer TEKnova T0225 NA

References

  1. Park, J., et al. Inputs drive cell phenotype variability. Genome Research. 24, 930-941 (2014).
  2. Park, J., Ogunnaike, B., Schwaber, J., Vadigepalli, R. Identifying functional gene regulatory network phenotypes underlying single cell transcriptional variability. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 117, 87-98 (2015).
  3. Park, J., et al. Single-Cell Transcriptional Analysis Reveals Novel Neuronal Phenotypes and Interaction Networks Involved in the Central Circadian Clock. Frontiers in Neuroscience. 10, 481 (2016).
  4. O’Sullivan, S. J., et al. Single-Cell Glia and Neuron Gene Expression in the Central Amygdala in Opioid Withdrawal Suggests Inflammation With Correlated Gut Dysbiosis. Frontiers in Neuroscience. 13, 665 (2019).
  5. Buettner, F., et al. Computational analysis of cell-to-cell heterogeneity in single cell RNA-sequencing data reveals hidden subpopulations of cells. Nature Biotechnology. 33, 155-160 (2015).
  6. Papalexi, E., Satija, R. Single-cell RNA sequencing to explore immune cell heterogeneity. Nature Reviews Immunolology. 18, 35-45 (2018).
  7. SEQC/MAQC-III Consortium. A comprehensive assessment of RNA-seq accuracy, reproducibility and information content by the Sequencing Quality Control Consortium. Nature Biotechnology. 32, 903-914 (2014).
  8. Rowin, J., Xia, Y., Jung, B., Sun, J. Gut inflammation and dysbiosis in human motor neuron disease. Physiological Reports. 5, (2017).
  9. Tamboli, C. P., Neut, C., Desreumaux, P., Colombel, J. F. Dysbiosis in inflammatory bowel disease. Gut. 53, 1-4 (2004).
  10. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates: Hard Cover Edition. , (2006).
check_url/fr/60612?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
O’Sullivan, S. J., Reyes, B. A., Vadigepalli, R., Van Bockstaele, E. J., Schwaber, J. S. Combining Laser Capture Microdissection and Microfluidic qPCR to Analyze Transcriptional Profiles of Single Cells: A Systems Biology Approach to Opioid Dependence. J. Vis. Exp. (157), e60612, doi:10.3791/60612 (2020).

View Video