Summary

हेड स्पेस गैस क्रोमेटोग्राफी का उपयोग करके जेब्राफिश भ्रूण में इथेनॉल के स्तर का परिमाणीकरण

Published: February 11, 2020
doi:

Summary

यह काम भ्रूण प्रसंस्करण और इथेनॉल विश्लेषण के लिए उचित जोखिम विधियों से सिर अंतरिक्ष गैस क्रोमेटोग्राफी का उपयोग करएक ज़ेब्राफिश भ्रूण में इथेनॉल के स्तर की मात्रा निर्धारित करने के लिए एक प्रोटोकॉल का वर्णन करता है।

Abstract

भ्रूण अल्कोहल स्पेक्ट्रम विकार (एफएएसडी) चेहरे के डिस्मॉर्फोनी और न्यूरोलॉजिकल हानि सहित इथेनॉल-प्रेरित विकासात्मक दोषों के अत्यधिक परिवर्तनीय सातत्य का वर्णन करते हैं। एक जटिल विकृति के साथ, FASD हर साल संयुक्त राज्य अमेरिका में पैदा हुए 100 बच्चों में लगभग 1 को प्रभावित करता है। FASD की अत्यधिक चर प्रकृति के कारण, पशु मॉडल इथेनॉल-प्रेरित विकास दोषों की हमारी वर्तमान मशीनी समझ में महत्वपूर्ण साबित हुए हैं। प्रयोगशालाओं की बढ़ती संख्या ने इथेनॉल-प्रेरित विकासात्मक दोषों की जांच करने के लिए जेब्राफिश का उपयोग करने पर ध्यान केंद्रित किया है। जेब्राफिश बाहरी रूप से निषेचित, आनुवंशिक रूप से पथीय, पारदर्शी भ्रूण की बड़ी संख्या का उत्पादन करता है। यह शोधकर्ताओं को कई आनुवंशिक संदर्भों में इथेनॉल एक्सपोजर के समय और खुराक को ठीक से नियंत्रित करने और लाइव इमेजिंग तकनीकों के माध्यम से भ्रूण इथेनॉल एक्सपोजर के प्रभाव की मात्रा निर्धारित करने की अनुमति देता है। यह, आनुवंशिकी और मनुष्यों के साथ विकास दोनों के संरक्षण के उच्च स्तर के साथ संयुक्त, जेब्राफिश को एक शक्तिशाली मॉडल साबित किया है जिसमें इथेनॉल टेराटोजेनिकिटी के मशीनिस्ट आधार का अध्ययन करना है। हालांकि, इथेनॉल एक्सपोजर रेजिस्टेंस विभिन्न जेब्राफिश अध्ययनों के बीच भिन्न हैं, जिसने इन अध्ययनों में जेब्राफिश डेटा की व्याख्या को चकित कर दिया है। यहां हेड स्पेस गैस क्रोमेटोग्राफी का उपयोग करके जेब्राफिश भ्रूण में इथेनॉल सांद्रता की मात्रा निर्धारित करने के लिए एक प्रोटोकॉल है।

Introduction

भ्रूण अल्कोहल स्पेक्ट्रम विकार (एफएएसडी) भ्रूण इथेनॉल एक्सपोजर1से जुड़े न्यूरोलॉजिकल हानि और क्रैनियोफेशियल डिस्मोर्फोलोजी की एक विस्तृत सरणी का वर्णन करता है। इथेनॉल एक्सपोजर और आनुवंशिक पृष्ठभूमि के समय और खुराक सहित कई कारक, FASD2,3की भिन्नता में योगदान करते हैं। मनुष्यों में, इन चरों का जटिल संबंध फाएसडी के एटिजियोलॉजी का अध्ययन और समझबनाता है। पशु मॉडल इथेनॉल टेराटोजेनिकिटी के यंत्रवादी आधार के बारे में हमारी समझ विकसित करने में महत्वपूर्ण साबित हुए हैं। FASD के कई पहलुओं का अध्ययन करने के लिए विभिन्न प्रकार की पशु मॉडल प्रणालियों का उपयोग किया गया है और परिणाम मनुष्यों में एक्सपोजर में पाए जाने वाले परिणामउल्लेखनीय रूप से सुसंगत रहे हैं4. कृंतक मॉडल सिस्टम का उपयोग एफएएसडी के कई पहलुओं की जांच करने के लिए किया जाता है, जिसमें चूहे सबसे आम5,6,7हैं। इस कार्य का अधिकांश हिस्सा विकासात्मक दोषों पर ध्यान केंद्रित कर 8,हालांकि बाद में इथेनॉल के संपर्क में आने से विकासात्मक विसंगतियों के साथ – साथ9को भी दिखाया गया है । इसके अलावा, चूहों की आनुवंशिक क्षमताओं ने एफएएसडी10,11के आनुवंशिक आधार की जांच करने की हमारी क्षमता में काफी सहायता की है। चूहों में इन अध्ययनों से दृढ़ता से पता चलता है कि ध्वनि हेजहोग मार्ग, रेटिनोइक एसिड सिग्नलिंग, सुपरऑक्साइड डिमुटेस, नाइट्रिक ऑक्साइड सिंथास I, Aldh2 और Fancd28,10,11, 12,13,14,15,16,17,18,के साथ जीन-इथेनॉल बातचीत कर रहेहैं, 19,20,21. इन अध्ययनों से पता चलता है कि पशु मॉडल FASD और उसके अंतर्निहित तंत्र के बारे में हमारी समझ को आगे बढ़ाने के लिए महत्वपूर्ण हैं ।

जेब्राफिश इथेनॉल टेराटोजेनेसिस22,23के कई पहलुओं की जांच करने के लिए एक शक्तिशाली मॉडल प्रणाली के रूप में उभरा है . उनके बाहरी निषेचन, उच्च फेकंडिटी, आनुवंशिक ट्रैक्टेबिलिटी और लाइव इमेजिंग क्षमताओं के कारण, जेब्राफिश आदर्श रूप से इथेनॉल टेराटोजेनेसिस के समय, खुराक और आनुवंशिकी जैसे कारकों का अध्ययन करने के लिए अनुकूल हैं। इथेनॉल को भ्रूण का ठीक मंचन करने के लिए प्रशासित किया जा सकता है और भ्रूण को विकास प्रक्रियाओं के दौरान इथेनॉल के प्रत्यक्ष प्रभाव की जांच करने के लिए चित्रित किया जा सकता है। यह काम सीधे मनुष्यों से संबंधित हो सकता है, क्योंकि विकास के आनुवंशिक कार्यक्रम जेब्राफिश और मनुष्यों के बीच अत्यधिक संरक्षित हैं और इसलिए24एफएएसडी मानव अध्ययन का मार्गदर्शन करने में मदद कर सकते हैं। जबकि ज़ेब्राफिश का उपयोग इथेनॉल टेराटोजेनेसिस की जांच करने के लिए किया गया है, भ्रूण इथेनॉल सांद्रता की रिपोर्टकरने में आम सहमति की कमी मनुष्यों की तुलनामुश्किल 25बनाती है। स्तनधारी प्रणालियों में, रक्त-अल्कोहल का स्तर ऊतक इथेनॉल स्तर26से सीधे संबंधित है। जेब्राफिश अध्ययन के कई अपने संचार प्रणाली के पूर्ण गठन से पहले भ्रूण का इलाज। जांच करने के लिए कोई मातृ नमूना के साथ, भ्रूण के भीतर इथेनॉल के स्तर की मात्रा निर्धारित करने के लिए इथेनॉल सांद्रता का आकलन करने की प्रक्रिया की आवश्यकता होती है। यहां हम हेड स्पेस गैस क्रोमेटोग्राफी का उपयोग करके एक विकासशील जेब्राफिश भ्रूण में इथेनॉल सांद्रता की मात्रा निर्धारित करने की प्रक्रिया का वर्णन करते हैं।

Protocol

इस प्रक्रिया में उपयोग किए जाने वाले सभी जेब्राफिश भ्रूण ों को स्थापित आईएसयूसी प्रोटोकॉल27के बाद उठाया गया और पैदा किया गया । इन प्रोटोकॉलको ऑस्टिन में टेक्सास विश्वविद्यालय और लुइसविल विश?…

Representative Results

रक्त इथेनॉल का स्तर प्रारंभिक भ्रूणीय जेब्राफिश में निर्धारित नहीं किया जा सकता है, क्योंकि उनमें पूरी तरह से गठित परिसंचरण प्रणाली की कमी है। जेब्राफिश भ्रूण में इथेनॉल एकाग्रता के स्तर को निर्धारि…

Discussion

एक विकासात्मक मॉडल प्रणाली के रूप में, जेब्राफिश विकास पर पर्यावरणीय कारकों के प्रभाव का अध्ययन करने के लिए आदर्श रूप से अनुकूल हैं। वे बाहरी रूप से निषेचित भ्रूण की बड़ी संख्या का उत्पादन करते हैं, जो …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस लेख में प्रस्तुत शोध को राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान/नेशनल इंस्टीट्यूट ऑफ डेंटल एंड क्रैनिओफेशियल रिसर्च (एनआईएच/एनआईडीसीआर) R01DE020884 से जेकेई को पिछले अनुदानों द्वारा समर्थित किया गया था । और राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान/शराब के दुरुपयोग और शराब पर राष्ट्रीय संस्थान (NIH/NIAAA) F32AA021320 C.B.L. और राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थानों से वर्तमान अनुदान/शराब के दुरुपयोग पर राष्ट्रीय संस्थान (NIH/NIAAA) R00AA023560 से C.B.L. हम गैस क्रोमेटोग्राफ विश्लेषण प्रदान करने और सहायता करने के लिए रुएबेन गोंजालेस को धन्यवाद देते हैं। हम तियाहना ओंटिवरोस और डॉ जीना नोबल्स लेखन सहायता का शुक्रिया अदा करते हैं ।

Materials

Air Provided by contract to the university
Analytical Balance VWR 10204-962
AutoSampler, CP-8400 Varian Gas Chromatograph Autosampler
Calcium Chloride VWR 97062-590
Ethanol Decon Labs 2701
Gas chromatograph vial with polytetrafluoroethylene/silicone septum and plastic cap 2 mL Agilent 8010-0198 Can reuse the vials after cleaning, but not the caps/septa
Gas Chromatograph, CP-3800 Varian
Helium Provided by contract to the university
HP Innowax capillary column Agilent 19095N-123I 30 m x 0.53 mm x 1.0 μm film thick
Hyrdogen Provided by contract to the university
Magnesium Sulfate (Heptahydrate) Fisher Scientific M63-500
Microcentrifuge tube 1.5 mL Fisher Scientific 2682002
Micropipette tips 10 μL Fisher Scientific 13611106
Micropipette tips 1000 μL Fisher Scientific 13611127
Micropipette tips 200 μL Fisher Scientific 13611112
Petri dishes 100 mm Fisher Scientific FB012924
Pipetman L p1000L Micropipette Gilson FA10006M
Pipetman L p200L Micropipette Gilson FA10005M
Pipetman L p2L Micropipette Gilson FA10001M
Polytetrafluoroethylene/silicone septum and plastic cap Agilent 5190-7021 Replacement caps/septa for gas chromatograph vials
Potassium Chloride Fisher Scientific P217-500
Potassium Phosphate (Dibasic) VWR BDH9266-500G
Pronase VWR 97062-916
Silica Beads .5 mm Biospec Products 11079105z
Silica Beads 1.0 mm Biospec Products 11079110z
Sodium Bicarbonate VWR BDH9280-500G
Sodium Chloride Fisher Scientific S271-500
Sodium Phosphate (Dibasic) Fisher Scientific S374-500
Solid-phase microextraction fiber assembly Carboxen/Polydimethylsiloxane Millipore Sigma 57343-U Replacement fibers
Star Chromatography Workstation Varian Chromatography software
Thermogreen Low Bleed (LB-2) Septa Millipore Sigma 23154 Replacement inlet septa

References

  1. Elliott, E. J., Payne, J., Morris, A., Haan, E., Bower, C. Fetal alcohol syndrome: a prospective national surveillance study. Archive of Diseases in Childhood. 93 (9), 732-737 (2008).
  2. Cudd, T. A. Animal model systems for the study of alcohol teratology. Experimental Biology and Medicine. 230 (6), 389-393 (2005).
  3. Williams, J. F., Smith, V. C. Committee on Substance Abuse. Fetal Alcohol Spectrum Disorders. Pediatrics. 136 (5), 1395-1406 (2015).
  4. Patten, A. R., Fontaine, C. J., Christie, B. R. A comparison of the different animal models of fetal alcohol spectrum disorders and their use in studying complex behaviors. Frontiers in Pediatrics. 2, 93 (2014).
  5. Petrelli, B., Weinberg, J., Hicks, G. G. Effects of prenatal alcohol exposure (PAE): insights into FASD using mouse models of PAE. Biochemistry and Cell Biology. 96 (2), 131-147 (2018).
  6. Mayfield, J., Arends, M. A., Harris, R. A., Blednov, Y. A. Genes and Alcohol Consumption: Studies with Mutant Mice. International Review Neurobiology. 126, 293-355 (2016).
  7. Marquardt, K., Brigman, J. L. The impact of prenatal alcohol exposure on social, cognitive and affective behavioral domains: Insights from rodent models. Alcohol. 51, 1-15 (2016).
  8. Sulik, K. K. Genesis of alcohol-induced craniofacial dysmorphism. Experimental Biology and Medicine. 230 (6), 366-375 (2005).
  9. Lipinski, R. J., et al. Ethanol-induced face-brain dysmorphology patterns are correlative and exposure-stage dependent. PLoS One. 7 (8), 43067 (2012).
  10. Eberhart, J. K., Parnell, S. The genetics of fetal alcohol spectrum disorders. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 40 (6), 1154-1165 (2016).
  11. Becker, H. C., Diaz-Granados, J. L., Randall, C. L. Teratogenic actions of ethanol in the mouse: a minireview. Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 55 (4), 501-513 (1996).
  12. Ahlgren, S. C., Thakur, V., Bronner-Fraser, M. Sonic hedgehog rescues cranial neural crest from cell death induced by ethanol exposure. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (16), 10476-10481 (2002).
  13. Loucks, E. J., Ahlgren, S. C. Deciphering the role of Shh signaling in axial defects produced by ethanol exposure. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 85 (6), 556-567 (2009).
  14. Hong, M., Krauss, R. S. Cdon mutation and fetal ethanol exposure synergize to produce midline signaling defects and holoprosencephaly spectrum disorders in mice. PLoSGenetics. 8 (10), 1002999 (2012).
  15. Aoto, K., Shikata, Y., Higashiyama, D., Shiota, K., Motoyama, J. Fetal ethanol exposure activates protein kinase A and impairs Shh expression in prechordal mesendoderm cells in the pathogenesis of holoprosencephaly. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 82 (4), 224-231 (2008).
  16. Deltour, L., Ang, H. L., Duester, G. Ethanol inhibition of retinoic acid synthesis as a potential mechanism for fetal alcohol syndrome. The FASEB Journal. 10 (9), 1050-1057 (1996).
  17. Wentzel, P., Eriksson, U. J. Ethanol-induced fetal dysmorphogenesis in the mouse is diminished by high antioxidative capacity of the mother. Toxicological Sciences. 92 (2), 416-422 (2006).
  18. Karacay, B., Mahoney, J., Plume, J., Bonthius, D. J. Genetic absence of nNOS worsens fetal alcohol effects in mice. II: microencephaly and neuronal losses. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 39 (2), 221-231 (2015).
  19. Bonthius, D. J., Winters, Z., Karacay, B., Bousquet, S. L., Bonthius, D. J. Importance of genetics in fetal alcohol effects: null mutation of the nNOS gene worsens alcohol-induced cerebellar neuronal losses and behavioral deficits. Neurotoxicology. 46, 60-72 (2015).
  20. Bonthius, D. J., et al. Deficiency of neuronal nitric oxide synthase (nNOS) worsens alcohol-induced microencephaly and neuronal loss in developing mice. Brain Research. Developmental Brain Research. 138 (1), 45-59 (2002).
  21. Langevin, F., Crossan, G. P., Rosado, I. V., Arends, M. J., Patel, K. J. Fancd2 counteracts the toxic effects of naturally produced aldehydes in mice. Nature. 475 (7354), 53-58 (2011).
  22. Lovely, C. B., Fernandes, Y., Eberhart, J. K. Fishing for Fetal Alcohol Spectrum Disorders: Zebrafish as a Model for Ethanol Teratogenesis. Zebrafish. 13 (5), 391-398 (2016).
  23. Fernandes, Y., Buckley, D. M., Eberhart, J. K. Diving into the world of alcohol teratogenesis: a review of zebrafish models of fetal alcohol spectrum disorder. Biochemistry and Cell Biology. 96 (2), 88-97 (2018).
  24. McCarthy, N., et al. Pdgfra protects against ethanol-induced craniofacial defects in a zebrafish model of FASD. Development. 140 (15), 3254-3265 (2013).
  25. Lovely, C. B., Nobles, R. D., Eberhart, J. K. Developmental age strengthens barriers to ethanol accumulation in zebrafish. Alcohol. 48 (6), 595-602 (2014).
  26. Harris, R. A., Trudell, J. R., Mihic, S. J. Ethanol’s molecular targets. Science Signaling. 1 (28), (2008).
  27. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A guide for the laboratory use of zebrafish Danio (Brachydanio) rerio. , (1993).
  28. Lawson, N. D., Weinstein, B. M. In vivo imaging of embryonic vascular development using transgenic zebrafish. Developmental Biology. 248 (2), 307-318 (2002).
  29. Hagedorn, M., Kleinhans, F. W., Artemov, D., Pilatus, U. Water Distribution and permeability of zebrafish embryos, Brachydanio rerio. Journal of Experimental Zoology. 278 (6), 356-371 (1997).
  30. Lippi, G., et al. The alcohol used for cleansing the venipuncture site does not jeopardize blood and plasma alcohol measurement with head-space gas chromatography and an enzymatic assay. Biochemia Medica. 27 (2), 398-403 (2017).
  31. Poklis, J. L., Wolf, C. E., Peace, M. R. Ethanol concentration in 56 refillable electronic cigarettes liquid formulations determined by headspace gas chromatography with flame ionization detector (HS-GC-FID). Drug Testing and Analysis. 9 (10), 1637-1640 (2017).
  32. Heit, C., et al. Quantification of Neural Ethanol and Acetaldehyde Using Headspace GC-MS. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 40 (9), 1825-1831 (2016).
  33. Chun, H. J., Poklis, J. L., Poklis, A., Wolf, C. E. Development and Validation of a Method for Alcohol Analysis in Brain Tissue by Headspace Gas Chromatography with Flame Ionization Detector. Journal of Analytical Toxicology. 40 (8), 653-658 (2016).
  34. Schlatter, J., Chiadmi, F., Gandon, V., Chariot, P. Simultaneous determination of methanol, acetaldehyde, acetone, and ethanol in human blood by gas chromatography with flame ionization detection. Human and Experimental Toxicology. 33 (1), 74-80 (2013).
  35. Schier, C. J., Mangieri, R. A., Dilly, G. A., Gonzales, R. A. Microdialysis of ethanol during operant ethanol self-administration and ethanol determination by gas chromatography. Journal of Visualized Experiments. (67), e4142 (2012).
  36. Adalsteinsson, E., Sullivan, E. V., Mayer, D., Pfefferbaum, A. In vivo quantification of ethanol kinetics in rat brain. Neuropsychopharmacology. 31 (12), 2683-2691 (2006).
  37. Quertemont, E., Green, H. L., Grant, K. A. Brain ethanol concentrations and ethanol discrimination in rats: effects of dose and time. Psychopharmacology. 168 (3), 262-270 (2003).
  38. Flentke, G. R., Klinger, R. H., Tanguay, R. L., Carvan, M. J., Smith, S. M. An evolutionarily-conserved mechanism of calcium-dependent neurotoxicity. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 38 (5), 1255-1265 (2014).
  39. Reimers, M. J., Flockton, A. R., Tanguay, R. L. Ethanol- and acetaldehyde-mediated developmental toxicity in zebrafish. Neurotoxicology and Teratology. 26 (6), 769-781 (2004).
  40. Zhang, C., Ojiaku, P., Cole, G. J. Forebrain and hindbrain development in zebrafish is sensitive to ethanol exposure involving agrin, Fgf, and sonic hedgehog function. Birth Defects Research Part A: Clinical and Molecular Teratology. 97 (1), 8-27 (2013).
check_url/60766?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lovely, C. B. Quantification of Ethanol Levels in Zebrafish Embryos Using Head Space Gas Chromatography. J. Vis. Exp. (156), e60766, doi:10.3791/60766 (2020).

View Video