Målet med protokollen er å sammenligne forskjellige ekstracellulære matriksbeleggforhold (ECM) for å vurdere hvordan differensialbelegg påvirker vekstraten til induserte pluripotente stamceller (iPSCs). Spesielt tar vi sikte på å sette opp forhold for å oppnå optimal vekst av iPSC-kulturer.
Denne studien fokuserer på å forstå hvordan voksende iPSC-er på forskjellige ECM-beleggsubstrater kan påvirke cellekonfluens. En protokoll for å vurdere iPSC-sammenløp i sanntid er etablert uten behov for å telle celler i enkeltcellesuspensjon for å unngå vekstforstyrrelser. Et bildeanalysesystem med høyt innhold ble brukt til å vurdere iPCS-sammenløp på 4 forskjellige ECM-er over tid på en automatisert måte. Ulike analyseinnstillinger ble brukt til å vurdere cellekonfluens av adherente iPSC, og bare en liten forskjell (ved 24 og 48 timer med laminin) er observert om en 60, 80 eller 100% maske ble påført. Vi viser også at laminin fører til best samløp sammenlignet med Matrigel, vitronektin og fibronektin.
Induserte pluripotente stamceller (iPSCs) er hentet fra somatiske celler og kan differensieres i forskjellige celletyper. De brukes ofte som et system for å modellere sykdomspatogenese eller utføre narkotikascreening, og tilbyr også potensialet til å bli brukt i sammenheng med personlig medisin. Siden iPSC-er har stort potensial, er det viktig å karakterisere dem fullt ut for bruk som et pålitelig modellsystem. Vi har tidligere vist viktigheten av å dyrke iPSC-er i et hypoksisk miljø, da disse cellene er avhengige av glykolyse og et aerobt miljø kan forårsake redoks ubalanse1. iPSC-er er også sårbare for andre kulturforhold, spesielt det ekstracellulære miljøet. Optimalisering av kulturforhold er et sentralt tema for å holde dem sunne og spredende. En sunn iPSC-kultur vil føre til sunne differensierte celler som generelt er endepunktet for modellen som brukes til å forstå molekylære, cellulære og funksjonelle trekk ved spesifikke menneskelige lidelser eller cellulære prosesser.
I denne studien har en enkel protokoll blitt brukt til å teste sammenløpet av iPSC-er ved hjelp av forskjellige beleggforhold i separate brønner. iPSCs krever et materlag av murine embryonale fibroblaster (MEF) for å festes riktig, men sameksistensen av iPSCs og MEF gjør det vanskelig å utføre analyser som RNA eller proteinekstraksjon siden to populasjoner av celler er tilstede. For å unngå materlaget har forskjellige proteiner som tilhører den ekstracellulære matrisen (ECM) blitt brukt til å gjenskape den naturlige cellenisjen og å ha materfri iPSC-kultur. Spesielt er Matrigel et løselig kjellermembranpreparat ekstrahert fra Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) musesarkom, som er beriket i ekstracellulære matriksproteiner (dvs. laminin, kollagen IV, heparansulfatproteoglykaner, entactin / nidogen og vekstfaktorer)2,3. De andre brukte beleggforholdene er i stedet rensede proteiner med kjent relevans i byggingen av ECM-ene: laminin-521 er kjent for å bli utskilt av humane pluripotente stamceller (hPSCs) i embryoets indre cellemasse, og det er en av de vanligste lamininene i kroppen etter fødselen 4,5,6,7,8,9, 10,11; vitronektin er en xenofri cellekulturmatrise kjent for å støtte vekst og differensiering av hPSC 12,13,14,15,16; fibronektin er et ECM-protein som er viktig for virveldyrutvikling og vedlegg og vedlikehold av embryonale stamceller i en pluripotent tilstand 17,18,19,20,21,22,23,24,25. Siden forskjellige beleggforhold er tilgjengelige, sammenligner vi dem når det gjelder deres effekt på iPSCs sammenløp.
Bruken av iPSC for sykdomsmodellering og fremtidig legemiddelscreening sammen med deres mulige anvendelse i presisjonsmedisin gjør det til en teknologi av stor relevans, og av denne grunn tror vi at det er nødvendig å tydelig forstå in vitro-dyrkingstilstanden som bedre ligner den fysiologiske situasjonen til embryonale stamceller. I denne sammenheng testet vi forskjellige ECM-belegg ved hjelp av villtype iPSCs for å forstå forholdene som tillater cellene å forbli i en sunn og utifferentiert tilstand. I tillegg ti…
The authors have nothing to disclose.
Studien ble støttet av tilskudd fra Fondazione Bambino Gesù og Ricerca Corrente (det italienske helsedepartementet) til C.C. Vi vil gjerne takke Dr Enrico Bertini (Institutt for nevrovitenskap, Enhet for nevromuskulære og neurodegenerative sykdommer, Laboratorium for molekylærmedisin, Bambino Gesù Children’s Research Hospital), Dr Stefania Petrini (Confocal Microscopy Core Facility, Research Laboratories, Bambino Gesù Children’s Research Hospital), Giulia Pericoli (Institutt for onco-hematologi, Gen- og celleterapi, Children’s Research Hospital Bambino Gesù) og Roberta Ferretti (Institutt for onco-hematologi, gen- og celleterapi, Children’s Research Hospital Bambino Gesù) for vitenskapelige diskusjoner og teknisk hjelp. Maria Vinci er mottaker av et “Children with Cancer UK fellowship”.
10 mL Stripette Serological Pipets, Polystyrene, Individually Paper/Plastic Wrapped, Sterile | Corning | 4488 | Tool |
15 mL high-clarity polypropylene (PP) conical centrifuge tubes | Falcon | 352097 | Tool |
1x PBS (With Ca2+; Mg2+) | Thermofisher | 14040133 | Medium |
1x PBS (without Ca2+; Mg2+) | Euroclone | ECB4004L | Medium |
5 mL Stripette Serological Pipets, Polystyrene, Individually Paper/Plastic Wrapped, Sterile | Corning | 4487 | Tool |
Cell culture microplate, 96 WELL, PS, F-Bottom | Greiner Bio One | 655090 | Support |
Cell culture plate, 6 well | Costar | 3516 | Support |
DMEM (Dulbecco's Modified Eagle's Medium- high glucose) | Sigma | D5671 | Medium |
EDTA | Sigma | ED4SS-500g | Reagent |
Epi Episomal iPSC Reprogramming Kit | Invitrogen | A15960 | Reagent |
FAST – READ 102 | Biosigma | BVS100 | Tool |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 10270106 | Medium |
Fibronectin | Merck | FC010 | Coating |
Glycerol | Sigma | G5516 | Reagent |
H2O | MILLIQ | ||
Hoechst | Thermofisher | 33342 | Reagent |
Laminin 521 | Stem Cell Technologies | 77003 | Coating |
L-Glutamine (200 mM) | Gibco | LS25030081 | Reagent |
Matrigel | Corning Matrigel hESC-Qualified Matrix | 354277 | Coating |
Mouse embryonic fibroblasts (MEF) | Life Technologies | A24903 | Coating |
MTESR1 Medium | Stem Cell Technologies | 85851 | Medium |
MTESR1 Supplement | Stem Cell Technologies | 85852 | Medium |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140122 | Reagent |
Phalloidin | Sigma | P1951 | Reagent |
Vitronectin | Stem Cell Technologies | 7180 | Coating |
Y-27632 | Sigma | Y0503 | Reagent |