Summary

En Murine Model af fostereksponering for mødrebetændelse for at studere virkningerne af akut chorioamnionitis på nyfødte tarm udvikling

Published: June 24, 2020
doi:

Summary

Vi udviklede en model af chorioamnionitis at simulere fostereksponering for moderens inflammation (FEMI) uden komplikationer af levende organismer til at undersøge virkningerne af FEMI på udviklingen af afkom tarmkanalen. Dette giver mulighed for undersøgelse af mekanistiske årsager til udvikling af tarmskade efter chorioamnionitis.

Abstract

Chorioamnionitis er en almindelig foregribelse af præmature fødsel og er forbundet med mange af de sygeligheder af prematurity, herunder nekrotiserende enterocolitis (NEC). Der er dog endnu ikke fundet en mekanistisk forbindelse mellem disse to betingelser. Vi har vedtaget en murin model af chorioamnionitis involverer lipopolysaccharid (LPS)-induceret foster eksponering for moderens inflammation (FEMI). Denne model af FEMI fremkalder en steril moderlig, placental og føtal inflammatorisk kaskade, som også er til stede i mange tilfælde af klinisk chorioamnionitis. Selv om der findes modeller, der udnytter levende bakterier og mere præcist efterligner patofysiologien af en stigende infektion, der resulterer i chorioamnionitis, kan disse metoder forårsage indirekte virkninger på udviklingen af den umodne tarmkanal og det tilknyttede udviklende mikrobiom. Ved hjælp af denne protokol har vi vist, at LPS-induceret FEMI resulterer i en dosisafhængig stigning i graviditetstab og præmature fødsel samt forstyrrelse af normal tarmudvikling hos afkom. Desuden har vi vist, at FEMI øger tarmskade og serumcytokiner hos afkom betydeligt, samtidig med at de reducerer bæger- og Paneth-celler, som begge giver en første linje med medfødt immunitet mod tarmbetændelse. Selv om en lignende model af LPS-induceret FEMI er blevet brugt til at modellere sammenhængen mellem chorioamnionitis og efterfølgende abnormiteter i centralnervesystemet, så vidt vi ved, denne protokol er den første til at forsøge at belyse en mekanistisk sammenhæng mellem chorioamnionitis og senere forstyrrelser i tarm udvikling som en potentiel forbindelse mellem chorioamnionitis og NEC.

Introduction

De chorionic membraner spiller en integreret rolle i pattedyr graviditet. De omfatter chorion og amnion, som tjener flere funktioner. De omgiver og beskytter fosteret, letter parakrine signalering mellem moderens og fosterrum1, og skaber lokale feedback loops i de chorioniske membraner, som kan være involveret i at indlede parturition1. Den nuværende forståelse af membranerne indikerer, at amnionen giver strukturel barrierefunktion, og chorion giver en immunologisk buffer primært for at beskytte det udviklende foster mod moderens immunsystem2. Betændelse i disse membraner er kendt som chorioamnionitis. Historisk set blev diagnosen klinisk chorioamnionitis foretaget efter tilstedeværelsen af moderens feber plus en eller flere foster- eller moderlige kliniske fund3,4. Men selv om denne definition er klinisk nyttig, dens manglende præcision har gjort chorioamnionitis forskning udfordrende. I 2015 definerede et ekspertpanelværksted af Eunice Kennedy Shriver National Institute for Child Health and Human Development chorioamnionitis som intrauterin inflammation eller infektion eller begge dele (triple I)3. Denne afklaring er vigtig, fordi mens mikrobiel induceret infektion er en vigtig årsag til livmoder / fosterbetændelse, det forekommer mindre almindeligt end steril livmoder / fosterbetændelse5,6,7. Samlet set chorioamnionitis fortsat et betydeligt folkesundhedsproblem, som det ses i 2\u20124% af sigt leverancer og 25\u201230% af præmature leverancer8,9.

Chorioamnionitis kan have betydelige virkninger på fosteret og nyfødte. Det er veldokumenteret i litteraturen, at chorioamnionitis er forbundet med øget risiko for mange af sygeligheden af prematurity, herunder bronchopulmonal dysplasi10, cerebral hvidt stof skade11, intraventricular blødning12, retinopati af prematurity13, og både mistænkt og bekræftet tidlig debut neonatal sepsis14,15. Da vi er interesseret i skades- og reparationsmekanismer i tarmkanalen, er det vigtigt at bemærke, at chorioamnionitis også er forbundet med senere udvikling af nekrotiserende enterocolitis (NEC)15,16. NEC er en ødelæggende gastrointestinale sygdom hos for tidligt fødte spædbørn, der resulterer i en dysreguleret værtsrespons på inflammation og efterfølgende tarmnekrose17. Hvert år, NEC påvirker over 4000 spædbørn i USA, og op til en tredjedel af disse spædbørn dør af sygdommen18. Den patogenese af NEC sandsynligvis indebærer en kombination af tarm umodenhed, dysregulering af det umodne immunsystem, tarmbetændelse, og bakteriel translokation19, der kulminerede i en endelig fælles vej tarmnekrose. Vigtigere, starten af NEC ofte opstår uger efter fødslen og potentiel eksponering for chorioamnionitis, hvilket gør den mekanistiske sammenhæng mellem chorioamnionitis og efterfølgende udvikling af NEC uklar20. En potentiel mekanisme, hvormed chorioamnionitis kan bidrage til nec’s patofysiologi, er gennem opregulering af moderens immunsystem, der efterfølgende producerer en stærk fosterinflammatorisk reaktion, som kan forstyrre normale føtale udviklingsmønstre21,22,23.

Flere pattedyr modeller af chorioamnionitis findes i gnavere og får24,25,26,27,28,29,30,31,32. Der foreligger imidlertid kun få data om udviklingen af tarmkanalen ud over den første nyfødte periode efter chorioamnionitis-induceret fostereksponering for betændelse hos mødre (FEMI). For at undersøge forholdet mellem FEMI og den efterfølgende udvikling af skader på tarmkanalen har vi tilpasset lipopolysaccharid (LPS)-induceret FEMI-model. Lipopolysaccharider er en vigtig del af den ekstracellulære overflade på gram negative bakterier og er en potent stimulans af det medfødte immunsystem af flere eukaryote arter, herunder mennesker33. Maternal LPS injektion resulterer i en steril inflammatorisk kaskade uden de forvirrende virkninger af levende bakterier, og det er en veletableret model for induktion af præmature fødsel34, samt en model af akut chorioamnionitis og fosterinflammatorisk respons syndrom (FIRS), som er den mest alvorlige form for chorioamnionitis24,35. Det har også vist sig at fremkalde både cerebral hvid og grå stof skade i et får model36 og en murine model37,38,39,40. Men så vidt vi ved, er vi de første til at bruge denne model af chorioamnionitis og FEMI til at undersøge dens virkninger på udviklingen af mave-tarmkanalen tidligere fødsel, samt at undersøge en mulig mekanistisk forbindelse mellem chorioamnionitis og senere udvikling af NEC41,42.

Protocol

Alle dyreforsøg blev godkendt af University of Iowa Institutional Animal Care and Use Committee (protokol #8041401). Alle dyr blev anbragt i en sammenslutning for vurdering og akkreditering af laboratoriedyrpleje (AALAC) godkendt vivarium ved University of Iowa. Alle mus var vilde type stamme C57Bl/6J. 1. Etablering af FEMI hos gravide mus LPS-forberedelse Brug LPS afledt af Escherichia coli O55:B5 (lagerkoncentration 2 mg/mL). Lps-lagerkoncentrationen fo…

Representative Results

Udsættelse for FEMI på fosterdag 15 fører til tab af graviditet, der er afhængig af dosis, og en dosisafhængig for tidlig fødsel (figur 1)42. Til forsøgene valgte vi at bruge en LPS-dosis på 100 μg/kg for at minimere graviditetstab og prematurity (50% tab mellem både prematurity og intrauterin fostergang), mens vi udsatte fostrene for en betydelig inflammatorisk fornærmelse. Ved hjælp af denne tilgang undersøgte vi næste femi’…

Discussion

Chorioamnionitis virkninger 2\u20124% af sigt og 25\u201230% af præmature leverancer8,9. Virkningen af chorioamnionitis kan dog strække sig langt tidligere fødsel, da det har vist sig at have betydelige virkninger på fosteret og nyfødte10,11,12,13,14,15,</su…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev delvist støttet gennem National Institutes of Health (DK097335 & T32AI007260) og University of Iowa Stead Family Department of Pediatrics.

Materials

10% neutral buffered formalin Sigma HT501128
Alcian blue stain Newcomer supply 1003A
C57Bl6/J mice Jackson Laboratories 664
Ethanol Decon labs 2701
HCl Sigma H1758
Hematoxylin stain Leica 381562
LPS Sigma L2880
NaHCO3 Sigma S6014
Nikon Eclipse Ni-U Microscope Nikon 2CE-MQVJ-1
Periodic Acid ACROS H5106 CAS# 10450-59-9
RNAlater Thermofisher Am7021
Schiff's reagent Sigma S5133
Secor Imager 2400 Meso Scale Discovery (MSD)
V-Plex Assay Meso Scale Discovery (MSD)
Xylene Sigma 534056

References

  1. Myatt, L., Sun, K. Role of fetal membranes in signaling of fetal maturation and parturition. International Journal of Developmental Biology. 54 (2-3), 545-553 (2010).
  2. Verbruggen, S. W., Oyen, M. L., Phillips, A. T., Nowlan, N. C. Function and failure of the fetal membrane: Modelling the mechanics of the chorion and amnion. PLoS One. 12 (3), 0171588 (2017).
  3. Higgins, R. D., et al. Evaluation and Management of Women and Newborns With a Maternal Diagnosis of Chorioamnionitis: Summary of a Workshop. Obstetrics & Gynecology. 127 (3), 426-436 (2016).
  4. Peng, C. C., Chang, J. H., Lin, H. Y., Cheng, P. J., Su, B. H. Intrauterine inflammation, infection, or both (Triple I): A new concept for chorioamnionitis. Pediatrics and Neonatology. 59 (3), 231-237 (2018).
  5. Romero, R., et al. Prevalence and clinical significance of sterile intra-amniotic inflammation in patients with preterm labor and intact membranes. American Journal of Reproductive Immunology. 72 (5), 458-474 (2014).
  6. Romero, R., et al. Sterile intra-amniotic inflammation in asymptomatic patients with a sonographic short cervix: prevalence and clinical significance. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal. , 1-17 (2014).
  7. Romero, R., et al. Sterile and microbial-associated intra-amniotic inflammation in preterm prelabor rupture of membranes. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 28 (12), 1394-1409 (2015).
  8. Goldenberg, R. L., Culhane, J. F., Iams, J. D., Romero, R. Epidemiology and causes of preterm birth. Lancet. 371 (9606), 75-84 (2008).
  9. Erdemir, G., et al. Histological chorioamnionitis: effects on premature delivery and neonatal prognosis. Pediatrics and Neonatology. 54 (4), 267-274 (2013).
  10. Metcalfe, A., Lisonkova, S., Sabr, Y., Stritzke, A., Joseph, K. S. Neonatal respiratory morbidity following exposure to chorioamnionitis. BMC Pediatrics. 17 (1), 128 (2017).
  11. Anblagan, D., et al. Association between preterm brain injury and exposure to chorioamnionitis during fetal life. Scientific Reports. 6, 37932 (2016).
  12. Villamor-Martinez, E., et al. Corrigendum: Chorioamnionitis Is a Risk Factor for Intraventricular Hemorrhage in Preterm Infants: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Physiology. 10, 102 (2019).
  13. Villamor-Martinez, E., et al. Chorioamnionitis as a risk factor for retinopathy of prematurity: An updated systematic review and meta-analysis. PLoS One. 13 (10), 0205838 (2018).
  14. Randis, T. M., et al. Incidence of early-onset sepsis in infants born to women with clinical chorioamnionitis. Journal of Perinatal Medicine. 46 (8), 926-933 (2018).
  15. Rodrigo, F. G. M., Henriquez F, G. G., Aloy, F. J., Perez, G. A. A. Outcomes of very-low-birth-weight infants exposed to maternal clinical chorioamnionitis: a multicentre study. Neonatology. 106 (3), 229-234 (2014).
  16. Been, J. V., Lievense, S., Zimmermann, L. J., Kramer, B. W., Wolfs, T. G. Chorioamnionitis as a risk factor for necrotizing enterocolitis: a systematic review and meta-analysis. Journal of Pediatrics. 162 (2), 236-242 (2013).
  17. Tanner, S. M., et al. Pathogenesis of necrotizing enterocolitis: modeling the innate immune response. American Journal of Pathology. 185 (1), 4-16 (2015).
  18. Fitzgibbons, S. C., et al. Mortality of necrotizing enterocolitis expressed by birth weight categories. Journal of Pediatric Surgery. 44 (6), 1075-1076 (2009).
  19. Vongbhavit, K., Underwood, M. A. Prevention of Necrotizing Enterocolitis Through Manipulation of the Intestinal Microbiota of the Premature Infant. Clinical Therapeutics. 38 (4), 716-732 (2016).
  20. Yee, W. H., et al. Incidence and timing of presentation of necrotizing enterocolitis in preterm infants. Pediatrics. 129 (2), 298-304 (2012).
  21. Gantert, M., et al. Chorioamnionitis: a multiorgan disease of the fetus. Journal of Perinatology. 30, 21-30 (2010).
  22. Hudalla, H., et al. LPS-induced maternal inflammation promotes fetal leukocyte recruitment and prenatal organ infiltration in mice. Pediatric Research. 84 (5), 757-764 (2018).
  23. Yamada, N., et al. Histological severity of fetal inflammation is useful in predicting neonatal outcome. Placenta. 36 (12), 1490-1493 (2015).
  24. Wolfe, K. B., et al. Modulation of lipopolysaccharide-induced chorioamnionitis in fetal sheep by maternal betamethasone. Reproductive Sciences. 20 (12), 1447-1454 (2013).
  25. Normann, E., et al. A novel mouse model of Ureaplasma-induced perinatal inflammation: effects on lung and brain injury. Pediatric Research. 65 (4), 430-436 (2009).
  26. Burd, I., Brown, A., Gonzalez, J. M., Chai, J., Elovitz, M. A. A mouse model of term chorioamnionitis: unraveling causes of adverse neurological outcomes. Reproductive Sciences. 18 (9), 900-907 (2011).
  27. Dell’Ovo, V., et al. An animal model for chorioamnionitis at term. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 213 (3), 387 (2015).
  28. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. Journal of Infectious Diseases. 210 (2), 265-273 (2014).
  29. Breen, K., et al. TLR-4-dependent and -independent mechanisms of fetal brain injury in the setting of preterm birth. Reproductive Sciences. 19 (8), 839-850 (2012).
  30. Burd, I., Balakrishnan, B., Kannan, S. Models of fetal brain injury, intrauterine inflammation, and preterm birth. American Journal of Reproductive Immunology. 67 (4), 287-294 (2012).
  31. Agrawal, V., et al. Role of Notch signaling during lipopolysaccharide-induced preterm labor. Journal of Leukocyte Biology. 100 (2), 261-274 (2016).
  32. Filipovich, Y., Klein, J., Zhou, Y., Hirsch, E. Maternal and fetal roles in bacterially induced preterm labor in the mouse. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (3), 381-389 (2016).
  33. Alexander, C., Rietschel, E. T. Bacterial lipopolysaccharides and innate immunity. Journal of Endotoxin Research. 7 (3), 167-202 (2001).
  34. McCarthy, R., et al. Mouse models of preterm birth: suggested assessment and reporting guidelines. Biology of Reproduction. 99 (5), 922-937 (2018).
  35. Rueda, C. M., et al. Lipopolysaccharide-Induced Chorioamnionitis Promotes IL-1-Dependent Inflammatory FOXP3+ CD4+ T Cells in the Fetal Rhesus Macaque. Journal of Immunology. 196 (9), 3706-3715 (2016).
  36. Gavilanes, A. W., et al. Chorioamnionitis induced by intraamniotic lipopolysaccharide resulted in an interval-dependent increase in central nervous system injury in the fetal sheep. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 200 (4), 431-438 (2009).
  37. Boksa, P. Effects of prenatal infection on brain development and behavior: a review of findings from animal models. Brain, Behavior, and Immunity. 24 (6), 881-897 (2010).
  38. Knuesel, I., et al. Maternal immune activation and abnormal brain development across CNS disorders. Nature Reviews Neurology. 10 (11), 643-660 (2014).
  39. Garay, P. A., Hsiao, E. Y., Patterson, P. H., McAllister, A. K. Maternal immune activation causes age- and region-specific changes in brain cytokines in offspring throughout development. Brain, Behavior, and Immunity. 31, 54-68 (2013).
  40. Smith, S. E., Li, J., Garbett, K., Mirnics, K., Patterson, P. H. Maternal immune activation alters fetal brain development through interleukin-6. Journal of Neuroscience. 27 (40), 10695-10702 (2007).
  41. Elgin, T. G., et al. Fetal exposure to maternal inflammation interrupts murine intestinal development and increases susceptibility to neonatal intestinal injury. Disease Models & Mechanisms. 12 (10), (2019).
  42. Fricke, E. M., et al. Lipopolysaccharide-induced maternal inflammation induces direct placental injury without alteration in placental blood flow and induces a secondary fetal intestinal injury that persists into adulthood. American Journal of Reproductive Immunology. 79 (5), 12816 (2018).
  43. Wynn, J. L., et al. Targeting IL-17A attenuates neonatal sepsis mortality induced by IL-18. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (19), 2627-2635 (2016).
  44. Brown, K. S., et al. Tumor necrosis factor induces developmental stage-dependent structural changes in the immature small intestine. Mediators of Inflammation. 2014, 852378 (2014).
  45. McElroy, S. J., et al. The ErbB4 ligand neuregulin-4 protects against experimental necrotizing enterocolitis. American Journal of Pathology. 184 (10), 2768-2778 (2014).
  46. McElroy, S. J., et al. Tumor necrosis factor receptor 1-dependent depletion of mucus in immature small intestine: a potential role in neonatal necrotizing enterocolitis. American Journal of Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. 301 (4), 656 (2011).
  47. Stanford, A. H., et al. A direct comparison of mouse and human intestinal development using epithelial gene expression patterns. Pediatric Research. , (2019).
  48. McElroy, S. J., Weitkamp, J. H. Innate Immunity in the Small Intestine of the Preterm Infant. NeoReviews. 12 (9), 517-526 (2011).
  49. McElroy, S. J., Underwood, M. A., Sherman, M. P. Paneth cells and necrotizing enterocolitis: a novel hypothesis for disease pathogenesis. Neonatology. 103 (1), 10-20 (2013).
  50. Park, B. S., Lee, J. O. Recognition of lipopolysaccharide pattern by TLR4 complexes. Experimental & Molecular Medicine. 45, 66 (2013).
  51. Lester, S. N., Li, K. Toll-like receptors in antiviral innate immunity. Journal of Molecular Biology. 426 (6), 1246-1264 (2014).
  52. Pott, J., et al. Age-dependent TLR3 expression of the intestinal epithelium contributes to rotavirus susceptibility. PLOS Pathogens. 8 (5), 1002670 (2012).
check_url/fr/61464?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Juber, B. A., Elgin, T. G., Fricke, E. M., Gong, H., Reese, J., McElroy, S. J. A Murine Model of Fetal Exposure to Maternal Inflammation to Study the Effects of Acute Chorioamnionitis on Newborn Intestinal Development. J. Vis. Exp. (160), e61464, doi:10.3791/61464 (2020).

View Video