Summary

Natrium taurocholat induceret svær akut pancreatitis i C57BL/6 Mus

Published: June 28, 2021
doi:

Summary

Dyremodeller for alvorlig akut pancreatitis muliggør undersøgelse af patofysiologiske ændringer i den indledende fase, hvilket letter observation af udviklingen af inflammatoriske begivenheder. Her giver vi en protokol for induktion af svær akut galde pancreatitis ved retrograd infusion af natrium taurocholat i bugspytkirtlen kanalen af bedøvet C57BL/6 mus.

Abstract

Galde akut betændelsesinduktion ved natrium taurocholatinfusion er blevet meget udbredt af det videnskabelige samfund på grund af repræsentationen af den menneskelige kliniske tilstand og reproduktion af inflammatoriske hændelser svarende til udbrud af klinisk galde pancreatitis. Sværhedsgraden af bugspytkirtelskader kan vurderes ved at måle koncentrationen, hastigheden og mængden af den infunderede galdesyre. Denne undersøgelse giver en opdateret tjekliste over de materialer og metoder, der anvendes i protokollen reproduktion og viser de vigtigste resultater fra denne akutte pancreatitis (AP) model. De fleste af de tidligere publikationer har begrænset sig til at reproducere denne model hos rotter. Vi har anvendt denne metode i mus, hvilket giver yderligere fordele (dvs. tilgængeligheden af et arsenal af reagenser og antistoffer til disse dyr sammen med muligheden for at arbejde med genetisk modificerede stammer af mus), der kan være relevante for undersøgelsen. For akut induktion af pancreatitis hos mus præsenterer vi en systematisk protokol med en defineret dosis på 2,5 % natrium taurocholat ved infusionshastighed 10 μL/min i 3 min i C57BL/6 mus, der når sit maksimale sværhedsgradsniveau inden for 12 timer efter induktion og fremhæver resultater med resultater, der validerer metoden. Med praksis og teknik er den samlede anslåede tid, fra induktion af anæstesi til afslutningen af infusionen, 25 min pr. Dyr.

Introduction

Hos mennesker er tilstedeværelsen af galdesten den mest almindelige årsag til bugspytkirtel på grund af obstruktionen af den terminale del af choledochal, afbryder strømmen af bugspytkirtelsekretioner og forårsager en intens inflammatorisk proces i bugspytkirtlen med en stigning i koncentrationen af fordøjelsesenzymer i serum og inflammatoriske mæglere1,2.

To forskellige teorier er blevet foreslået at forklare udviklingen af akut pancreatitis (AP). Den “fælles kanal” teori tyder på, at stenene til stede i galdeblæren hindre distal fælles galdegang system, så galde sekretion til at flyde tilbageskridt i bugspytkirtlen kanalen. Den anden teori (“kanal obstruktion” teori) tyder på, at obstruktion af bugspytkirtlen kanalen ved overskydende galdesten forårsager en blokering i strømmen af bugspytkirtel sekretion til duodenum, forårsager ductal hypertension3. Selv om de mekanismer, der fører til akut galde pancreatitis ikke er fuldt forstået, resultatet er en intens inflammatorisk proces. Fordøjelsesenzymudbrud og bugspytkirtel selvfordøjelse føre til histopatologiske ændringer, en stigning i inflammatoriske cytokiner (IL-1β, IL-6, TNF-α) i ascitisk væske og serum, og en stigning i akut fase proteiner4,5,6.

Alvorlig akut pancreatitis er en tilstand, der fortjener klinisk opmærksomhed på grund af inddragelse af flere organer og en høj dødelighed risiko. Dyremodeller til reproduktion af akut pancreatitis (AP) er vigtige, da disse forklarer sygdommens patofysiologiske mekanismer og hjælper med at overvåge udviklingen af inflammatoriske begivenheder, startende fra de indledende stadier af sygdommen. Dette er normalt ikke muligt i klinikkerne2,7. Derudover er adgang til bugspytkirtelvæv let i prækliniske undersøgelser, der favoriserer udredningen af ændringer forbundet med kliniske tilstande8 sammen med muligheden for at arbejde med isogene arter, eliminere uønskede variabler og spejle klinisk lighed med de resultater, der observeres i den menneskelige tilstand9.

Galde- og ikke-galdemodeller til induktion af akut pancreatitis hos rotter og mus arter er ofte blevet undersøgt i den videnskabelige litteratur. Ikke-galde metoder til induktion omfatter administration af supramaximal stimulerende doser af cholecystokinin secretagogue eller dens analoge cerulein10; administration af næsten dødelige doser af L-arginin; eller administration af en cholin-mangelfuld kost suppleret med ethionin11. Selv om disse metoder er nemme at reproducere og resultere i bugspytkirtelbetændelse, de ikke replikere de mekanismer, der i teorien udløser AP (dvs., refluks af galde sekretion i bugspytkirtlen kanalen). Den teknik, der adresserer galdemodellen er baseret på retrograd infusion af galdesyrer i bugspytkirtlen kanalen og kræver veluddannede forskere til at udføre denne protokol. Flere undersøgelser er blevet offentliggjort ved hjælp af denne metode hos rotter (tilsyneladende af tekniske årsager, da disse forsøg involverer kirurgiske procedurer)12,13. Men, tilgangen i mus kan tilbyde mere interessante resultater i studiet af inflammation3,14,15. I denne undersøgelse vil vi vise en tjekliste over de trin, der skal følges til reproduktion af alvorlig akut pancreatitis ved infusion af natrium taurocholat i C57BL/6 bedøvede mus.

For værker, der involverer behovet for forsøg med antistoffer og analyse af gen- og proteinekspressionen, er brugen af mus at foretrække på grund af det større arsenal af materialer til disse dyr og muligheden for at arbejde med isogen- og knockoutarter, blandt andre, der kan bruges relevante for undersøgelser16. Mus C57BL/6 er en indavlet stamme af mus, der oprindeligt blev udviklet til undersøgelse af antitumoraktivitet og immunologi. Denne stamme foretrækkes i stigende grad af forskere for at være isogen, hvilket giver mulighed for en større reproducerbarhed af resultater, hvilket kan indebære anvendelse af et mindre antal dyr i et forsøg og mindre variation i resultaterne mellem den samme gruppe17,18.

Perides et al. (2010)14 offentliggjorde en protokol for AP induktion hos mus ved natrium taurocholat infusion. Her opdaterer vi denne model ved hjælp af en højere natrium taurocholatkoncentration (2,5%) i C57BL/6 mus med et defineret volumen og infusionshastighed (figur 1). Det maksimale sværhedsgradsniveau nås inden for 12 timer efter induktion hos mus. Højden af koncentrationen af IL-6 både i serum og i bughulen er korreleret med progressionen af AP. Med praksis er den samlede anslåede tid fra induktion af anæstesi til afslutningen af infusionen 25 min pr. Dyr. Det er vigtigt, at en uddannet forsker udfører dette eksperiment. For at sikre, at opløsningen sprøjtes korrekt ind i den fælles galdegang, skal du udføre flere pilottræningssessioner ved hjælp af methylenblåt i stedet for natrium taurocholat.

Protocol

Denne protokol blev godkendt af den etiske komité for brug af dyr fra USP Medicine School, Num. Project: 1343/2019-CEUA: FMUSP. Til denne protokol blev der anvendt C57BL/6 mus på 6 uger, der vejede 20 ± 2 g (n = 9/gruppe). 1. Laparotomi Bedøve dyr med xylazin (10 mg/kg) og ketaminopløsning (80 mg/kg), subkutant (0,1 mL/10g kropsvægt) ved hjælp af en 1 mL sprøjte og 13×0,45 mm nål 26G 1/2. Kontroller for tilstrækkelig anæstesi dybde ved at klemme tåen. Styr kropstemperatur…

Representative Results

Pancreatitis sværhedsgrad blev scoret mellem 0-3 i henhold til Schmidt’s skala21 , hvor nul svarer til fraværet, 1 svarer til en mild tilstedeværelse ( 50%) (tabel 1). De udførte målinger var plasma amylase aktivitet, bugspytkirtelødem, acinar celle, skade / nekrose, bugspytkirtelbetændelse (ved histologi analyse af H &E-farvede se…

Discussion

Metoden til at fremkalde akut pancreatitis ved retrograd natrium taurocholat infusion er allerede blevet påvist hos rotter22,23,24. Tre lignende værker, der blev offentliggjort i 2008, 2010 og 2015, fungerede som reference for protokollen3,14,15. I dette arbejde opregner vi alle de kritiske trin til gengivelse af denne metode i C57BL/…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne tak til Post Graduation Program i Medicinsk Klinik ved Universitetet i São Paulo; Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) og University of São Paulo Medical School (FMUSP).

Materials

0.4 mm needle INTRAG MEDICAL TECH 90183210 30G
 0.54 mm polyethylene tube Tygon 730010
Styrofoam block
masking tape for mounting the mouse Missner 1236
Infusion pump scheduled to 10µL / min. Havard aparatus-Peristaltic Pump Series MA1 55-7766  Model 66 Small Peristaltic
Scissors and forceps
Antiseptic providine iodine Pfizer 12086OR antisepsis
70% ethanol SIGMA 459836 Mix 700 mL 100% ethanol with 300 mL dH2O
Razor blade Lord bdk9a1ghk6 For trichotomy
Sodium taurocholate Sigma-Aldrich 86339- 1G CAS NUMBER- 345909-26-4
microvessel clip Medicon Surgical 56.87.35 Approximator, opening 4.0 mm, closing pressure 30 - 40 g
6-0 prolene Bioline 5162 Suture line
Ketamin NP (cloridrato de dextrocetamina) 50mg/mL Cristália
Xilazine 2% Syntec
Sterile saline solution (0.9% (wt/vol) saline) Farmace 105851
Methyl Blue Sigma-Aldrich Chemicals M5528
MILLIPLEX MAP Mouse Cytokine/Chemokine Magnetic Bead Panel – Immunology Multiplex Assay MERCK MCYTOMAG-70K Simultaneously analyze multiple cytokine and chemokine biomarkers with Bead-Based Multiplex Assays using the Luminex technology, in mouse serum, plasma and cell culture samples.
Amylase Assay Labtest 11
Desmarres retractor 13-mm
width
ROBOZ RS-6672

References

  1. Li, X., et al. Significantly different clinical features between hypertriglyceridemia and biliary acute pancreatitis: A retrospective study of 730 patients from a tertiary center. BMC Gastroenterology. 18 (1), 1-8 (2018).
  2. Rechreche, H., Abbes, A., Iovanna, J. L. Induction of antioxidant mechanisms in lung during experimental pancreatitis in rats. Indian Journal of Experimental Biology. 58 (5), 297-305 (2020).
  3. T, L., et al. Intraductal infusion of taurocholate followed by distal common bile duct ligation leads to a severe necrotic model of pancreatitis in mice. Pancreas. 44 (3), (2015).
  4. Botoi, G., Andercou, A. Interleukin 17-prognostic marker of severe acute pancreatitis. Chirurgia. 104 (4), 431-438 (2009).
  5. Li, D., Li, J., Wang, L., Zhang, Q. Association between IL-1beta, IL-8, and IL-10 polymorphisms and risk of acute pancreatitis. Genetics and Molecular Research. 14 (2), 6635-6641 (2015).
  6. Feng, C., et al. Effect of peritoneal lavage with ulinastatin on the expression of NF-kappaB and TNF-alpha in multiple organs of rats with severe acute pancreatitis. Experimental and Therapeutic Medicine. 10 (6), 2029-2034 (2015).
  7. Fang, D. Z., et al. Effects of sildenafil on inflammatory injury of the lung in sodium taurocholate-induced severe acute pancreatitis rats. International Immunopharmacology. 80, (2020).
  8. Ceranowicz, P., Cieszkowski, J., Warzecha, Z., Dembinski, A. Experimental models of acute pancreatitis. Postępy Higieny i Medycyny Doświadczalnej(Online). 69, 264-269 (2015).
  9. Wan, M. H., et al. Review of experimental animal models of biliary acute pancreatitis and recent advances in basic research. HPB (Oxford). 14 (2), 73-81 (2012).
  10. Mayerle, J., Sendler, M., Lerch, M. M. Secretagogue (Caerulein) induced pancreatitis in rodents. Pancreapedia: The Exocrine Pancreas Knowledge Base. (1), (2013).
  11. Wang, N., et al. Resveratrol protects against L-arginine-induced acute necrotizing pancreatitis in mice by enhancing SIRT1-mediated deacetylation of p53 and heat shock factor 1. International Journal of Molecular Medicine. 40 (2), 427-437 (2017).
  12. Ma, Z. H., et al. Effect of resveratrol on peritoneal macrophages in rats with severe acute pancreatitis. Inflammation Research. 54 (12), 522-527 (2005).
  13. Souza, L. J., et al. Anti-inflammatory effects of peritoneal lavage in acute pancreatitis. Pancreas. 39 (8), 1180-1184 (2010).
  14. Perides, G., Acker, G. J. v., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct. Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).
  15. Wittel, U. A., et al. Taurocholate-induced pancreatitis: a model of severe necrotizing pancreatitis in mice. Pancreas. 36 (2), 9-21 (2008).
  16. Tao, L., Reese, T. A. Making mouse models that reflect human immune responses. Trends Immunology. 38 (3), 181-193 (2017).
  17. Vandamme, T. F. Use of rodents as models of human diseases. Journal of Pharmacy and Bioallied Science. 6 (1), 2-9 (2014).
  18. Song, H. K., Hwang, D. Y. Use of C57BL/6N mice on the variety of immunological researches. Laboratory Animal Research. 33 (2), 119-123 (2017).
  19. Bogdanske, J. J., Stelle, S. H. -. V., Riley, M. V., Schiffman, B. M. . Suturing Principles and Techniques in Laboratory Animal Surgery. 1st edition. (1), (2010).
  20. Ray, A., Dittel, B. N. Isolation of mouse peritoneal cavity cells. Journal of Visualized Experiments. (35), e1488 (2010).
  21. Schmidt, J., et al. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy. Annals of Surgery. 215 (1), 44-56 (1992).
  22. Liu, D. L., et al. Resveratrol improves the therapeutic efficacy of bone marrow-derived mesenchymal stem cells in rats with severe acute pancreatitis. International Immunopharmacology. 80, 106128 (2020).
  23. Yang, X. F., et al. Chaiqin chengqi decoction alleviates severe acute pancreatitis associated acute kidney injury by inhibiting endoplasmic reticulum stress and subsequent apoptosis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 125 (12), 110024 (2020).
  24. Yang, X. F., et al. Chaiqin chengqi decoction alleviates severe acute pancreatitis associated acute kidney injury by inhibiting endoplasmic reticulum stress and subsequent apoptosis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 125, 110024 (2020).
  25. Venglovecz, V., Z, R., Hegyi, P. The effects of bile acids on pancreatic ductal cells. Pancreapedia: The Exocrine Pancreas Knowledge Base. (1), (2019).
  26. Roberts, S. E., Akbari, A., Thorne, K., Atkinson, M., Evans, P. A. The incidence of acute pancreatitis: impact of social deprivation, alcohol consumption, seasonal and demographic factors. Alimentary Pharmacology and Therapeutics. 38 (5), 539-548 (2013).
  27. Lerch, M. M., Gorelick, F. S. Models of acute and chronic pancreatitis. Gastroenterology. 144 (6), 1180-1193 (2013).
  28. Nakamura, K., Fukatsu, K., Sasayama, A., Yamaji, T. An immune-modulating formula comprising whey peptides and fermented milk improves inflammation-related remote organ injuries in diet-induced acute pancreatitis in mice. Biosci Microbiota Food Health. 37 (1), 1-8 (2018).
  29. Kui, B., et al. New insights into the methodolgy of L-Arginine-induced acute pancreatitis. PLoS One. 10 (2), 011758 (2015).
  30. Xue, J., et al. Alternatively activated macrophages promote pancreatic fibrosis in chronic pancreatitis. Nature Communication. 6, 7158 (2015).
  31. Lesina, M., Wormann, S. M., Neuhofer, P., Song, L., Algul, H. Interleukin-6 in inflammatory and malignant diseases of the pancreas. Seminars in Immunology. 26 (1), 80-87 (2014).
  32. Rao, S. A., Kunte, A. R. Interleukin-6: An early predictive marker for severity of acute pancreatitis. Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 424-428 (2017).
check_url/fr/61547?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Serra, M. B., Koike, M. K., Barbeiro, D. F., Machado, M. C. C., de Souza, H. P. Sodium Taurocholate Induced Severe Acute Pancreatitis in C57BL/6 Mice. J. Vis. Exp. (172), e61547, doi:10.3791/61547 (2021).

View Video