JoVE Journal > Medicine
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Résultats
Discussion
Divulgations
Acknowledgements
Materials
References
Traduction automatique
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Médecine

Levering van gehalogeneerde agent in varkensmodel van acuut respiratoir distress-syndroom via een apparaat van het type intensive care-afdeling

Published: September 24, 2020
doi:
10.3791/61644
, , , , , , , , , , , , ,
1Department of Perioperative Medicine,CHU Clermont-Ferrand, 2GReD, CNRS, INSERM,Université Clermont Auvergne, 3GRC 29, AP-HP, DMU DREAM, Department of Anesthesiology and Critical Care, Pitié-Salpêtrière Hospital,Sorbonne University, 4Department of Biochemistry and Molecular Genetics,CHU Clermont-Ferrand, 5Division of Allergy, Pulmonary, and Critical Care Medicine,Vanderbilt University Medical Center

Summary

We beschrijven een model van zoutzuur-geïnduceerd acute respiratory distress syndrome (ARDS) bij biggen die sedatie krijgen met gehalogeneerde middelen, isofluraan en sevofluraan, via een apparaat dat wordt gebruikt voor geïnhaleerde intensive care-sedatie. Dit model kan worden gebruikt om de biologische mechanismen van gehalogeneerde middelen op longletsel en -herstel te onderzoeken.

Abstract

Acute respiratory distress syndrome (ARDS) is een veel voorkomende oorzaak van hypoxemische respiratoire insufficiëntie en overlijden bij ernstig zieke patiënten, en er is een dringende behoefte om effectieve therapieën te vinden. Preklinische studies hebben aangetoond dat geïnhaleerde gehalogeneerde middelen gunstige effecten kunnen hebben in diermodellen van ARDS. De ontwikkeling van nieuwe apparaten voor het toedienen van gehalogeneerde middelen met behulp van moderne intensive care unit (ICU) beademingsapparaten heeft de afgifte van gehalogeneerde middelen aan IC-patiënten aanzienlijk vereenvoudigd. Omdat eerder experimenteel en klinisch onderzoek potentiële voordelen suggereerde van gehalogeneerde vluchtige stoffen, zoals sevofluraan of isofluraan, voor longalveolaire epitheliale letsel en ontsteking, twee pathofysiologische oriëntatiepunten van diffuse alveolaire schade tijdens ARDS, hebben we een diermodel ontworpen om de mechanismen van de effecten van gehalogeneerde middelen op longletsel en -herstel te begrijpen. Na algemene anesthesie, tracheale intubatie en het initiëren van mechanische beademing, werd ARDS geïnduceerd bij biggen via de intratracheale instillatie van zoutzuur. Vervolgens werden de biggen verdoofd met geïnhaleerd sevofluraan of isofluraan met behulp van een ICU-achtig apparaat en werden de dieren gedurende een periode van 4 uur geventileerd met longbeschermende mechanische ventilatie. Tijdens de onderzoeksperiode werden bloed- en alveolaire monsters verzameld om arteriële oxygenatie, de permeabiliteit van het alveolaire capillaire membraan, alveolaire vloeistofklaring en longontsteking te evalueren. Mechanische ventilatieparameters werden ook verzameld tijdens het experiment. Hoewel dit model een duidelijke afname van arteriële oxygenatie veroorzaakte met veranderde alveolaire capillaire permeabiliteit, is het reproduceerbaar en wordt het gekenmerkt door een snel begin, goede stabiliteit in de loop van de tijd en geen fatale complicaties.

We hebben een biggenmodel van zure aspiratie ontwikkeld dat de meeste fysiologische, biologische en pathologische kenmerken van klinische ARDS reproduceert, en het zal nuttig zijn om ons begrip van de potentiële longbeschermende effecten van gehalogeneerde middelen die worden geleverd via apparaten die worden gebruikt voor geïnhaleerde ICU-sedatie te vergroten.

Introduction

Acute respiratory distress syndrome (ARDS) is een veel voorkomende oorzaak van hypoxemische respiratoire insufficiëntie en overlijden bij ernstig zieke patiënten1. Het wordt gekenmerkt door zowel diffuse alveolaire epitheliale als endotheelletsels, wat leidt tot verhoogde permeabiliteit en longoedeem, veranderde alveolaire vloeistofklaring (AFC) en verergerde ademhalingsnood2. De resorptie van alveolaire oedeem en herstel van ARDS vereisen epitheelvochttransport door de longblaasjes om intact te blijven, wat suggereert dat een therapie die AFC verbetert nuttig kan zijn3,4. Hoewel longbeschermende beademing en een beperkende strategie voor intraveneuze vloeistoftherapie gunstig zijn gebleken bij het verbeteren van de resultaten2,5,worden ze nog steeds geassocieerd met hoge mortaliteit en morbiditeit6. Daarom is er een dringende behoefte om effectieve therapieën voor het syndroom te ontwikkelen en om de precieze mechanismen waarmee dergelijke therapieën kunnen werken beter te begrijpen.

Gehalogeneerde anesthetica, zoals isofluraan of sevofluraan, zijn veel gebruikt voor algemene anesthesie in de operatiekamer. Sevofluraan wordt geassocieerd met verminderde ontsteking in de longen van patiënten die een thoracale operatie ondergaan en met een afname van postoperatieve pulmonale complicaties, zoals ARDS7. Vergelijkbare resultaten zijn gevonden in een meta-analyse van patiënten na hartchirurgie8. Gehalogeneerde vluchtige stoffen hebben ook een bronchodilatoire werking9,10 en misschien enkele eigenschappen die verschillende organen beschermen, zoals het hart8,11 en de nieren12,13,14. De laatste tijd is er een groeiende belangstelling voor het klinisch gebruik van geïnhaleerde anesthetica als sedativa op de intensive care (ICU). Zowel dier- als mensstudies ondersteunen de beschermende effecten van voorbehandeling met gehalogeneerde middelen vóór langdurige ischemie van de lever15, de hersenen16of het hart11. Gehalogeneerde middelen hebben ook potentiële farmacokinetische en farmacodynamische voordelen ten opzichte van andere intraveneuze middelen voor de sedatie van ernstig zieke patiënten, waaronder een snel begin van actie en snelle compensatie als gevolg van weinig accumulatie in weefsels. Geïnhaleerde gehalogeneerde middelen verminderen de intubatietijden in vergelijking met intraveneuze sedatie bij patiënten die een hartoperatie ondergaan17. Verschillende studies ondersteunen de veiligheid en werkzaamheid van gehalogeneerde middelen bij de sedatie van IC-patiënten18,19,20. In experimentele modellen van ARDS verbetert geïnhaleerd sevofluraan de gasuitwisseling21,22,vermindert alveolaire oedeem21,22en verzwakt zowel pulmonale als systemische ontsteking23. Isofluraan verbetert ook het longherstel na letsel door de integriteit van de alveolaire capillaire barrière te behouden, mogelijk door de expressie van een belangrijk tight junction-eiwit te moduleren24,25,26. Bovendien hadden macrofagen van muizen die werden gekweekt en behandeld met isofluraan betere fagocytische effecten op neutrofielen dan macrofagen die niet werden behandeld met isofluraan27.

De precieze biologische routes en mechanismen die verantwoordelijk zijn voor de longbeschermende eigenschappen van vluchtige anesthetica blijven tot op heden echter grotendeels onbekend, wat verder onderzoek vereist18. Aanvullende studies zijn ook gerechtvaardigd om de precieze effecten van sevofluraan op longletsel te onderzoeken en om te verifiëren of experimenteel bewijs kan worden vertaald naar patiënten. De eerste gerandomiseerde controlestudie van ons team wees uit dat de toediening van geïnhaleerd sevofluraan bij patiënten met ARDS geassocieerd was met oxygenatieverbetering en verlaagde niveaus van zowel pro-inflammatoire cytokines als longepitheelletselmarkers, zoals beoordeeld door plasma- en alveolaire oplosbare receptoren voor geavanceerde glycatie-eindproducten (sRAGE)28 . Aangezien sRAGE nu wordt beschouwd als een marker van alveolaire type 1 celbeschadiging en een belangrijke mediator van alveolaire ontsteking, kunnen deze resultaten enkele gunstige effecten van sevofluraan op de longalveolaire epitheliale verwondingsuggereren 21,29,30.

Het gebruik van gehalogeneerde middelen voor geïnhaleerde ICU-sedatie vereist al lang anesthesieventilatoren in de operatiekamer en gasverdampers om op de IC te worden ingezet. Sindsdien zijn verdovingsreflectoren die geschikt zijn voor gebruik met moderne intensive care-ventilatoren ontwikkeld voor specifiek gebruik op de IC31. Deze apparaten zijn voorzien van gemodificeerde warmte- en vochtuitwisselingsfilters die zijn geplaatst tussen het Y-stuk van het ademhalingscircuit en de endotracheale buis. Ze maken de toediening van gehalogeneerde middelen mogelijk, waarbij isofluraan en sevofluraan het meest worden gebruikt, en ze bestaan uit een poreuze polypropyleenverdamperstaaf, waarin een vloeibaar middel, geleverd door een specifieke spuitpomp, wordt vrijgegeven. Het gehalogeneerde middel wordt tijdens de vervaldatum geabsorbeerd door een reflecterend medium in het apparaat en het wordt vrijgegeven tijdens de volgende inspiratie, waardoor recirculatie van ongeveer 90% van het verlopen gehalogeneerde middel31,32mogelijk is. Onlangs werd een geminiaturiseerde versie van het apparaat ontwikkeld met een instrumentele dode ruimte van 50 ml, waardoor het nog geschikter is voor gebruik tijdens ultrabeschermende beademing bij ARDS-patiënten, met getijdenvolumes die zo laag kunnen zijn als 200 ml31. Zo’n geminiaturiseerd apparaat is nog nooit bestudeerd in een experimenteel biggenmodel van ARDS.

Omdat eerder onderzoek de veelbelovende rollen van gehalogeneerde vluchtige stoffen in longalveolaire ontsteking en letsel tijdens ARDS ondersteunt, hebben we een experimenteel diermodel ontworpen om een translationeel begrip te krijgen van de mechanismen van de effecten van gehalogeneerde middelen op longletsel en reparatie33,34,35. In deze studie ontwikkelden we een model van zoutzuur (HCl)-geïnduceerde ARDS bij biggen bij wie geïnhaleerde sedatie kan worden toegediend met behulp van de geminiaturiseerde versie van het anestheticumconservatieapparaat, een ICU-type apparaat. Dit grote diermodel van ARDS kan worden gebruikt om ons begrip van de potentiële longbeschermende effecten van geïnhaleerde gehalogeneerde middelen te vergroten.

Protocol

Het onderzoeksprotocol werd goedgekeurd door de Commissie voor dierethiek van het Franse Ministère de l’Education Nationale, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche (goedkeuringsnummer 01505.03) voordat het werd geregistreerd bij preclinicaltrials.eu(Preklinische registeridentificatie PCTE0000129). Alle procedures werden uitgevoerd in het Centre International de Chirurgie Endoscopique, Université Clermont Auvergne,Clermont-Ferrand, Frankrijk, in overeenstemming met de richtlijnen van …

Representative Results

Voor dit experiment werden 25 biggen verdoofd en verdeeld in twee groepen: 12 biggen in de onbehandelde groep (SHAM-groep) en 13 biggen in de zuurgewonde groep (HCl-groep). Geen big stierf voor het einde van het experiment. Een tweerichtingsanalyse van variantie met herhaalde metingen (RM-ANOVA) wees op een significante tijd per groepsinteractie (P < 10−4) met een schadelijk effect van HCl-geïnduceerde ARDS op PaO2/FiO2, vergeleken met schijndieren zonder ARDS (fig…

Discussion

Dit artikel beschrijft een reproduceerbaar experimenteel model van ARDS geïnduceerd door de intratracheale instillatie van HCl in biggen om de longbeschermende effecten van gehalogeneerde vluchtige stoffen, zoals sevofluraan of isofluraan, geleverd met behulp van een anesthetisch conserverend apparaat te onderzoeken.

Het primaire doel van deze studie was het ontwikkelen van een experimenteel model van ARDS waarbij vluchtige middelen konden worden toegediend door een anesthetisch conserverend …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen graag het personeel van de GreD, de Université Clermont Auvergne en het Centre International de Chirurgie Endoscopique (allemaal in Clermont-Ferrand, Frankrijk) bedanken.

Materials

Tracheal intubation
Endotracheal tube 6-mm Covidien 18860
Animal preparation
Central venous catheter 3-lumens catheter (7 French – 16 cm) Arrow CV-12703
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO catheter (3-5 French – 20 cm) Getinge Pulsion Medical System catheter
Warm blankets WarmTouch5300 MedTronic 5300
Monitoring
External monitor IntelliVue MP40 Phillips MNT 142
Point-of-care blood gas analyzer Epoc® Blood Analysis System Siemens 20093
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO Device PulsioFlex Monitor Getinge Pulsion Medical System PulsioFlex
Mechanical ventilation
Ventilator Engström Carestation General Electrics Engström
Halogenated anesthetics
Anaconda Syringe SedanaMedical 26022
Anesthetic conserving device AnaConDa-S SedanaMedical 26050
Charcoal filter FlurAbsorb SedanaMedical 26096
Filling Adaptaters SedanaMedical 26042
Ionomer membrane dryer line Nafion SedanaMedical 26053
Products
Propofol Mylan 66617123
Isoflurane Virbac QN01AB06
Pentobarbital PanPharma 68942457
Sevoflurane Abbvie N01AB08
Sufentanil Mylan 62404996
DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. ARDS Definition Task Force et al. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 307 (23), 2526-2533 (2012).
  2. Thompson, B. T., Chambers, R. C., Liu, K. D. Acute Respiratory Distress Syndrome. The New England Journal of Medicine. 377 (6), 562-572 (2017).
  3. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  4. McAuley, D. F., Frank, J. A., Fang, X., Matthay, M. A. Clinically relevant concentrations of beta2-adrenergic agonists stimulate maximal cyclic adenosine monophosphate-dependent airspace fluid clearance and decrease pulmonary edema in experimental acid-induced lung injury. Critical Care Medicine. 32 (7), 1470-1476 (2004).
  5. Fan, E., et al. An official American thoracic society/European society of intensive care medicine/society of critical care medicine clinical practice guideline: Mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (9), 1253-1263 (2017).
  6. Bellani, G., et al. Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acute respiratory distress syndrome in intensive care units in 50 countries. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 315 (8), 788-800 (2016).
  7. De Conno, E., et al. Anesthetic-induced improvement of the inflammatory response to one-lung ventilation. Anesthesiology. 110 (6), 1316-1326 (2009).
  8. Uhlig, C., et al. Effects of volatile anesthetics on mortality and postoperative pulmonary and other complications in patients undergoing surgery: A systematic review and meta-analysis. Anesthesiology: The Journal of the American Society of Anesthesiologists. 124 (6), 1230-1245 (2016).
  9. Campagna, J. A., Miller, K. W., Forman, S. A. Mechanisms of actions of inhaled anesthetics. The New England Journal of Medicine. 348 (21), 2110-2124 (2003).
  10. Dikmen, Y., Eminoglu, E., Salihoglu, Z., Demiroluk, S. Pulmonary mechanics during isoflurane, sevoflurane and desflurane anaesthesia. Anaesthesia. 58 (8), 745-748 (2003).
  11. Hert, S. G. D., et al. Choice of primary anesthetic regimen can influence intensive care unit length of stay after coronary surgery with cardiopulmonary bypass. Anesthesiology. 101 (1), 9-20 (2004).
  12. Hashiguchi, H., et al. Isoflurane protects renal function against ischemia and reperfusion through inhibition of protein kinases, JNK and ERK. Anesthesia and Analgesia. , 1584-1589 (2005).
  13. Fukazawa, K., Lee, H. T. Volatile anesthetics and AKI: risks, mechanisms, and a potential therapeutic window. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 25 (5), 884-892 (2014).
  14. Obal, D., Rascher, K., Favoccia, C., Dettwiler, S., Schlack, W. Post-conditioning by a short administration of desflurane reduced renal reperfusion injury after differing of ischaemia times in rats. British Journal of Anaesthesia. 97 (6), 783-791 (2006).
  15. Lv, X., et al. Isoflurane preconditioning at clinically relevant doses induce protective effects of heme oxygenase-1 on hepatic ischemia reperfusion in rats. BMC Gastroenterology. 11, 31 (2011).
  16. Sakai, H., et al. Isoflurane provides long-term protection against focal cerebral ischemia in the rat. Anesthesiology. 106 (1), 92-99 (2007).
  17. Jerath, A., et al. Volatile-based short-term sedation in cardiac surgical patients: a prospective randomized controlled trial. Critical Care Medicine. 43 (5), 1062-1069 (2015).
  18. Jerath, A., Parotto, M., Wasowicz, M., Ferguson, N. D. Volatile Anesthetics. Is a New Player Emerging in Critical Care Sedation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (11), 1202-1212 (2016).
  19. Perbet, S., et al. A pharmacokinetic study of 48-hour sevoflurane inhalation using a disposable delivery system (AnaConDa®) in ICU patients. Minerva Anestesiologica. 80 (6), 655-665 (2014).
  20. Mesnil, M., et al. Long-term sedation in intensive care unit: a randomized comparison between inhaled sevoflurane and intravenous propofol or midazolam. Intensive Care Medicine. 37 (6), 933-941 (2011).
  21. Schläpfer, M., et al. Sevoflurane reduces severity of acute lung injury possibly by impairing formation of alveolar oedema. Clinical and Experimental Immunology. 168 (1), 125-134 (2012).
  22. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung Injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  23. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  24. Englert, J. A., et al. Isoflurane Ameliorates Acute Lung Injury by Preserving Epithelial Tight Junction Integrity. Anesthesiology. 123 (2), 377-388 (2015).
  25. Li, Q. F., Zhu, Y. S., Jiang, H., Xu, H., Sun, Y. Isoflurane preconditioning ameliorates endotoxin-induced acute lung injury and mortality in rats. Anesthesia and Analgesia. 109 (5), 1591-1597 (2009).
  26. Reutershan, J., Chang, D., Hayes, J. K., Ley, K. Role of a reduction of cytokine levels in isoflurane-mediated protection from endotoxin-induced lung Injury. Anesthesiology. 105 (6), 1280-1281 (2006).
  27. Du, X., et al. Isoflurane promotes phagocytosis of apoptotic neutrophils through AMPK-mediated ADAM17/Mer signaling. PloS One. 12 (7), 0180213 (2017).
  28. Jabaudon, M., et al. Sevoflurane for Sedation in Acute Respiratory Distress Syndrome. A Randomized Controlled Pilot Study. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (6), 792-800 (2017).
  29. Yue, T., et al. Postconditioning with a volatile anaesthetic in alveolar epithelial cells in vitro. The European Respiratory Journal: Official Journal of the European Society for Clinical Respiratory Physiology. 31 (1), 118-125 (2008).
  30. Blondonnet, R., Constantin, J. M., Sapin, V., Jabaudon, M. A pathophysiologic approach to biomarkers in acute respiratory distress syndrome. Disease Markers. 2016, 3501373 (2016).
  31. Farrell, R., Oomen, G., Carey, P. A technical review of the history, development and performance of the anaesthetic conserving device “AnaConDa” for delivering volatile anaesthetic in intensive and post-operative critical care. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 32 (4), 595-604 (2018).
  32. Sturesson, L. W., Bodelsson, M., Jonson, B., Malmkvist, G. Anaesthetic conserving device AnaConDa: dead space effect and significance for lung protective ventilation. British Journal of Anaesthesia. 113 (3), 508-514 (2014).
  33. Blondonnet, R., et al. RAGE inhibition reduces acute lung injury in mice. Scientific Reports. 7 (1), 7208 (2017).
  34. Jabaudon, M., et al. Soluble receptor for advanced glycation end-products predicts impaired alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 192 (2), 191-199 (2015).
  35. Jabaudon, M., et al. Soluble forms and ligands of the receptor for advanced glycation end-products in patients with acute respiratory distress syndrome: An observational prospective study. PloS One. 10 (8), 0135857 (2015).
  36. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 8, 1000412 (2010).
  37. Audard, J., et al. Inhibition of the receptor for advanced glycation end-products in acute respiratory distress syndrome: A randomised laboratory trial in piglets. Scientific Reports. 9 (1), 9227 (2019).
  38. Wu, C. W., et al. Intra-operative neural monitoring of thyroid surgery in a porcine model. Journal of Visualized Experiments. (144), e57919 (2019).
  39. Russ, M., et al. Lavage-induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of visualized experiments. (115), e53610 (2016).
  40. Marumo, C. K., et al. Hemodynamic effects of PEEP in a porcine model of HCl-induced mild acute lung injury. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 53 (2), 190-202 (2009).
  41. Ambrosio, A. M., et al. Effects of positive end-expiratory pressure titration and recruitment maneuver on lung inflammation and hyperinflation in experimental acid aspiration-induced lung injury. Anesthesiology. 117 (6), 1322-1334 (2012).
  42. Sackey, P. V., Martling, C. R., Granath, F., Radell, P. J. Prolonged isoflurane sedation of intensive care unit patients with the Anesthetic Conserving Device. Critical Care Medicine. 32 (11), 2241-2246 (2004).
  43. Blanchard, F., et al. Minimal alveolar concentration for deep sedation (MAC-DS) in intensive care unit patients sedated with sevoflurane: A physiological study. Anaesthesia, Critical Care & Pain. , (2020).
  44. Verghese, G. M., Ware, L. B., Matthay, B. A., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport and the resolution of clinically severe hydrostatic pulmonary edema. Journal of Applied Physiology. 87 (4), 1301-1312 (1999).
  45. Sakuma, T., et al. Alveolar fluid clearance in the resected human lung. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 150 (2), 305-310 (1994).
  46. Matthay, M. A., Wiener-Kronish, J. P. Intact epithelial barrier function is critical for the resolution of alveolar edema in humans. The American Review of Respiratory Disease. 142 (6), 1250-1257 (1990).
  47. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  48. Ware, L. B., Golden, J. A., Finkbeiner, W. E., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport capacity in reperfusion lung injury after lung transplantation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159 (3), 980-988 (1999).
  49. Constantin, J. M., et al. Response to recruitment maneuver influences net alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. Anesthesiology. 106 (5), 944-951 (2007).
  50. Kemming, G. I., et al. Effects of perfluorohexan vapor on gas exchange, respiratory mechanics, and lung histology in pigs with lung injury after endotoxin infusion. Anesthesiology. 103 (3), 585-594 (2005).
  51. Matute-Bello, G., et al. An official American Thoracic Society workshop report: features and measurements of experimental acute lung injury in animals. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 44 (5), 725-738 (2011).
  52. Chiew, Y. S., et al. Physiological relevance and performance of a minimal lung model: an experimental study in healthy and acute respiratory distress syndrome model piglets. BMC Pulmonary Medicine. 12, 59 (2012).
  53. Hochhausen, N., et al. Optimizing PEEP by Electrical Impedance Tomography in a Porcine Animal Model of ARDS. Respiratory Care. 62 (3), 340-349 (2017).
  54. Fu, H., Sun, M., Miao, C. Effects of different concentrations of isoflurane pretreatment on respiratory mechanics, oxygenation and hemodynamics in LPS-induced acute respiratory distress syndrome model of juvenile piglets. Experimental Lung Research. 41 (8), 415-421 (2015).
  55. Yehya, N. Lessons learned in acute respiratory distress syndrome from the animal laboratory. Annals of Translational Medicine. 7 (19), 503 (2019).
  56. Hochhausen, N., et al. Comparison of two experimental ARDS models in pigs using electrical impedance tomography. PloS One. 14 (11), 0225218 (2019).
  57. Shaver, C. M., et al. Cell-free hemoglobin: a novel mediator of acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 310 (6), 532-541 (2016).
  58. Matthay, M. A., et al. Acute respiratory distress syndrome. Nature Reviews. Disease Primers. 5 (1), 18 (2019).
  59. Martin, T. R., Matute-Bello, G. Experimental models and emerging hypotheses for acute lung injury. Critical Care Clinics. 27 (3), 735-752 (2011).
  60. Light, R. W., Gary Lee, Y. C. . Textbook of Pleural Diseases Second Edition. , (2008).
  61. Laferriere-Langlois, P., d’Arogon, F., Manzanares, W. Halogenated volatile anesthetics in the intensive care unit: current knowledge on an upcoming practice. Minerva Anestesiologica. 83 (7), 737-748 (2017).
  62. Devlin, J. W., et al. Clinical Practice Guidelines for the Prevention and Management of Pain, Agitation/Sedation, Delirium, Immobility, and Sleep Disruption in Adult Patients in the ICU. Critical Care Medicine. 46 (9), 825-873 (2018).
  63. DAS-Taskforce 2015 et al. Evidence and consensus based guideline for the management of delirium, analgesia, and sedation in intensive care medicine. Revision 2015 (DAS-Guildeline 2015) – short version. German Medical Science: GMS e-journal. 13, (2015).
  64. O’Gara, B., Talmor, D. Lung protective properties of the volatile anesthetics. Intensive Care Medicine. 42 (9), 1487-1489 (2016).
  65. Murthy, S., Gomersall, C. D., Fowler, R. A. Care for critically ill patients with COVID-19. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  66. Liao, X., Wang, B., Kang, Y. Novel coronavirus infection during the 2019-2020 epidemic: preparing intensive care units-the experience in Sichuan Province, China. Intensive Care Medicine. 46 (2), 357-360 (2020).
  67. Grasselli, G., Pesenti, A., Cecconi, M. Critical care utilization for the COVID-19 outbreak in Lombardy, Italy: Early experience and forecast during an emergency response. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  68. Arentz, M., et al. Characteristics and outcomes of 21 critically ill patients with COVID-19 in Washington State. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  69. Xu, Z., et al. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. The Lancet. Respiratory Medicine. 8 (4), 420-422 (2020).
  70. Ferrando, C., et al. but not propofol, reduces the lung inflammatory response and improves oxygenation in an acute respiratory distress syndrome model: a randomised laboratory study. European Journal of Anaesthesiology. 30 (8), 455-463 (2013).
  71. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  72. Suter, D., et al. The immunomodulatory effect of sevoflurane in endotoxin-injured alveolar epithelial cells. Anesthesia and Analgesia. 104 (3), 638-645 (2007).
  73. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  74. Blondonnet, R., et al. In vitro method to control concentrations of halogenated gases in cultured alveolar epithelial cells. Journal of Visualized Experiments. (144), e58554 (2018).
  75. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: Anesthetic considerations in preclinical research. ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 53 (1), 55-69 (2012).

Tags

Keywords: Porcine ModelAcute Respiratory Distress SyndromeHalogenated AgentICU DeviceCentral Venous AccessFemoral ArteryAcid-induced Lung InjuryMechanical Ventilation
check_url/fr/61644?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citer Cet Article
Blondonnet, R., Paquette, B., Audard, J., Guler, R., Roman, F., Zhai, R., Belville, C., Blanchon, L., Godet, T., Futier, E., Bazin, J., Constantin, J., Sapin, V., Jabaudon, M. Halogenated Agent Delivery in Porcine Model of Acute Respiratory Distress Syndrome via an Intensive Care Unit Type Device. J. Vis. Exp. (163), e61644, doi:10.3791/61644 (2020).
Télécharger la Citation
Réimpressions et Autorisations

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image