Waiting
Traitement de la connexion…

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

OP-IVM: Kombinere in vitro modning etter Oocyte Gjenfinning med gynekologisk kirurgi

Published: May 9, 2021 doi: 10.3791/61647
Automatic Translation
*1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5
1Center for Reproductive Medicine, Department of Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 2National Clinical Research Center for Obstetrics and Gynecology, 3Key Laboratory of Assisted Reproduction, Ministry of Education, 4Beijing Key Laboratory of Reproductive Endocrinology and Assisted Reproduction, 5Research Units of Comprehensive Diagnosis and Treatment of Oocyte Maturation Arrest, Chinese Academy of Medical Sciences
* These authors contributed equally

ERRATUM NOTICE

Summary

In vitro modning (IVM) før gynekologisk drift (OP-IVM) kombinerer IVM etter oocytt gjenfinning med rutinemessig gynekologisk kirurgi og fungerer som en forlengelse av konvensjonelle IVM applikasjoner for fruktbarhet bevaring.

Abstract

Bruk av in vitro modning (IVM) før gynekologisk drift (OP-IVM) er en forlengelse av konvensjonell IVM som kombinerer IVM etter oocytt gjenfinning med rutinemessig gynekologisk kirurgi. OP-IVM er egnet for pasienter som gjennomgår godartet gynekologisk kirurgi som har behov for fruktbarhet bevaring (FP) eller ufruktbarhet behandlinger som in vitro befruktning og embryo overføring (IVF-ET). I operasjonsrommet blir pasienter som gjennomgår godartet gynekologisk kirurgi først bedøvet og får ultralydstyrt umoden follikkelaspirasjon (IMFA) behandling. Etter hvert som den påfølgende gynekologiske operasjonen utføres, undersøkes cumulus-oocyttkompleksene (COCene), og de umodne COCene overføres til IVM-mediet og dyrkes i 28-32 timer i IVF-laboratoriet. Etter vurdering vil modne oocytter i MII-stadiet bli valgt og kryopreservert i flytende nitrogen for FP eller befruktet av intracytoplasmisk sædinjeksjon (ICSI) for IVF-ET. Ved å kombinere IVM med gynekologisk kirurgi, kan umodne oocytter som ville ha blitt kassert, reddes og brukes til assistert reproduktiv teknologi (ART). Prosedyren, betydningen og kritiske aspekter ved OP-IVM er beskrevet i denne artikkelen.

Introduction

IVM er en ART der menneskelige umodne oocytter dyrkes in vitro til modning for IVF-ET eller FP. I IVM brukes ikke eggløsningsinduksjonsmedisiner, og reduserer dermed smerte, økonomisk byrde og komplikasjoner som ovarial hyperstimuleringssyndrom (OHSS)1,2. I tillegg er IVM spesielt egnet for FP av kreftpasienter og infertilitetsbehandling av hormonfølsomme pasienter som kanskje ikke kan eller ikke har tid til å motta ovulation induksjonsterapi3. Derfor, selv om antall oocytter hentet, klinisk graviditet rate (HLR), og levende fødselsrate (LBR) er lavere enn de av IVF4,5, IVM har sine egne unike fordeler.

Infertile pasienter med endometrie lesjoner, hydrosalpinx eller ovariecyster har vanligvis gynekologisk kirurgi før ART-behandling, og deres oocytter er vanligvis umodne. OP-IVM bruker guidet transvaginal ultralyd for å hente de umodne oocyttene og dyrke dem in vitro til modning for IVF-ET eller FP. OP-IVM kombinerer IVM etter oocyttuthenting og gynekologisk kirurgi, og reduserer dermed komplikasjoner som er vanlige i kontrollerte ovariale hyperstimuleringssykluser og sparer tid og penger. For fruktbare pasienter kan OP-IVM tjene som en "fruktbarhetsforsikring" mens de gjennomgår rutinemessig gynekologisk kirurgi.

Videre kan skader forårsaket av gynekologiske operasjoner, som elektrokautery6,7 og ovarie tumor reseksjon, reduseres gjennom oocyttuthenting før gynekologisk kirurgi. Derfor, sammenlignet med rutinemessig gynekologisk kirurgi, OP-IVM kan redusere antall operasjoner under ufruktbarhet behandling og hindre tap av funksjonelle oocytter under ovarie kirurgi.

En tidligere studie har vist at den ekstra prosedyren for oocyttuthenting verken vil øke kirurgiske komplikasjoner og ugunstige graviditetsutfall, eller forlenge sykehusoppholdet8. Noen pasienter har født levende gjennom OP-IVM8, noe som indikerer gjennomførbarheten av denne metoden. Denne artikkelen beskriver egenskaper hos pasienter som kan dra nytte av OP-IVM samt prosedyrer og kritiske punkter i OP-IVM og diskuterer evalueringen av menneskelig oocyttmodenhet.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

MERK: Studier relatert til OP-IVM-metoden er godkjent av institusjonsgjennomgangsstyret (IRB) ved Peking universitets tredje sykehus og Etikkkomiteen ved Pekinguniversitetet (2014S2004). Et sammendrag av OP-IVM vises i figur 1. Den trinnvise prosedyren vil bli introdusert i følgende avsnitt.

1. Innføring av OP-IVM til aktuelle pasienter

  1. Identifisere potensielle pasienter som kan dra nytte av OP-IVM, for eksempel de som er beskrevet i trinn 1.1.1-1.1.3.:
    1. Polycystisk ovariesyndrom (PCOS) pasienter med clomiphene motstand som trenger laparoskopisk ovarial borekirurgi.
    2. Infertile pasienter som trenger godartede gynekologiske operasjoner, som hysteroskopisk myomektomi, polypektomi, transcervical reseksjon av septum og laparoskopisk tubal kirurgi, og oophorocystectomy, før ART behandling.
    3. Pasienter med kreft eller hematologisk sykdom som får kjemoradioterapi eller strålebehandling.

2. Informert samtykke

  1. Gi fullstendig informasjon til pasienter, inkludert hvorfor OP-IVM kan være gunstig, prosedyren, bruk av IVM oocytter (IVF-ET eller kryopreservering), estimerte HLRs og LBRs, og mulige komplikasjoner. Be pasientene gi informert samtykke ved å signere samtykkeskjemaet.

3. Forbered etiketter og IVM oocyte medium

  1. Skriv ut ID-etiketter med pasientens navn og datoer for kulturretter og rør.
  2. Tilsett 0,5 ml IVM medium supplert med 0,075 IE/ml follikkelstimulerende hormon (FSH) og 0,075 IE/ml luteiniserende hormon (LH) til hver brønn av en 4-brønns tallerken. Dekk mediet med olje.
    MERK: Utfør alle disse prosedyrene i laminære strømningsrense benker.
  3. Forvarm 4-brønnsplaten med IVM oocyttmedium ved 37 °C i fuktig luft som inneholder 5 % CO2 og 5 % O2 minst 6 timer før bruk.

4. Administrer anestesi i et operasjonsrom

  1. Kontroller pasientens navn før du administrerer anestesi.
  2. Intravenøst bedøve pasienten av anestesiolog.

5. Utfør oocytthenting

  1. Merk etikettene med navn, dato og ID på kulturrettene og rørene.
  2. Plasser pasienten i blære litotomi posisjon; desinfiser hele tiden, drapere og skrubbe skjeden med varm saltvann.
  3. Plasser ultralydsonden inne i skjeden; skanne og registrere antall follikler i begge eggstokkene. Finn stedet nærmest eggstokken som punkteringsstedet, og unngå tarmen, blæren og store blodkar.
  4. Aspirat follikulær væske.
    1. Vask kanylen med pH-stabilt håndteringsmedium før punktering (se Materialfortegnelser).
    2. Injiser 19 G, en-lumen aspirasjonsnål i eggstokkene under veiledning av ultralyd.
    3. Punktering større follikler med klare grenser nærmest sonden. I lav stilling injiseres skylleløsningen raskt supplert med 25 U/ml heparin. Aspirat follikulær væske med nålen under et trykk på 80-90 mmHg, rotere nålen litt for å aspirere så mye follikulær væske som mulig. Punkter andre follikler fra nær til lang side på dette flyet.
      MERK: Under aspirasjon vil follikulær væske som inneholder oocytter strømme inn i et sterilt 10 ml reagensrør under negativt trykk. Heparin kan redusere follikulær væskeviskositet for å lette aspirasjonsprosessen.
    4. Fjern nålen fra eggstokken (hold nålen i vaginalveggen). Juster retningen på ultralydsonden, og punkter de resterende folliklene på andre plan. Prøv å aspirere alle folliklene med en diameter på ~ 5-9 mm.
      MERK: Juster sondens posisjon for å holde den nærmest eggstokkene til enhver tid. Trykk vaginal fornix med passende kraft for å redusere skade og blødning.
    5. Trekk ut nålen etter å ha fullført i en eggstokk, vask nålen med håndteringsmediet, og punkter den andre siden ved hjelp av samme metode.
      MERK: Fullstendig follikkelaspirasjon innen 25-30 min.
  5. Overfør follikulær væske fra operasjonsrommet til IVF-laboratoriet innen få minutter etter å ha bekreftet pasientens navn og ID.
    MERK: Overfør aspirert follikulær væske til IVF-laboratoriebenken så snart som mulig for å forhindre koagulasjon.
  6. Oppdag aktiv blødning i bekkenhulen med B-modus ultralyd etter punktering av alle folliklene. Sett inn et spekulum, og pek spissen på bakre fornix for å oppdage aktiv blødning på punkteringsstedet.
    MERK: Ingen aktiv blødning bør observeres på vaginal punkteringsstedet hvis eggstokkposisjonen er normal og oocyttuthenting utføres nøye. For lysblødning som fortsetter selv etter kompresjon, hold en steril gasbind komprimere i skjeden i 2-4 timer. Kontroller overdreven blødning fra små arterier ved hjelp av klemmer med vaskulære tang i 2-4 timer. Blødning i bekkenhulen eller eggstokken, som sjelden skjer, bør kontrolleres av elektrokoagulasjon ved laparoskopisk kirurgi.

6. Gynekologisk kirurgi

  1. Basert på pasientens behov og tilstand, utfør passende gynekologisk kirurgi etter oocyttuthenting.
    1. Utfør laparoskopisk ovarieboring kirurgi for polycystisk ovariesyndrom (PCOS) pasienter med clomiphene motstand.
    2. Utfør godartet gynekologisk kirurgi for ufruktbare pasienter før ART-behandling, for eksempel hysteroskopisk myomektomi, polypektomi, transcervical reseksjon av septum og laparoskopisk tubal kirurgi, og oophorocystectomy.
    3. Utfør ovariectomy for fruktbarhet kryopreservering av pasienter med kreft eller hematologisk sykdom som trenger å motta kjemoradioterapi.
      MERK: Disse gynekologiske operasjonene er grunnleggende og standardiserte kliniske operasjoner. Driftsretningslinjer i ulike land og sykehus bør være relativt like.

7. Utfør IVM

MERK: Utfør hele prosessen med IVM på en homtermisk flat på 37 °C.

  1. Filtrer den aspirerte follikkelvæsken med en 70 μm nyloncellesil. Skyll kulturrøret og silen gjentatte ganger med forvarmet pH-stabilt håndteringsmedium. Sørg for at alle umodne COCer er fullstendig overført til kulturretten. Samle den filtrerte væsken , skyll og kultur i en 100 x 15 mm Petri-tallerken.
  2. Undersøk COCene (figur 2) under stereoskopet med 40x forstørrelse. Overfør raskt umodne til et forvarmet IVM oocyttmedium.
    MERK: Velg en passende forstørrelse avhengig av operatørens vane.
  3. Registrer antall dyrkede umodne COCer.
  4. Informer pasienten om antall dyrkede COCer. Diskuter innsamling av sæd med pasientene og deres partnere. Utfør sædutvinning i henhold til den normale prosedyren.
  5. Kultur de umodne COCene ved 37 °C i fuktig luft som inneholder 5 % CO2 og 5 % O2 i 28–32 timer.
  6. Vurder oocyttmodenhet.
    1. Denude cumulus celler ved gjentatt pipettering ved hjelp av en glass Pasteur pipette under stereoskopet med 40x forstørrelse. Undersøk ekstrudering av polarlegemet (PB) for å identifisere utviklingsstadiet av oocyttene. Se figur 2 for representative bilder av oocytter i COCer, metafase II (MII), metafase I (MI) og germinale vesyrer (GVs) med klare morfologiske egenskaper.
      MERK: Bruk en vertikal flamme (f.eks. av en Bunsen-brenner) for å justere diameteren på glasset Pasteur pipette til størrelsen på en oocytt.
    2. Tell MII oocytter og registrer nummeret.
    3. Velg modne oocytter for IVF eller vitrifisering.
      MERK: Samle sperm på dagen oocytter modne for IVF, men ikke for oocyte vitrification.
    4. Kultur de umodne oocytter i GV og MI scenen i den opprinnelige IVM kultur medium med cumulus celler for en annen 10-14 h. Gjenta trinn 7.6.2-7.6.3.

8. Utfør ICSI eller oocytt vitrification

  1. Følg standardprosedyren til reproduktive senter8.

9. Kultur embryoer og utføre embryo kryopreservering

  1. Følg standardprosedyren til reproduktive senter8.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Frem til desember 2019 ble OP-IVM brukt til fertilitetsbevaring av 274 pasienter. Embryologiske og reproduktive utfall av 158 pasienter mellom 2014 og 2016 ble publisert i en tidligere artikkel8. Følgende eksempel drøfter prosedyren som fulgte for en PCOS-pasient som fikk OP-IVM i 2016. Pasienten er en 28-åring diagnostisert med primær ufruktbarhet, venstre adnexal cyste, og PCOS. Hun fikk laparoskopisk cystektomi og OP-IVM28. 27 umodne COCer ble oppnådd. Etter en 28 timers kultur ble 7 oocytter i MII-scenen valgt og befruktet av ICSI. Antall 2 pro-nuklei av god kvalitet (2PNer) på dag 1 og embryoer på dag 3, og dag 5 var henholdsvis 6, 6 og 2. Blastocystene som ble oppnådd på dag5 (4. oktober 2016) ble frosset. 14.februar 2017 ble en blastocyst tint. Denne tinte blastulaen var i live og overførttil livmoren 14. Resultatene av en blod menneskelig chorionic gonadotropin (hCG) test var positive, og ultrasonografi viste intrauterin tidlig graviditet. Pasienten leverte en sunn jente ved keisersnitt ved 40uker den 2.

Figure 1
Figur 1: OP-IVM-flytskjema. Før gynekologisk kirurgi, under transvaginal ultralydveiledning, aspireres follikkelvæske gjennom IMFA. Den oppnådde follikkelvæsken overføres til IVF-laboratoriet, filtreres og skylles. Umodne COCer overføres til en forhåndsvarslet IVM-kulturløsning og dyrkes i 28-32 timer. Eldre oocytter med PB brukes til kryopreservering eller IVF-ET. Forkortelser: IMFA = umoden follikkel aspirasjon; IVF = in vitro befruktning; IVF-ET = IVF og embryooverføring; COCer = cumulus-oocyttkomplekser; IVM = in vitro modning; OP-IVM = IVM før en gynekologisk operasjon; GV = germinal vesicle; MI = metafase I; ICSI = intracytoplasmisk sædinjeksjon; PB = polar kropp; PN = pro-nucleus; D1 = dag 1. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Figure 2
Figur 2: Morfologiske egenskaper ved representative bilder av oocytter. (A) COCer, (B) MII, (C) MI, (D) GV-trinn. Forkortelser: COC = cumulus-oocyttkomplekser; GV = germinal vesicle; MI = metafase I; MII = metafase II. Klikk her for å se en større versjon av denne figuren.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

OP-IVM-metoden beskrevet i denne artikkelen strekker seg til konvensjonelle IVM-applikasjoner og kombinerer IVM etter oocyttuthenting med rutinemessig gynekologisk kirurgi. Oocytter som ville ha gått tapt i gynekologisk kirurgi kan nå brukes til IVF-ET eller FP uten ytterligere kirurgisk risiko. OP-IVM ble først brukt til å hente oocytter før eggstokkboring hos PCOS-pasienter. Søknaden utvidet snart til ufruktbare pasienter som trenger godartet gynekologisk kirurgi og kreft eller hematologisk sykdom pasienter som trenger kjemoradioterapi. På grunn av den potensielle risikoen for metastase er OP-IVM ikke egnet eller anbefalt for pasienter med ondartede svulster. Basert på OP-IVM er det etablert en ny kinesisk modus for eggbank for FP av ufruktbare pasienter og kreftpasienter ved denne institusjonen.

For OP-IVM bør både haster med gynekologisk kirurgi og potensialet for å oppnå et høyere antall oocytter vurderes. Generelt er IVM-resultatet positivt korrelert med antall umodne oocytter oppnådd under oocyttuthenting9. Dominerende follikler kan hemme veksten av omkringliggende mindre follikler og forårsake atresia10, noe som resulterer i et redusert antall gjenvunnet umodne oocytter. Derfor, hvis gynekologisk kirurgi ikke haster, er det beste vinduet for OP-IVM når et større antall små follikler med få dominerende follikler observeres av B-modus ultrasonografi. I tillegg kan anti-Mullerian hormon (AMH) brukes som en parameter for å forutsi ovariereservat da antall gjenvunnet oocytter er betydelig positivt korrelert med AMH11,12. I tilfeller der gynekologisk drift har blitt prioritert, bør så mange umodne oocytter hentes så mye som mulig. I nødoperasjoner bør oocyttuthenting og IVM vurderes nøye basert på pasientens tilstand og vilje.

IMFA under transvaginal ultralydveiledning er en metode som brukes til å hente oocytter som kan redusere skade på eggstokkfunksjonen13,14. Laparoskopisk ovarial punktering for å aspirere umodne oocytter brukes også i noen studier15. Men sammenlignet med laparoskopi tar IMFA under transvaginal ultralyd mindre tid, er mindre invasiv, er lettere å utføre16,17, og kan oppnå mer målrettet follikkelaspirasjon. Derfor, for å minimere virkningen på ovariereservatet og øke aspirasjonsnøyaktigheten, anbefales IMFA under transvaginal ultralydveiledning som en bedre metode for oocyttuthenting i OP-IVM. Imidlertid anbefales ICSI for befruktning. Tidligere studier har vist at zona pellucida vil herdes etter å ha blitt dyrket in vitro i lange perioder, noe som resulterer i redusert grad av vellykket befruktning18. ICSI har vist seg å effektivt forbedre befruktningshastigheten til IVM oocytter i naturlige sykluser19,20. Selv om nyere studier har vist lignende befruktningsrater for ICSI og IVF21,22, har ICSI fordelen av å bruke naturlige sykluser i stedet for eggstokkstimulering. Innsamlede embryoer fryses på grunn av uforberedt endometrium, og embryooverføring kan utføres senere i henhold til standardprosedyren ved hvert senter.

Formålet med ART er å behandle ufruktbarhet og levere sunne babyer. Tidligere forskning om reproduktive utfall av OP-IVM viste at antall gjenvunne oocytter og oocyttmodning er sammenlignbare med de som observeres for konvensjonelle IVM-sykluser ved hjelp av FSH og hCG. OP-IVM har imidlertid en lavere HLR og en lavere LBR enn konvensjonelle IVM8,23,24,25. Dette kan forklares med begrenset oocyttmodning på grunn av det dårlige utviklingspotensialet til umodne oocytter i naturlige sykluser. Hormonstimulering er imidlertid ikke et alternativ for noen pasienter som ikke er i stand til eller som ikke har tid til å motta behandlingen. I tillegg kan vitrifisering skade oocyttens utviklingspotensial, noe som resulterer i lave HLR-er og LBRs26,27.

Videre kan gonadotropiner forstørre eggstokkene og øke risikoen for blødning under oocyttuthenting, noe som påvirker eksponeringen av operative felt i laparoskopi negativt. LBR for OP-IVM-metoden er relativt lav. Flere studier er nødvendig for å undersøke den beste operative timingen og modifisere IVM-kultursystemet for å forbedre OP-IVM-resultatene. Totalt sett kombinerer OP-IVM IVM med gynekologisk kirurgi slik at umodne oocytter som ville ha blitt skadet eller kassert, kan lagres og brukes til ART. OP-IVM har fordelene ved å unngå komplikasjoner forårsaket av ovarialstimulerende medisiner og redusere antall operasjoner for ufruktbarhet behandling. Derfor bør OP-IVM betraktes som en potensielt verdifull behandlingsmetode for visse pasienter og studeres mer i dybden for bedre å forstå effektene og resultatene.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne har ingenting å avsløre.

Acknowledgments

Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra China National Key R&D Program (nr. 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), National Science Foundation of China (nr. 81571386, 81730038), CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (2019-I2M-5-001) og Special Research Project of Chinese Capital Health Development (2018-2-4095).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
19 G single-lumen aspiration needles Cook, Australia K-OPS-7035-REH-ET
4-well plate Corning
70 μm nylon cell strainer Falcon, USA 352350
CO2 Incubator Thermo
Culture oil Vitrolife, Sweden 10029,OVOIL  Step 3.2.
FSH & LH Ferring Reproductive Health, Germany MENOPUR®
Glass Pasteur pipette Hilgenberg GmbH, Germany 3154102-26
G-MOPS medium pH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM medium Origio, Denmark ART-1600-B
Laminar Flow Clean Benches ESCO
Petri dish Thermo Fisher Scientific, Denmark 263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubator Vitrolife, Sweden 10130, G-MOPS PLUS Step 7.1.
Rinse solution Cook, Australia K-SIFB-100
Stereoscope Nikon

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, Å, Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. Wellik, D. M., et al. 132, Academic Press. 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

Tags

Medisin Utgave 171 IVM fertilitetsbevaring transvaginal gjenfinning endoskopiske gynekologiske prosedyrer PCOS

Erratum

Formal Correction: Erratum: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery
Posted by JoVE Editors on 06/26/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. The Protocol and Representative Results sections were updated.

Step 3.2 of the Protocol was updated from:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.075 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.075 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

to:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.75 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.75 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

The legend for Figure 2 was updated from:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) MII, (C) MI, (D) GV stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

to:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) GV, (C) MI, (D) MII stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

OP-IVM: Kombinere in vitro modning etter Oocyte Gjenfinning med gynekologisk kirurgi
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan,… More

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan, L., Ma, C., Li, R., Yan, J., Qiao, J. OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. J. Vis. Exp. (171), e61647, doi:10.3791/61647 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter