Summary

Ökotoxikologische Auswirkungen von Mikroplastik auf die Entwicklung von Vogelembryonen durch Schlüpfen ohne Eierschale

Published: August 14, 2021
doi:

Summary

Dieser Artikel stellt eine Methode des Schlüpfens ohne Verwendung einer Eierschale für toxikologische Untersuchungen von Partikelschadstoffen wie Mikroplastik vor.

Abstract

Mikroplastik ist ein aufstrebender globaler Schadstofftyp, der aufgrund seiner Aufnahme und Translokation in tierischen Geweben und Organen eine große Gesundheitsbedrohung für Tiere darstellt. Ökotoxikologische Wirkungen von Mikroplastik auf die Entwicklung von Vogelembryonen sind nicht bekannt. Das Vogelei ist ein komplettes Entwicklungs- und Ernährungssystem, und die gesamte Embryoentwicklung findet in der Eierschale statt. Daher ist eine direkte Aufzeichnung der Entwicklung von Vogelembryonen unter dem Stress von Schadstoffen wie Mikroplastik durch die undurchsichtige Eierschale beim traditionellen Schlüpfen stark eingeschränkt. In dieser Studie wurden die Auswirkungen von Mikroplastik auf die Entwicklung von Wachtelembryonen visuell überwacht, indem sie ohne Eierschale schlüpften. Die Hauptschritte umfassen die Reinigung und Desinfektion befruchteter Eier, die Inkubation vor der Exposition, die kurzfristige Inkubation nach der Exposition und die Probenextraktion. Die Ergebnisse zeigen, dass im Vergleich zur Kontrollgruppe das Nassgewicht und die Körperlänge der mikroplastikexponierten Gruppe einen statistischen Unterschied auften und der Leberanteil der gesamten exponierten Gruppe signifikant anstieg. Darüber hinaus haben wir externe Faktoren bewertet, die die Inkubation beeinflussen: Temperatur, Feuchtigkeit, Drehwinkel der Eier und andere Bedingungen. Diese experimentelle Methode liefert wertvolle Informationen über die Ökotoxikologie von Mikroplastik und eine neuartige Möglichkeit, die nachteiligen Auswirkungen von Schadstoffen auf die Entwicklung von Embryonen zu untersuchen.

Introduction

Die Produktion von Kunststoffabfällen betrug im Jahr 2015 etwa 6300 Mt, von denen ein Zehntel recycelt wurde und der Rest verbrannt oder unter der Erde vergraben wurde. Es wird geschätzt, dass bis 2050 etwa 12.000 Tonnen Plastikmüll unterirdisch vergraben würden1. Mit der Aufmerksamkeit der internationalen Gemeinschaft für Kunststoffabfälle schlug Thompson erstmals 2004 das Konzept des Mikroplastiks vor2. Mikroplastik (MPs) bezieht sich auf kleine Partikelkunststoffe mit einem Partikeldurchmesser von weniger als 5 mm. Derzeit haben Forscher die allgegenwärtige Präsenz von Abgeordneten an der Küste verschiedener Kontinente, der Atlantikinseln, der Binnenseen, der Arktis und der Tiefseelebensräume3,4 ,5,6,7festgestellt . Daher haben mehr Forscher begonnen, die Umweltgefahren von Abgeordneten zu untersuchen.

Organismen könnten Abgeordnete in der Umwelt aufnehmen. MPs wurden im Verdauungstrakt von 233 Meeresorganismen weltweit gefunden (darunter 100% Schildkrötenarten, 36% Robbenarten, 59% Walarten, 59% Seevogelarten, 92 Arten von Seefischen und 6 Arten von Wirbellosen)8. Darüber hinaus können Abgeordnete das Verdauungssystem der Organismen blockieren, sich ansammeln und in ihren Bobies migrieren9. Es wurde festgestellt, dass Abgeordnete über die Nahrungskette übertragen werden können und ihre Aufnahme sich mit den Veränderungen des Lebensraums, des Wachstumsstadiums, der Ernährungsgewohnheiten und der Nahrungsquellen unterscheidet10. Einige Forscher berichteten über die Existenz von Abgeordneten im Kot von Seevögeln11, was bedeutet, dass Seevögel als Träger von Abgeordneten fungieren. Darüber hinaus kann die Einnahme von Abgeordneten die Gesundheit einiger Organismen beeinträchtigen. Zum Beispiel können Abgeordnete im Magen-Darm-Trakt verwickelt sein, wodurch die Mortalität von Walen erhöht wird12.

Abgeordnete allein haben toxische Wirkungen auf Organismen sowie gemeinsame toxische Wirkungen auf Organismen mit anderen Schadstoffen. Die Einnahme von umweltbedingten Konzentrationen von Kunststoffabfällen kann die Funktion des endokrinen Systems erwachsener Fische stören13. Die Größe von Mikroplastik ist einer der wichtigen Faktoren, die ihre Aufnahme und Akkumulation durch Organismen beeinflussen14,15. Die kleinen Kunststoffe, insbesondere die nanogroßen Kunststoffe, sind anfällig für Wechselwirkungen mit Zellen und Organismen mit hoherToxizität 16,17,18,19. Obwohl die schädlichen Auswirkungen von Mikroplastik in Nanopartikelgröße auf Organismen das aktuelle Forschungsniveau übersteigen, ist der Nachweis und die Quantifizierung von Mikroplastik mit Größen unter mehreren Mikrometern, insbesondere der Submikron-/Nanokunststoffe in der Umwelt, nach wie vor eine große Herausforderung. Darüber hinaus haben Nanokunststoffe auch einige Auswirkungen auf Embryonen. Polystyrol kann die Entwicklung von Seeigelembryonen schädigen, indem es Protein- und Genprofile reguliert20.

Um die möglichen Auswirkungen von Abgeordneten auf Organismen zu untersuchen, haben wir diese Studie durchgeführt. Aufgrund der Ähnlichkeit zwischen Vogelembryonen und menschlichen Embryonen werden sie normalerweise in der entwicklungsbiologischen Forschung21 verwendet, einschließlich Angiogenese und Antiangiogenese, Tissue Engineering, Biomaterialimplantat und Hirntumoren22,23,24. Vogelembryonen haben die Vorteile von niedrigen Kosten, einem kurzen Kulturzyklus und einfacher Bedienung25,26. Daher haben wir wachtelembryonen mit einem kurzen Wachstumszyklus als Versuchstier in dieser Studie ausgewählt. Gleichzeitig können wir die morphologischen Veränderungen von Wachtelembryonen, die während der Embryonalentwicklungsphase den MPs ausgesetzt sind, mit einer eierschalenfreien Bruttechnologie direkt beobachten. Die verwendeten Versuchsmaterialien waren Polypropylen (PP) und Polystyrol (PS). Da PP und PS27 den größten Anteil an Polymertypen haben, die weltweit in Sedimenten und Gewässern gewonnen werden, sind ethylen und propylen28die häufigsten Polymertypen, die aus gefangenen Meeresorganismen gewonnen werden. Dieses experimentelle Protokoll beschreibt den gesamten Prozess zur visuellen Bewertung der toxikologischen Wirkungen von Abgeordneten auf Wachtelembryonen, die Den Abgeordneten ausgesetzt sind. Wir können diese Methode leicht erweitern, um die Toxizität anderer Schadstoffe für die Embryonalentwicklung anderer oviparer Tiere zu untersuchen.

Protocol

1. Vorbereitung vor der Exposition Wählen Sie befruchtete Wachteleier, die am selben Tag geboren wurden, für den Expositionstest aus. Wählen Sie Wachteleier mit ähnlichen Gewichten. Jedes befruchtete Wachtelei ist etwa 10-12 g. Reinigen Sie alle befruchteten Wachteleier vollständig von äußerem Kot und anderen Ablagerungen. Sterilisieren Sie jedes vorgeschlüpfte befruchtete Wachtelei und die zu verwendenden Eier (Wählen Sie Eier mit ähnlicher Schalenform, insbesondere die …

Representative Results

Für die Analyse experimenteller Daten verglichen wir Nassgewicht, Körperlänge, Brustbeinlänge und die Veränderung des hepatosomatischen Index zwischen der Kontrollgruppe und den 6 experimentellen Gruppen, wobei wir das Wachstum und die Entwicklung der Wachtelembryonen aus einer Makroperspektive maßen und reflektieren. Wir entdeckten sechs normale Wachtelembryonen in jeder Gruppe. Jeder Embryo erreichte das erforderliche Hamburger und Hamilton (HH) Stadium. In Abbildu…

Discussion

Dieses Papier bietet ein effektives experimentelles Schema zur Bewertung der Entwicklung von Wachtelembryonen durch den Nachweis der grundlegenden Entwicklungsindizes. Es gibt jedoch noch einige Einschränkungen für dieses Experiment.

Erstens ist die Mortalität von Wachtelembryonen im späteren Stadium des Schlüpfens aufgrund des schalenlosen Schlüpfens höher. Es gibt künstlich unkontrollierbare Faktoren wie die Zerstörung des normalen Proteinverhältnisses im experimentellen Prozess. …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde durch wichtige Forschungs- und Entwicklungsprojekte in der Uigurischen Autonomen Region Xinjiang unterstützt (2017B03014, 2017B03014-1, 2017B03014-2, 2017B03014-3).

Materials

 Multi sample tissue grinder Shanghai Jingxin Industrial Development Co., Ltd. Tissuelyser-24 Grind large-sized plastics into small-sized ones at low temperature
Electronic balance OHAUS corporation PR Series Precision Used for weighing
Fertilized quail eggs Guangzhou Cangmu Agricultural Development Co., Ltd. Quail eggs for hatching without shell
Fluorescent polypropylene particles Foshan Juliang Optical Material Co., Ltd. Types of plastics selected for the experiment
Incubator Shandong, Bangda Incubation Equipment Co., Ltd. 264 pc Provide a place for embryo growth and development
Nanometer-scale polystyrene microspheres Xi’an Ruixi Biological Technology Co., Ltd. 100 nm, 200 nm, 500 nm Types of plastics selected for the experiment
Steel ruler Deli Group 20 cm Used to measure  length
Vertical heating pressure steam sterilizer Shanghai Shenan Medical Instrument Factory LDZM-80KCS-II Sterilize the experimental articles

References

  1. Geyer, R., Jambeck, J. R., Law, K. L. Production, use, and fate of all plastics ever made. Science Advances. 3 (7), 5 (2017).
  2. Thompson, R. C., et al. Lost at sea: Where is all the plastic. Science. 304 (5672), 838-838 (2004).
  3. Barletta, M., Lima, A. R. A., Costa, M. F. Distribution, sources and consequences of nutrients, persistent organic pollutants, metals and microplastics in South American estuaries. Science of the Total Environment. 651, 1199-1218 (2019).
  4. Eriksson, C., Burton, H., Fitch, S., Schulz, M., vanden Hoff, J. Daily accumulation rates of marine debris on sub-Antarctic island beaches. Marine Pollution Bulletin. 66 (1-2), 199-208 (2013).
  5. Zhang, C. F., et al. Microplastics in offshore sediment in the Yellow Sea and East China Sea, China. Environmental Pollution. 244, 827-833 (2019).
  6. Obbard, R. W., et al. Global warming releases microplastic legacy frozen in Arctic Sea ice. Earths Future. 2 (6), 315-320 (2014).
  7. Van Cauwenberghe, L., Vanreusel, A., Mees, J., Janssen, C. R. Microplastic pollution in deep-sea sediments. Environmental Pollution. 182, 495-499 (2013).
  8. Wilcox, C., Van Sebille, E., Hardesty, B. D. Threat of plastic pollution to seabirds is global, pervasive, and increasing. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (38), 11899-11904 (2015).
  9. Wright, S. L., Thompson, R. C., Galloway, T. S. The physical impacts of microplastics on marine organisms: A review. Environmental Pollution. 178, 483-492 (2013).
  10. Ferreira, G. V. B., Barletta, M., Lima, A. R. A. Use of estuarine resources by top predator fishes. How do ecological patterns affect rates of contamination by microplastics. Science of the Total Environment. 655, 292-304 (2019).
  11. Provencher, J. F., Vermaire, J. C., Avery-Gomm, S., Braune, B. M., Mallory, M. L. Garbage in guano? Microplastic debris found in faecal precursors of seabirds known to ingest plastics. Science of the Total Environment. 644, 1477-1484 (2018).
  12. Baulch, S., Perry, C. Evaluating the impacts of marine debris on cetaceans. Marine Pollution Bulletin. 80 (1-2), 210-221 (2014).
  13. Rochman, C. M., Kurobe, T., Flores, I., Teh, S. J. Early warning signs of endocrine disruption in adult fish from the ingestion of polyethylene with and without sorbed chemical pollutants from the marine environment. Science of the Total Environment. 493, 656-661 (2014).
  14. Mattsson, K., et al. Brain damage and behavioural disorders in fish induced by plastic nanoparticles delivered through the food chain. Scientific Reports. 7, 7 (2017).
  15. Brown, D. M., Wilson, M. R., MacNee, W., Stone, V., Donaldson, K. Size-dependent proinflammatory effects of ultrafine polystyrene particles: A role for surface area and oxidative stress in the enhanced activity of ultrafines. Toxicology and Applied Pharmacology. 175 (3), 191-199 (2001).
  16. Salvati, A., et al. Experimental and theoretical comparison of intracellular import of polymeric nanoparticles and small molecules: toward models of uptake kinetics. Nanomedicine-Nanotechnology Biology and Medicine. 7 (6), 818-826 (2011).
  17. Frohlich, E., et al. Action of polystyrene nanoparticles of different sizes on lysosomal function and integrity. Particle and Fibre Toxicology. 9, 13 (2012).
  18. Bexiga, M. G., Kelly, C., Dawson, K. A., Simpson, J. C. RNAi-mediated inhibition of apoptosis fails to prevent cationic nanoparticle-induced cell death in cultured cells. Nanomedicine. 9 (11), 1651-1664 (2014).
  19. Lehner, R., Weder, C., Petri-Fink, A., Rothen-Rutishauser, B. Emergence of Nanoplastic in the Environment and Possible Impact on Human Health. Environmental Science, Technology. 53 (4), 1748-1765 (2019).
  20. Pinsino, A., et al. Amino-modified polystyrene nanoparticles affect signalling pathways of the sea urchin (Paracentrotus lividus) embryos. Nanotoxicology. 11 (2), 201-209 (2017).
  21. El-Ghali, N., Rabadi, M., Ezin, A. M., De Bellard, M. E. New Methods for Chicken Embryo Manipulations. Microscopy Research and Technique. 73 (1), 58-66 (2010).
  22. Rashidi, H., Sottile, V. The chick embryo: hatching a model for contemporary biomedical research. Bioessays. 31 (4), 459-465 (2009).
  23. Faez, T., Skachkov, I., Versluis, M., Kooiman, K., de Jong, N. In vivo characterization of ultrasound contrast agents: microbubble spectroscopy in a chicken embryo. Ultrasound in Medicine and Biology. 38 (9), 1608-1617 (2012).
  24. Yamamoto, F. Y., Neto, F. F., Freitas, P. F., Ribeiro, C. A. O., Ortolani-Machado, C. F. Cadmium effects on early development of chick embryos. Environmental Toxicology and Pharmacology. 34 (2), 548-555 (2012).
  25. Li, X. D., et al. Caffeine interferes embryonic development through over-stimulating serotonergic system in chicken embryo. Food and Chemical Toxicology. 50 (6), 1848-1853 (2012).
  26. Lokman, N. A., Elder, A. S. F., Ricciardelli, C., Oehler, M. K. Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an In Vivo Model to Study the Effect of Newly Identified Molecules on Ovarian Cancer Invasion and Metastasis. International Journal of Molecular Sciences. 13 (8), 9959-9970 (2012).
  27. Burns, E. E., Boxall, A. B. A. Microplastics in the aquatic environment: Evidence for or against adverse impacts and major knowledge gaps. Environmental Toxicology and Chemistry. 37 (11), 2776-2796 (2018).
  28. Alejo-Plata, M. D., Herrera-Galindo, E., Cruz-Gonzalez, D. G. Description of buoyant fibers adhering to Argonauta nouryi (Cephalopoda: Argonautidae) collected from the stomach contents of three top predators in the Mexican South Pacific. Marine Pollution Bulletin. 142, 504-509 (2019).
check_url/fr/61696?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wang, L., Xue, N., Li, W., Wufuer, R., Zhang, D. Ecotoxicological Effects of Microplastics on Bird Embryo Development by Hatching without Eggshell. J. Vis. Exp. (174), e61696, doi:10.3791/61696 (2021).

View Video