Summary

Produksjon av IgG Fusion Proteiner Forbigående Uttrykt i Nicotiana benthamiana

Published: January 16, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver her en enkel metode for uttrykk, ekstraksjon og rensing av rekombinant human IgG smeltet til GFP i Nicotiana benthamiana. Denne protokollen kan utvides til rensing og visualisering av mange proteiner som benytter kolonnekromatografi. Videre er protokollen tilpasningsdyktig til personlig og virtuell høyskoleundervisningslaboratorium, som gir prosjektbasert utforskning.

Abstract

Høy etterspørsel etter antistoffer som terapeutiske intervensjoner for ulike smittsomme, metabolske, autoimmune, neoplastiske og andre sykdommer skaper et økende behov for å utvikle effektive metoder for rekombinant antistoffproduksjon. Per 2019 var det mer enn 70 FDA-godkjente monoklonale antistoffer, og det er eksponentielt vekstpotensial. Til tross for deres løfte, begrensende faktorer for utbredt bruk er produksjonskostnader og kompleksitet. Potensielt tilbyr planter rimelige, trygge og lett skalerbare proteinproduksjonsstrategier. Planter som Nicotiana benthamiana kan ikke bare riktig brette og montere komplekse pattedyrproteiner, men kan også legge til kritiske post-translasjonelle modifikasjoner som ligner på de som tilbys av pattedyrcellekulturer. I dette arbeidet, ved hjelp av innfødte GFP og en syre-stabil variant av grønt fluorescerende protein (GFP) smeltet til humane monoklonale antistoffer, var vi i stand til å visualisere hele forbigående antistoffuttrykk og rensingsprosess fra N. benthamiana planter. Avhengig av eksperimentets formål kan innfødt GFP-fusjon sikre enklere visualisering under uttrykksfasen i plantene, mens syrestabil GFP-fusjon gjør det mulig å visualisere under nedstrøms behandling. Denne skalerbare og enkle prosedyren kan utføres av en enkelt forsker for å produsere mg mengder svært rene antistoff- eller antistofffusjonsproteiner i løpet av få dager ved hjelp av bare noen få små planter. En slik teknikk kan utvides til visualisering av alle typer antistoffrensingsprosesser og potensielt mange andre proteiner, både i plante- og andre uttrykkssystemer. Videre kan disse teknikkene være til nytte for virtuelle instruksjoner og bli utført i et undervisningslaboratorium av lavere studenter som har minimal tidligere erfaring med molekylærbiologiteknikker, og gir grunnlag for prosjektbasert utforskning med virkelige applikasjoner.

Introduction

Bransjerapporter tyder på at tretten av de tjue mest innbringende stoffene i USA var biologiske (proteinbaserte legemidler), hvorav ni var antistoffer. Per 2019 var det over 570 antistoff (Ab) terapeutiske midler i ulike kliniske utviklingsfaser1,2,3. Nåværende globale Ab salg overstiger 100 milliarder USD, og monoklonale Ab (mAb) terapeutiske markedet forventes å generere opp til 300 milliarder USD innen 20251,4. Med så høy etterspørsel og forventede økninger i inntektene, har forskere jobbet med å utvikle måter å produsere Ab-terapeutiske midler i en stadig større skala, med høyere kvalitet og lavere kostnader. Plantebaserte uttrykkssystemer har flere fordeler fremfor tradisjonelle pattedyrcellelinjer for rimelig og storskala produksjon av Ab therapeutics5,6. Produksjon av proteinterapeutiske midler i planter (“molekylær pharming”) krever ikke dyre bioreaktorer eller cellekulturfasiliteter som tradisjonelle pattedyrcellekulturteknikker7,8. Planter kan ikke kontrakt menneskelige patogener, minimere potensiell forurensning9. Både forbigående og transgent plantebasert proteinuttrykk kan benyttes som rimeligere alternativer til pattedyr- eller bakterieproduksjonssystemer10. Selv om transgene planter foretrekkes for avlingsproduksjon, kan rekombinant proteinproduksjon ved hjelp av denne metoden kreve uker til måneder. Fremskritt i forbigående uttrykk ved hjelp av virale vektorer gjennom enten sprøyte eller vakuum agroinfiltrasjon tillater henholdsvis små- og storskala produksjon av ønsket protein i dag11,12,13,14. Produksjon av mAbs mot Ebola, Dengue og Zika, og mange andre rekombinante proteiner, har blitt produsert og renset raskt og effektivt ved hjelp av forbigående uttrykk i N. benthamiana planter 15,16,17,18,19. Disse omstendighetene gjør forbigående plantebasert uttrykk et attraktivt alternativ for å utvikle flere Ab-terapeutiske midler og metodene som er demonstrert i denne protokollen20.

Førstegenerasjons mAbs var av murinavledning, noe som resulterte i ikke-spesifikk immunogenitet når de brukes i humane studier21. Over tid, chimeric, humanisert, og til slutt, fullt menneskelig Abs ble produsert for å redusere immunogenisitet indusert av Ab terapeutiske. Dessverre forårsaker noen av disse Abs fortsatt vertsimmunogenitet på grunn av forskjeller i glykosylering21. Utviklingen i anleggsteknikk har tillatt for modifisering av Ab glycans, noe som er viktig siden en Ab stabilitet og funksjon kan betydelig påvirkes av sin glykosylering tilstand22. Fremskritt har tillatt produksjon i plantesystemer av høyt nivå uttrykk for humaniserte mAbs, som inneholder menneskelige glykomaner og resulterende de ønskede biologiske egenskapene til en masseprodusert menneskelig farmasøytisk19,21.

I tillegg til rekombinante Abs, ab fusjonmolekyler (Ab fusjoner) har blitt utforsket for ulike formål de siste tiårene. Ab fusjoner består ofte av en Ab eller Ab fragment smeltet til et molekyl eller protein og er utformet for å fremkalle svar fra immuneffektorceller23. Disse molekylene har blitt opprettet som potensielle terapeutiske inngrep for å behandle ulike patologier som kreft og autoimmunesykdommer 24,25,26,27. Rekombinante immunkomplekser (IC) er en annen klasse av Ab fusjoner som har blitt ansatt som vaksinekandidater28. RICs dra nytte av immunsystemet evne til å gjenkjenne Fc regioner av Ab fusjoner og har blitt funnet å forbedre immunogenisitet når kombinert med andre vaksine plattformer29,30,31.

Green Fluorescent Protein (GFP) er et bioluminescerende protein avledet fra manetene Aequorea Victoria, som avgir grønt lys når begeistret av ultrafiolettlys 32,33. Gjennom årene har GFP bruk som en visuell markør for genuttrykk utvidet fra uttrykk i Escherichia coli til mange protein uttrykkssystemer, inkludert N. benthamiana planter 34,35,36,37,38. Synlige markører, som GFP, har rikelig implikasjoner i undervisning og læring av vitenskapelige begreper. Tallrike entry-level studenter beskriver vanskeligheter med å forstå vitenskapelige begreper når ideen blir undervist er ikke synlig for det blotte øye, for eksempel begrepene molekylærbiologi og relaterte felt39. Visuelle markører, som GFP, kan dermed bidra til behandling av informasjon knyttet til de vitenskapelige prosessene og kan bidra til å redusere vanskelighetene studentene rapporterer i å lære mange vitenskapelige konsepter.

Selv om GFP ofte brukes som markør for å indikere gen og uttrykk in vivo, er det vanskelig å visualisere det i nedstrømsprosessene hvis du bruker sure forhold. Denne situasjonen er først og fremst fordi GFP ikke opprettholder sin struktur og resulterende fluorescens ved lav pH40. Midlertidige sure miljøer er ofte nødvendig i ulike renseprosesser, for eksempel protein G, protein A og protein L kromatografi, ofte benyttet for Ab rensing41,42,43,44. GFP mutanter har blitt brukt til å beholde fluorescens under sureforhold 45,46.

Her beskriver vi en enkel metode for uttrykk, ekstraksjon og rensing av rekombinante IgG-fusjonsproteiner i N. benthamiana-planter. Vi produserte tradisjonell GFP smeltet til N-endestasjonen til en humanisert IgG tung kjede, og skapte en GFP-IgG-fusjon. Samtidig utviklet vi fusjonen av en plantekodonoptimalisert sekvens for en syrestabil GFP (asGFP) til N-endestasjonen til en humanisert IgG-tung kjede, noe som skaper en asGFP-IgG-fusjon. Fordelene ved å produsere GFP-IgG inkluderer evnen til å visualisere tilstedeværelsen av et målprotein under uttrykket, mens asGFP-IgG gjør det mulig å se tilstedeværelsen av rekombinant protein i ikke bare uttrykks- og ekstraksjonstrinnene, men også i proteinets rensetrinn. Denne protokollen kan tilpasses for produksjon, rensing og visualisering av en rekke GFP fusjonsproteiner produsert i N. benthamiana og renset ved hjelp av kromatografi teknikker som krever lav pH. Prosessen kan også skreddersys til ulike mengder bladmateriale. Mens Abs og fusjonsproteiner merket med GFP eller asGFP ikke er ment å brukes til terapi, kan disse metodene være nyttige som kontroller under eksperimenter og kan også videre benyttes som et undervisningsverktøy for molekylær og cellulær biologi og bioteknologi, både personlig og praktisk talt.

Protocol

1. Dyrke N. benthamiana planter Legg jord torvpellets på et brett og hell tidligere kokt, fortsatt varmt (~ 40-45 ° C), vann over torvpellets for full ekspansjon. Etter pellets er fullt utvidet, plasser 2-3 N. benthamiana frø på hver torv pellet ved hjelp av pinsett. Hell ca 0,5 i vann for å dekke bunnen av brettet. Merk skuffen med såingsdatoen. Fortsett å vanne plantene daglig med passende mengder gjødsel. Gjødsel (vannløselig all-purpose…

Representative Results

Denne studien viser en enkel og rask metode for å produsere rekombinante proteiner og visualisere dem gjennom nedstrøms prosesser. Ved hjelp av N. benthamiana og etter den medfølgende protokollen, kan rekombinant proteinproduksjon beskrevet her oppnås på mindre enn en uke. Den generelle arbeidsflyten for planteuttrykk, ekstraksjon og rensing vises i figur 1. Stadier av plantevekst fra 2-ukers gamle frøplanter, 4-ukers gamle planter og 6-ukers gamle planter vises i <strong clas…

Discussion

Denne protokollen kan benyttes for visuell verifisering av eventuelle rekombinante Ab eller rekombinant protein produsert i N. benthamiana planter, inkludert de som krever midlertidig eksponering for sure miljøer for kolonnerensing formål42,43,44. Videre kan fusjonen av asGFP til andre proteiner i forskjellige uttrykkssystemer være et nyttig verktøy for eksperimentell visualisering og utdanning. Protokollen heri kan…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Maria Pia DiPalma for redigering av videoen. Vi takker også Office of Educational Outreach and Student Services ved Arizona State University for deres sjenerøse publikasjonsavgiftshjelp. Forskning for denne protokollen ble støttet av School of Life Sciences, Arizona State University.

Materials

5 mL syringe any N/A
50 mL syringe any N/A
Agar SIGMA-ALDRICH A5306
Blender with cups any N/A
Bromophenol blue Bio-Rad 1610404
DTT (DL-Dithiothreitol) MP BIOMEDICALS 219482101
EDTA (Ethylenedinitrilo)tetraacetic acid SIGMA-ALDRICH E-6760
Ethanol any N/A
Glycerol G-Biosciences BTNM-0037
Glycine SIGMA-ALDRICH G7126-500G
HCl (Hydrochloric acid) EMD MILLIPORE CORPORATION HX0603-4
Heating block any reputable supplier N/A
Jiffy-7 727 w/hole peat pellets Hummert International 14237000
Kanamycin Gold Biotechnology Inc K-120-100
KCl (Potassium Chloride) SIGMA-ALDRICH P9541-500G
KH2PO4 (Potassium Phosphate) J.t.baker 3248-05
KOH (Potassium Hydroxide) VWR BDH0262
Magnesium sulfate heptahydrate SIGMA-ALDRICH M2773
MES (2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid) SIGMA-ALDRICH M8250
Miracloth Millipore 4 75855-1R
Moisture control potting mix Miracle-Gro 755783
Na2HPO4 (Sodium Phosphate) J.t.baker 3827-01
NaCl (Sodium Chloride) Santa Cruz Biotechnology sc-203274C
Nicotiana benthamiana seeds any reputable supplier N/A
PMSF (Phenylmethylsulfonyl Fluoride) G-Biosciences 786-787
Polypropylene Column any N/A
Precision Plus Protein Dual Color Standards Bio-Rad 1610394
Protein G resin Thermo Fisher Scientific 20399
Rifampicin Gold Biotechnology Inc R-120-25
SDS (Sodium Dodecyl Sulfate) G-Biosciences DG093
Sodium Ascorbate SIGMA-ALDRICH A7631-500G
Spectrophotometer any reputable supplier N/A
Titan3 0.75 µm glass fiber filter ThermoScientific 40725-GM
Tray for peat pellets with dome any N/A
TRIS Base J.t.baker 4109-02
Tris-HCl Amresco M108-1KG
Tryptone SIGMA-ALDRICH 17221
UV lamp any N/A
Water Soluble All Purpose Plant Food Miracle-Gro 2000992
Yeast extract SIGMA-ALDRICH 9182

References

  1. Lu, R. M., et al. Development of therapeutic antibodies for the treatment of diseases. Journal of Biomedical Science. 27 (1), (2020).
  2. Kaplon, H., Reichert, J. M. Antibodies to watch in 2019. mAbs. 11 (2), 219-238 (2019).
  3. The top 20 drugs by U.S. sales. FiercePharma Available from: https://www.fiercepharma.com/special-report/top-20-drugs-by-2018-u-s-sales (2018)
  4. Grilo, A. L., Mantalaris, A. The Increasingly Human and Profitable Monoclonal Antibody Market. Trends in Biotechnology. 37 (1), 9-16 (2019).
  5. Kim, M. -. Y., et al. Novel vaccination approach for dengue infection based on recombinant immune complex universal platform. Vaccine. 33 (15), 1830-1838 (2015).
  6. Twyman, R. M., Schillberg, S., Fischer, R. Transgenic plants in the biopharmaceutical market. Expert Opinion on Emerging Drugs. 10 (1), 185-218 (2005).
  7. Stoger, E., Fischer, R., Moloney, M., Ma, J. K. -. C. Plant Molecular Pharming for the Treatment of Chronic and Infectious Diseases. Annual Review of Plant Biology. 65 (1), 743-768 (2014).
  8. Buyel, J. F., Fischer, R. Predictive models for transient protein expression in tobacco (Nicotiana tabacum L.) can optimize process time, yield, and downstream costs. Biotechnology and Bioengineering. 109 (10), 2575-2588 (2012).
  9. Yao, J., Weng, Y., Dickey, A., Wang, K. Y. Plants as factories for human pharmaceuticals: Applications and challenges. International Journal of Molecular Sciences. 16 (12), 28549-28565 (2015).
  10. Mor, T. S., Moon, Y. -. S., Palmer, K. E., Mason, H. S. Geminivirus vectors for high-level expression of foreign proteins in plant cells. Biotechnology and Bioengineering. 81 (4), 430-437 (2003).
  11. Hefferon, K. L. Plant virus expression vectors set the stage as production platforms for biopharmaceutical proteins. Virology. 433 (1), 1-6 (2012).
  12. Yamamoto, T., et al. Improvement of the transient expression system for production of recombinant proteins in plants. Scientific Reports. 8 (1), 4755 (2018).
  13. Zhong, G. Y., et al. Commercial production of aprotinin in transgenic maize seeds. Molecular Breeding. 5 (4), 345-356 (1999).
  14. Giddings, G., Allison, G., Brooks, D., Carter, A. Transgenic plants as factories for biopharmaceuticals. Nature Biotechnology. 18 (11), 1151-1155 (2000).
  15. Fulton, A., Lai, H., Chen, Q., Zhang, C. Purification of monoclonal antibody against Ebola GP1 protein expressed in Nicotiana benthamiana. Journal of Chromatography A. 1389, 128-132 (2015).
  16. Diamos, A., et al. A highly expressing, soluble, and stable plant-made IgG fusion carrying Zika virus envelope domain III elicits potent immunogenic responses in mice without adjuvant. Frontiers in immunology. 3140 (11), (2020).
  17. Hunter, J. G. L., et al. Evaluation of a toxoid fusion protein vaccine produced in plants to protect poultry against necrotic enteritis. PeerJ. 2019 (3), 6600 (2019).
  18. Dent, M., et al. Plant-produced anti-dengue virus monoclonal antibodies exhibit reduced antibody-dependent enhancement of infection activity. Journal of General Virology. 97 (12), 3280-3290 (2016).
  19. Diamos, A. G., et al. High Level Production of Monoclonal Antibodies Using an Optimized Plant Expression System. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 472 (2020).
  20. Olinger, G. G., et al. Delayed treatment of Ebola virus infection with plant-derived monoclonal antibodies provides protection in rhesus macaques. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (44), 18030-18035 (2012).
  21. Mastrangeli, R., Palinsky, W., Bierau, H. Glycoengineered antibodies: towards the next-generation of immunotherapeutics. Glycobiology. 29 (3), 199-210 (2019).
  22. Montero-Morales, L., Steinkellner, H. Advanced Plant-Based Glycan Engineering. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 6, 81 (2018).
  23. Joosten, V., Lokman, C., vanden Hondel, C. A. M. J. J., Punt, P. J. The production of antibody fragments and antibody fusion proteins by yeasts and filamentous fungi. Microbial Cell Factories. 2 (1), 1-15 (2003).
  24. Müller, D. Antibody fusions with immunomodulatory proteins for cancer therapy. Pharmacology and Therapeutics. 154, 57-66 (2015).
  25. Bootz, F., Neri, D. Immunocytokines: A novel class of products for the treatment of chronic inflammation and autoimmune conditions. Drug Discovery Today. 21 (1), 180-189 (2016).
  26. Jafari, R., Zolbanin, N. M., Rafatpanah, H., Majidi, J., Kazemi, T. Fc-fusion Proteins in Therapy: An Updated View. Current Medicinal Chemistry. 24 (12), (2017).
  27. Brinkmann, U., Kontermann, R. E. The making of bispecific antibodies. mAbs. 9 (2), 182-212 (2017).
  28. Mason, H. S. Recombinant immune complexes as versatile and potent vaccines. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 12 (4), 988-989 (2016).
  29. Mason, H. S. Recombinant immune complexes as versatile and potent vaccines. Human Vaccines and Immunotherapeutics. 12 (4), 988-989 (2016).
  30. Diamos, A. G., et al. Vaccine synergy with virus-like particle and immune complex platforms for delivery of human papillomavirus L2 antigen. Vaccine. 37 (1), 137-144 (2019).
  31. Diamos, A. G., et al. Codelivery of improved immune complex and virus-like particle vaccines containing Zika virus envelope domain III synergistically enhances immunogenicity. Vaccine. 38 (18), 3455-3463 (2020).
  32. Prasher, D. C., Eckenrode, V. K., Ward, W. W., Prendergast, F. G., Cormier, M. J. Primary structure of the Aequorea victoria green-fluorescent protein. Gene. 111 (2), 229-233 (1992).
  33. Chalfie, M., Tu, Y., Euskirchen, G., Ward, W. W., Prasher, D. C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 263 (5148), 802-805 (1994).
  34. Palm, M., Baumstark-Khan, C., Horneck, G. Green Fluorescent Protein (GFP) Expression in Mammalian Cells After UV-Irradiation. Fundamentals for the Assessment of Risks from Environmental Radiation. , 311-316 (1999).
  35. Paemeleire, K., et al. Intercellular calcium waves in HeLa cells expressing GFP-labeled connexin 43, 32, or 26. Molecular Biology of the Cell. 11 (5), 1815-1827 (2000).
  36. Harper, B. K., Stewart, C. N. Patterns of Green Fluorescent Protein Expression in Transgenic Plants. Plant Molecular Biology Reporter. 18 (2), 141 (2000).
  37. Kaishima, M., Ishii, J., Matsuno, T., Fukuda, N., Kondo, A. Expression of varied GFPs in Saccharomyces cerevisiae: Codon optimization yields stronger than expected expression and fluorescence intensity. Scientific Reports. 6, (2016).
  38. . Glow in the Dark: Fluorescent Proteins as Cell and Tissue-Specific Markers in Plants Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21772029/ (2020)
  39. Mnguni, L. E. The theoretical cognitive process of visualization for science education. SpringerPlus. 3 (1), 1-9 (2014).
  40. Shaner, N. C., Patterson, G. H., Davidson, M. W. Advances in fluorescent protein technology. Journal of Cell Science. 120 (24), 4247-4260 (2007).
  41. Bjorck, L., Kronvall, G. Purification and some properties of streptococcal protein G, a novel IgG-Binding reagent. The Journal of Immunology. 133 (2), (1984).
  42. Andrew, S. M., Titus, J. A. Purification of Immunoglobulin G. Current Protocols in Immunology. 21 (1), 1-12 (2001).
  43. Hober, S., Nord, K., Linhult, M. Protein A chromatography for antibody purification. Journal of Chromatography B: Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 848 (1), 40-47 (2007).
  44. Vola, R., Lombardi, A., Tarditi, L., Björck, L., Mariani, M. Recombinant proteins L and LG: efficient tools for purification of murine immunoglobulin G fragments. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications. 668 (2), 209-218 (1995).
  45. Shinoda, H., Ma, Y., Nakashima, R., Sakurai, K., Matsuda, T., Nagai, T. Acid-Tolerant Monomeric GFP from Olindias formosa. Cell Chemical Biology. 25 (3), 330-338 (2018).
  46. Roberts, T. M., et al. Identification and Characterisation of a pH-stable GFP. Scientific Reports. 6 (1), 1-9 (2016).
  47. Brunelle, J. L., Green, R. Coomassie blue staining. Methods in Enzymology. 541, 161-167 (2014).
  48. Mahmood, T., Western Yang, P. C. Western blot: Technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medical Sciences. 4 (9), 429-434 (2012).
  49. Vessoni Penna, T. C., Ishii, M., Cholewa, O., de Souza, L. C. Thermal characteristics of recombinant green fluorescent protein (GFPuv) extracted from Escherichia coli. Letters in Applied Microbiology. 38 (2), 135-139 (2004).
  50. Kang, S. J., Park, E. A., Lee, D. H., Hong, K. W. Comparison of the stability of eGFP displayed on the Bacillus subtilis spore surface using CotB and C-terminally truncated CotB proteins as an anchoring motif under extreme conditions. Applied Biological Chemistry. 62 (1), 41 (2019).
  51. Kuta, D. D., Tripathi, L. Agrobacterium-induced hypersensitive necrotic reaction in plant cells: a resistance response against Agrobacterium-mediated DNA transfer. African Journal of Biotechnology. 4 (8), 752-757 (2005).
  52. Qiusheng, Z., Bao, J., Likun, L., Xianhua, X. Effects of antioxidants on the plant regeneration and GUS expressive frequency of peanut (Arachis hypogaea) explants by Agrobacterium tumefaciens. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 81 (1), 83-90 (2005).
  53. Diamos, A. G., Rosenthal, S. H., Mason, H. S. H.S. 5′ and 3′ Untranslated Regions Strongly Enhance Performance of Geminiviral Replicons in Nicotiana benthamiana Leaves. Frontiers in Plant Science. 7, 200 (2016).
  54. Huang, Z., Chen, Q., Hjelm, B., Arntzen, C., Mason, H. A DNA replicon system for rapid high-level production of virus-like particles in plants. Biotechnology and Bioengineering. 103 (4), 706-714 (2009).
  55. Diamos, A. G., Mason, H. S. Modifying the Replication of Geminiviral Vectors Reduces Cell Death and Enhances Expression of Biopharmaceutical Proteins in Nicotiana benthamiana Leaves. Frontiers in Plant Science. 9, 1974 (2019).
  56. Gordon-Kamm, W., et al. Stimulation of the cell cycle and maize transformation by disruption of the plant retinoblastoma pathway. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (18), 11975-11980 (2002).
  57. Villemont, E., Dubois, F., Sangwan, R. S., Vasseur, G., Bourgeois, Y., Sangwan-Norreel, B. S. Role of the host cell cycle in the Agrobacterium-mediated genetic transformation of Petunia: Evidence of an S-phase control mechanism for T-DNA transfer. Planta. 201 (2), 160-172 (1997).
  58. Regnard, G. L., Halley-Stott, R. P., Tanzer, F. L., Hitzeroth, I. I., Rybicki, E. P. High level protein expression in plants through the use of a novel autonomously replicating geminivirus shuttle vector. Plant Biotechnology Journal. 8 (1), 38-46 (2010).
  59. Chen, Q., He, J., Phoolcharoen, W., Mason, H. S. Geminiviral vectors based on bean yellow dwarf virus for production of vaccine antigens and monoclonal antibodies in plants. Human Vaccines. 7 (3), 331-338 (2011).
  60. Morton, T. G., Gold, A. J., Sullivan, W. M. Influence of Overwatering and Fertilization on Nitrogen Losses from Home Lawns. Journal of Environmental Quality. 17 (1), 124-130 (1988).
  61. Brown, J. C. Iron Chlorosis in Plants. Advances in Agronomy. 13, 329-369 (1961).
  62. Morton, E. R., Fuqua, C. Laboratory Maintenance of Agrobacterium. Current Protocols in Microbiology. , (2012).
check_url/fr/61774?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Kamzina, A. S., DiPalma, M. P., Hunter, J. G. L., Diamos, A. G., Armer, B., Mor, T. S., Mason, H. S. Production of IgG Fusion Proteins Transiently Expressed in Nicotiana benthamiana. J. Vis. Exp. (167), e61774, doi:10.3791/61774 (2021).

View Video