Summary

Dobbel fargingsmetode for å oppdage pektin i plantesvampinteraksjon

Published: February 04, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en mikroskopisk metode for å oppdage pektin i kaffe-sopp interaksjon.

Abstract

Planteceller bruker forskjellige strukturelle mekanismer, enten konstituerende eller inducible, for å forsvare seg mot soppinfeksjon. Innkapsling er en effektiv induserbar mekanisme for å isolere sopp haustoria fra plantecelleprotoplasten. Omvendt er pektin, en av de polymere komponentene i celleveggen, et mål for flere pektolytiske enzymer i nekrotrofiske interaksjoner. Her presenteres en protokoll for å oppdage pektin og sopphyphae gjennom optisk mikroskopi. Den pektinrike innkapslingen i kaffecellene som er smittet av rustsvampen Hemileia vastatrix og mesophyllcelleveggmodifiseringen indusert av Cercospora coffeicola undersøkes. Lesjonerte bladprøver ble løst med Karnovsky-løsningen, dehydrert og innebygd i glykolmetakrylat i 2-4 dager. Alle trinnene ble etterfulgt av vakuumpumpende for å fjerne luft i intercellulære rom og forbedre innebyggingsprosessen. De innebygde blokkene ble seksjonert i 5-7 μm tykke seksjoner, som ble avsatt på en glasssklie dekket med vann og deretter oppvarmet ved 40 °C i 30 minutter. Deretter ble lysbildene dobbeltfarget med 5% bomullsblå i laktiofenol for å oppdage sopp og 0,05% ruthenium rød i vann for å oppdage pektin (sure grupper av polyuronsyrer av pektin). Sopp haustoria av Hemileia vastatrix ble funnet å være innkapslet av pektin. Ved kaffe cercosporiosis viste mesofyllceller oppløsning av cellevegger, og intercellulære hyphae og konidiofrener ble observert. Metoden som presenteres her er effektiv for å oppdage en pektin-assosiert respons i plante-sopp interaksjonen.

Introduction

Celleveggforsvarsmekanismer i planter er avgjørende for å begrense soppinfeksjon. Studier har rapportert endringer i celleveggtykkelse og sammensetning siden 1800-tallet 1,2. Disse endringene kan induseres av et sopppatogen som stimulerer dannelsen av en papilla, som forhindrer sopp i å komme inn i cellen eller kan brukes til å innkapsle hyphae for å isolere vertscellens protoplast fra sopp haustoria. Produksjonen av en dynamisk celleveggbarriere (dvs. papill og et fullt innkapslet haustorium) er viktig for å fremme plantemotstand3. Histopatologiske studier på sopprelaterte sykdommer har undersøkt forekomsten av disse mekanismene og har beskrevet celleveggpolymerer, cellulose, hemicellulose (arabinoxylans) og callose som motstandsmekanismer for soppangrep 4,5,6,7.

Celleveggen er den første barrieren mot mikroorganismeangrep, noe som svekker plantesvampinteraksjonen. Pectic polysakkarider komponerer celleveggen og står for ca 30% av celleveggsammensetningen i primærceller av eudikosplanter der homogalakuronans er den mest tallrike polymeren (omtrent 60%)8. Golgi skiller ut komplekse pektinforbindelser som utgjør galaktronsyrekjedene, som kan eller ikke kan metyleres 8,9. Siden 2012 har litteraturen påpekt at graden av pektinmetylesterifisering er avgjørende for å bestemme kompatibiliteten under infeksjon ved mikrobielle pektiske enzymer 10,11,12. Dermed er protokoller nødvendig for å verifisere tilstedeværelse og distribusjon av pektiske forbindelser i plante-soppbanesystemer.

Ulike teknikker har blitt brukt til å oppdage innkapsling av papill eller haustoria. Referansemetodene som brukes er transmisjonselektronmikroskopi (TEM) av fast vev og lysmikroskopi av levende og faste vev. Når det gjelder TEM, har flere studier vist den strukturelle rollen til celleveggappposisjoner i soppresistens 13,14,15,16, og at bruk av lectins og antistoffer er en intrikat metode for å finne karbohydratpolymerer 16. Studier viser imidlertid at lysmikroskopi er en viktig tilnærming, og at de histokjemiske og immunhiistokjemiske verktøyene gir en bedre forståelse av sammensetningen av papiller og haustorium innkapsling 6,7.

Patogene sopp viser to hovedtyper av livsstil: biotrofisk og nekrotrofisk. Biotrofiske sopp er avhengige av levende celler for ernæring, mens nekrotrofiske sopp dreper vertscellene, og bor deretter i det døde vevet17. I Latin-Amerika er kaffeblad rust, forårsaket av sopp hemileia vastatrix, en viktig sykdom i kaffeavlinger18,19. Hemileia vastatrix presenterer en biotrofisk oppførsel, og blant de strukturelle endringene som observeres i resistente kaffearter eller kultivarer, er det rapportert en overfølsomhetsrespons, avsetning av callose, cellulose og lignin på celleveggene, samt cellehypertrofi14. Til forfatternes kunnskap rapporterer ikke litteraturen informasjon om betydningen av pektin i kaffe rustmotstand. På den annen side, nekrotrofiske sopp som forårsaker cercosporiosis mål pektin via et sett av enzymer forbundet med cellevegg nedbrytning, som pektinases og polygalacturonase20. Cercosporiosis i kaffe, forårsaket av sopp Cercospora coffeicola er også en stor trussel mot kaffeavlinger21,22. Denne soppen forårsaker nekrotiske lesjoner i både blader og bær. Etter penetrasjon koloniserer C. coffeicola plantevev gjennom intracellulære og intercellulære veier 23,24,25.

Den nåværende protokollen undersøker tilstedeværelsen av soppstrukturer og pektin på cellevegger. Denne protokollen er nyttig for å identifisere planteresponsen forbundet med pektin (farget med rutheniumrød fargestoff, som er spesifikk for sure grupper av polyuronsyrer av pektin), indusert av verten i en biotrofisk interaksjon med sopp. Det bidrar også til å verifisere effekten av nekrotrofiske sopp på nedbrytning av pektiske cellevegger. De nåværende resultatene indikerer at den doble fargingsmetoden er effektiv for å diskriminere strukturer og reproduksjonsfasen av sopp.

Protocol

1. Utarbeidelse av bufferløsning og reagenser Forbered 2 M kaktokylatbuffer ved å tilsette 4,28 g natriumkakroktylat til 100 ml destillert vann og juster pH til 7,25 med 0,2 N HCl. Forbered 100 ml av Karnovsky-fikseringsløsningen ved å blande 10 ml 25% vandig glutaraldehyd, 10 ml 10% vandig formaldehyd, 25 ml 2 M kaktokylatbuffer og 0,5 ml 0,5 M CaCl226. Utgjør volumet til 100 ml med destillert vann.MERK: Oppløsningen kan oppbevares i kjøl…

Representative Results

Den bomullsblå laktiofenolfargingen på den GMA-innebygde delen avslørte tilstedeværelsen av flere soppstrukturer mellom og inne i kaffemesofyllceller i både biotrofiske og nekrotrofiske soppinteraksjoner. I det biotrofiske patosystemet, når det er farget ved hjelp av dobbeltfargingsmetoden, vises Hemileia vastatrix hyphae som inneholder cellevegger og det tette protoplastinnholdet i mørkeblått i både svampete og palisadeparenchyma (figur 4A<stron…

Discussion

Det nåværende arbeidet introduserer en alternativ dobbeltfarging histokjemisk test for å undersøke pektinsammensetningen av cellevegger som innkapsler haustoria i et biotrofisk patosystem. Målet er også å demonstrere effekten av metoden for å oppdage nekrotrofisk sopp og celleveggendringer indusert av den. Her kan pektin av kaffeparenchyma cellevegger innkapsle både nakken og haustoriumet til rustsvampen Hemileia vastatrix. Silva et al. har også beskrevet innkapsling ved cellulose og callose i kaff…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke Dr. Hudson W. P. de Carvalho for støtten til å utvikle dette arbeidet. Forfatterne er også takknemlige til Laboratoriet for elektronmikroskopi ”Prof. Elliot Watanabe Kitajima” for å gi lysmikroskopianlegget. Forfatterne takker Dr. Flávia Rodrigues Alves Patrício for å forsyne plantematerialet med lesjoner.

Materials

Blades DB80 HS Leica 14035838383 Sectioning
Cacodylate buffer EMS # 11652 Fixation
Cotton Blue Lactophenol Metaquímica 70SOLSIG024629 Staining
Formaldehyde EMS #15712 Fixation
Glutaraldehyde EMS #16216 Fixation
Historesin Kit Technovit /EMS #14653 Historesin for embedding
Hot plate Dubesser SSCD25X30-110V Staining
Microscopy Zeiss #490040-0030-000 Image capture
Microtome (Leica RM 2540) Leica 149BIO000C1 14050238005 Sectioning
Plastic molding cup tray EMS 10176-30 Staining
Ruthenium red LABHouse #006004 Staining
Software Axion Vision Zeiss #410130-0909-000 Image capture
Vaccum pump Prismatec 131 TIPO 2 V.C. Fixation

References

  1. deBary, A. Research on the development of some parasitic fungi. Annals of Natural Sciences. Botany and Plant Biology. 20, 5 (1863).
  2. Mangin, L. Research on the Peronospores. Bulletin of the Natural History Society of Autun. 8, 55-108 (1895).
  3. Underwood, W. The plant cell wall: a dynamic barrier against pathogen invasion. Frontiers in Plant Science. 3 (85), 1-6 (2012).
  4. Hückelhoven, R. Cell wall-associated mechanisms of disease resistance and susceptibility. Annual Review of Phytopathology. 45, 101-127 (2007).
  5. Voigt, C. A. Callose-mediated resistance to pathogenic intruders in plant defense-related papillae. Frontiers in Plant Science. 5 (168), 1-6 (2014).
  6. Chowdhury, J., et al. Differential accumulation of callose, arabinoxylan and cellulose in nonpenetrated versus penetrated papillae on leaves of barley infected with Blumeria graminis f. sp. Hordei. New Phytologist. 204 (3), 650-660 (2014).
  7. Marques, J. P. R., et al. Sugarcane cell wall-associated defense responses to infection by Sporisorium scitamineum. Frontiers in Plant Science. 9 (698), 1-14 (2018).
  8. Caffall, K. H., Mohnen, D. The structure, function, and biosynthesis of plant cell wall pectic polysaccharides. Carbohydrate Research. 344, 1879-1900 (2009).
  9. Carpita, N. C., Ralph, J., McCann, M. C. The cell wall. Biochemistry and Molecular Biology of Plants., 2nd Edition. , 45 (2015).
  10. Lionetti, V., Cervone, F., Bellincampi, D. Methyl esterification of pectin plays a role during plant-pathogen interactions and affects plant resistance to diseases. Journal of Plant Physiology. 169 (16), 1623-1630 (2012).
  11. Lionetti, V. Pectoplate: the simultaneous phenotyping of pectin methylesterases, pectinases, and oligogalacturonides in plants during biotic stresses. Frontiers in Plant Science. 6 (331), 1-8 (2015).
  12. Lionetti, V., et al. Three pectin methylesterase inhibitors protect cell wall integrity for Arabidopsis immunity to Botrytis. Plant Physiology. 173 (3), 1844-1863 (2017).
  13. Heath, M. C. Haustorium sheath formation in cowpea leaves immune to rust infection. Phytopathology. 61, 383-388 (1971).
  14. Silva, M. C., et al. Coffee resistance to the main diseases: leaf rust and coffee berry disease. Brazilian Journal of Plant Physiology. 18 (1), 119-147 (2006).
  15. An, P., Li, X., Zheng, Y., Eneji, A. E., Inanaga, S. Calcium effects on root cell wall composition and ion contents in two soybean cultivars under salinity stress. Canadian Journal of Plant Science. 94 (4), 733-740 (2014).
  16. Marques, J. P. R., et al. Sugarcane smut: shedding light on the development of the whip-shaped sorus. Annals of Botany. 119 (5), 815-827 (2017).
  17. Delaye, L., García-Guzmán, G., Heil, M. Endophytes versus biotrophic and necrotrophic pathogens-are fungal lifestyles evolutionarily stable traits. Fungal Diversity. 60 (1), 125-135 (2013).
  18. Avelino, J., et al. The coffee rust crises in Colombia and Central America (2008-2013): impacts, plausible causes and proposed solutions. Food Security. 7, 303-321 (2015).
  19. Zambolim, L. Current status and management of coffee leaf rust in Brazil. Tropical Plant Pathology. 41, 1-8 (2016).
  20. Swiderska-Burek, U., et al. Phytopathogenic Cercosporoidfungi-from taxonomy to modern biochemistry and molecular biology. International Journal of Molecular Sciences. 21 (22), 8555 (2020).
  21. Andrade, C. C. L., et al. Infection process and defense response of two distinct symptoms of Cercospora leaf spot in coffee leaves. Phytoparasitica. 49 (7), 727-737 (2021).
  22. Zambolim, L. Coffee tree diseases. Handbook of Phytopathology: Diseases of cultivated plants. 5th ed. , 810 (2016).
  23. Castaño, A. J. J. Coffee rust. Informative report Cenicafé. 82, 313-327 (1956).
  24. Echandi, E. Coffee rust, caused by the fungus Cercospora coffeicola. Turrialba. 9 (2), 54-67 (1959).
  25. Souza, A. G. C., Rodrigues, F. A., Maffia, L. A., Mizubuti, E. S. G. Infection process of Cercospora coffeicola on coffee leaf. Journal of Phytopathology. 159 (1), 6-11 (2011).
  26. Karnovsky, M. J. A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolality for use in electron microscopy. Journal of Cell Biology. 27, 137-138 (1965).
  27. Hoagland, D. R., Arnon, D. I. The water-culture method for growing plants without soil. College of Agriculture, Agricultural Experiment Station. , 347 (1950).
  28. Eskes, A. B. Resistance. Coffee rust: epidemiology, resistance and management. 1, 171 (1989).
  29. Silva, M. C., Nicole, M., Rijo, L., Geiger, J. P., Rodrigues, C. G. Cytochemical aspects of the plant-rust fungus interface during the compatible interaction Coffea arabica (cv. Caturra)-Hemileia vastatrix (race III). International Journal of Plant Sciences. 160 (1), 79-91 (1999).
  30. Alves, R. F., Marques, J. P. R., Apezzato-da-Glória, B., Spósito, M. B. Process of infection and colonization of Pseudocercospora kaki in persimmon leaves. Journal of Phytopathology. 169 (3), 168-175 (2020).
  31. Hayat, M. A. . Principles and Techniques of Electron Microscopy: Biological Applications, Vol. 1. , 564 (1981).
  32. Paiva, E. A. S., Pinho, S. Z., Oliveira, D. M. T., Chiarini-Garcia, H., Melo, R. C. N. Large plant samples: how to process for GMA embedding. Light microscopy: methods and protocols. 689, 37-49 (2011).
  33. Marques, J. P. R., Soares, M. K. M., Appezzato-da-Glória, B. New staining technique for fungal-infected plant tissues. Turkish Journal of Botany. 37 (4), 784-787 (2013).
  34. Schuller, A., Ludwig-Müller, J. Histological methods to detect the clubroot pathogen Plasmodiophora brassicae during its complex life cycle. Plant Pathology. 65 (8), 1223-1237 (2016).
  35. Braga, Z. V., Santos, R. F., Amorim, L., Appezzato-da-Glória, B. Histopathological evidence of concomitant sexual and asexual reproduction of Elsinoë ampelina in grapevine under subtropical climate. Physiological and Molecular Plant Pathology. 111, 101517 (2020).
  36. Marques, J. P. R., Soares, M. K. M., Piracicaba, F. E. A. L. Q. . Manual of Techniques Applied to Plant Histopathology. , 140 (2021).
  37. Navarro, B. L., Marques, J. P. R., Appezzato-da-Glória, B., Spósito, M. B. Histopathology of Phakopsora euvitis on Vitis vinifera. European Journal of Plant Pathology. 154, 1185-1193 (2019).
  38. Chesters, C. G. C. Three methods of using cotton blue as a mycological stain. Annals of Botany. 48 (3), 820-822 (1934).
  39. Macedo, N. A. Manual of Techniques in Plant Histology. Feira de Santana: State University of Feira de Santana. , 68 (1997).
  40. Lecker, A. Preparation of lactophenol cotton blue slide mounts. Community Eye Health Journal. 12 (30), 24 (1999).
  41. Whitakaer, F. C. S., Denison, F. C. S. Lactic acid in wool dyeing. Journal of the Society of Dyers and Colourists. 98, 103 (1895).
  42. Chamberlain, C. J. . Methods in Plant Histology. , 349 (1932).
  43. Sterling, C. Crystal-structure of ruthenium red and stereochemistry of its pectin stain. American Journal of Botany. 57, 172-175 (1970).
  44. Luft, J. H. Ruthenium red and violet. 1. Chemistry, purification, methods of use for electron microscopy and mechanism of action. The Anatomical Record. 171 (3), 347-368 (1971).
  45. Buckeridge, M. S., Cavalari, A. A., Silva, G. B. D. A., Kerbauy, G. B. Cell Wall. Plant Physiology. , 165-181 (2013).
check_url/fr/63432?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Marques, J. P. R., Nuevo, L. G. Double-Staining Method to Detect Pectin in Plant-Fungus Interaction. J. Vis. Exp. (180), e63432, doi:10.3791/63432 (2022).

View Video