Summary

성숙한 기도 오가노이드를 생성하기 위해 인간 폐 오가노이드 및 근위 분화 확립

Published: March 23, 2022
doi:

Summary

이 프로토콜은 원발성 폐 조직으로부터 인간 폐 오가노이드를 유도하고, 폐 오가노이드를 확장시키고, 근위 분화를 유도하여 인간 기도 상피를 충실하게 표현 복사하는 3D 및 2D 기도 오가노이드를 생성하는 방법을 제시한다.

Abstract

인간 호흡 상피의 강력한 시험관 내 모델의 부족은 호흡기의 생물학 및 병리학에 대한 이해를 방해합니다. 우리는 폐 조직의 성체 줄기 세포로부터 인간 폐 오가노이드를 유도하고 성숙한 기도 오가노이드를 생성하기 위해 근위 분화를 유도하는 정의된 프로토콜을 기술한다. 폐 오가노이드는 높은 안정성으로 1 년 이상 연속적으로 확장되는 반면, 분화 된기도 오가노이드는 형태 학적으로나 기능적으로 인간의 기도 상피를 거의 생리적 수준으로 시뮬레이션하는 데 사용됩니다. 따라서, 우리는 인간기도 상피의 강력한 오가노이드 모델을 확립합니다. 폐 오가노이드와 분화 된기도 오가노이드의 장기간 확장은 안정적이고 재생 가능한 공급원을 생성하여 과학자들이 배양 접시에서 인간기도 상피 세포를 재구성하고 확장 할 수있게합니다. 인간 폐 오가노이드 시스템은 바이러스-숙주 상호작용 연구, 약물 테스트 및 질병 모델링을 포함한 다양한 응용을 위한 독특하고 생리활성 시험관내 모델을 제공한다.

Introduction

오가노이드는 장기 발달의 시험관 내 모델링과 생물학 및 질병 연구를위한 강력하고 보편적 인 도구가되었습니다. 성장 인자 정의 배양 배지에서 배양하는 경우, 다양한 장기로부터의 성체 줄기 세포 (ASC)는 3차원 (3D)으로 확장될 수 있고 오가노이드라고 불리는 다중 세포 유형으로 구성된 장기 유사 세포 클러스터로 자기조립될 수 있다. 클레버즈의 실험실은 2009 년 1,2 년에 최초의 ASC 유래 오가노이드 인 인간 장내 오가노이드의 유도를보고했다. 그 후, ASC 유래 오가노이드는 전립선 3,4, 간 5,6, 7,8,9, 췌장 10, 유선 11 및 12,13을 포함한 다양한 인간 장기 및 조직에 대해 확립되었다. . 이들 ASC 유래 오가노이드는 천연 장기의 중요한 세포, 구조적, 기능적 특성을 유지하고, 장기 확장 배양물에서 유전적 및 표현형 안정성을 유지하였다(14,15).

오가노이드는 또한 배아 줄기 (ES) 세포 및 유도 만능 줄기 (iPS) 세포 (16)를 포함하는 만능 줄기 세포 (PSC)로부터 유래될 수 있다. PSC 유래 오가노이드는 그들의 설립을 위해 장기 발달의 메커니즘을 이용하는 반면, ASC는 생리적 인 조직 자체 재생 또는 조직 복구 중에 줄기 세포 틈새를 모방하는 조건을 재건함으로써 오가노이드를 형성하도록 강요 될 수 있습니다. PSC 유래 오가노이드는 ASC 유래 오가노이드의 비교 가능한 성숙 수준에 도달 할 수는 없지만 발달 및 유기 발생을 탐구하는 데 유리한 모델입니다. PSC 유래 오가노이드의 태아와 유사한 성숙 상태 및 이러한 오가노이드를 확립하기위한 복잡성은 성숙한 조직에서 생물학 및 병리학을 연구하기위한 광범위한 적용을 실질적으로 방해합니다.

코에서 말단 세기관지까지 인간의 호흡기는 기도 상피(pseudostratified ciliated epithelium)라고도 불리우며, 이는 네 가지 주요 세포 유형, 즉 섬모 세포, 잔 세포, 기저 세포 및 클럽 세포로 구성됩니다. 우리는 Clevers의 실험실12,13과 협력하여 인간 폐 조직에서 ASC 유래 인간 폐 오가노이드를 설립했습니다. 이들 폐 오가노이드는 일 년 이상 동안 확장 배지에서 연속적으로 확장되고; 정확한 지속 기간은 다른 기증자로부터 얻은 다른 오가노이드 라인에 따라 다릅니다. 그러나, 천연 기도 상피와 비교하여, 이러한 장기 팽창성 폐 오가노이드는 인간 기도의 주요 세포 집단인 섬모 세포가 이들 폐 오가노이드에서 과소 대표되기 때문에 충분히 성숙하지 않다. 따라서, 우리는 근위 분화 프로토콜을 개발하고기도 상피를 거의 생리적 수준으로 형태학적으로 그리고 기능적으로 표현 복사하는 3D 및 2D 기도 오가노이드를 생성했습니다.

여기서 우리는 원발성 폐 조직으로부터 인간 폐 오가노이드를 유도하고, 폐 오가노이드를 확장시키고, 3D 및 2D 기도 오가노이드를 생성하기 위해 근위 분화를 유도하는 비디오 프로토콜을 제공한다.

Protocol

본원에 기술된 인간 조직을 이용한 모든 실험은 홍콩 대학/병원 당국 홍콩 서부 클러스터(UW13-364 및 UW21-695)의 기관 검토 위원회에 의해 승인되었다. 조직 수집 전에 환자로부터 정보에 입각한 동의를 얻었다. 1. 인간 폐 오가노이드의 유도 실험자료의 제조 고급 DMEM/F12 배지에 2mM 글루타민, 10mM HEPES, 100U/mL의 페니실린 및 100μg/mL의 스트렙토마이신을 보?…

Representative Results

이 프로토콜은 높은 성공률을 가진 인간 폐 오가노이드의 유도를 가능하게 한다. 신선한 인간 폐 조직은 작은 조각으로 다진 다음 콜라게나제로 분해됩니다. 생성된 단일 세포는 기저 매트릭스에 포매되고 상피 줄기 세포의 증식을 위한 틈새 인자의 칵테일로 보충된 폐 오가노이드 확장 배지에서 배양된다(단계 1.1.2). 도 1 은 환원 성장인자 기저막 매트릭스 타입 2에 포매된 …

Discussion

인간 기도는 의사 층화 된 섬모 상피라고도 알려진 기도 상피와 줄 지어 있습니다. 상부 기도 상피의 주요 세포 유형은 기도에서 점액과 흡입된 입자를 배출하기 위해 정수리 섬모의 조율된 이동을 가능하게 하는 섬모 세포, 점액을 생산하고 분비하는 잔 세포, 기저막을 늘어서서 재생에 연루된 기저 세포이다. 세기관지와 같은 작은 기도에서, 입방체 기도 상피는 분비 클럽 세포를 포함하고 상부 …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 공초점 이미징 및 유세포 측정에 도움을 주신 PanorOmic Sciences and Electron Microscope Unit, Li Ka Shing Faculty of Medicine, Hong Kong에 감사드립니다. 이 작업은 식품 보건국의 건강 및 의료 연구 기금 (HMRF, 17161272 및 19180392)의 기금으로 부분적으로 지원되었습니다. 연구 보조금위원회의 일반 연구 기금 (GRF, 17105420); Health@InnoHK, 혁신 기술위원회, 홍콩 특별 행정 구역 정부.

Materials

Reagents for lung organoid culture
Advanced DMEM/F12 Invitrogen 12634010
A8301 Tocris 2939 500nM
B27 supplement Invitrogen 17504-044 1x
Cultrex Reduced Growth Factor Basement Membrane Matrix, Type 2 (BME 2) Trevigen 3533-010-0 70-80%
FGF-10 Peprotech 100-26 20 ng/mL
FGF-7 Peprotech 100-19 5 ng/mL
GlutaMAX (glutamine) Invitrogen 35050061 1x
HEPES 1M Invitrogen 15630-056 10 mM
Heregulin β-1 Peprotech 100-03 5 nM
N-Acetylcysteine Sigma-Aldrich A9165 1.25 mM
Nicotinamide Sigma-Aldrich N0636 10 mM
Noggin (conditional medium) home made 10x
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Invitrogen 15140-122 1x
Primocin Invivogen ant-pm-1 100 µg/mL
Rspondin1 (conditional medium) home made 10x
SB202190 Sigma-Aldrich S7067 1 µM
Y-27632 Tocris 1254 5 µM
Proximal differentiation medium
DAPT Tocris 2634 10 µM
Heparin Solution StemCell Technology 7980 4 µg/mL
Hydrocortisone Stock Solution StemCell Technology 7925 1 µM
PneumaCult-ALI 10X Supplement air liquid interface supplement
PneumaCult-ALI Basal Medium StemCell Technology 05001 air liquid interface basal medium
PneumaCult-ALI Maintenance Supplement air liquid interface maintenance supplement
Y-27632 Tocris 1254 10 µM
Equipment
Biological safety cabinet Baker 1-800-992-2537
Carl Zeiss LSM 780 or 800 Zeiss confocal microscope
CO2 Incubator Thermo Fisher Scientific 42093483
Stereo-microscope Olympus Corporation CKX31SF
Centrifuge Eppendorf 5418BG040397
Serological pipettor Eppendorf
Micropipette Eppendorf
ZEN black or ZEN blue software Zeiss analysis software
Consumables
12mm Trans-well StemCell Technology #38023
12-well cell culture plate Cellstar 665970
15- and 50 ml conical tubes Thermo Fisher Scientific L6BF5Z8118
24-well cell culture plate Cellstar 662160
6.5mm Trans-well StemCell Technology #38024
Medical Syringe Filter Unit, 0.22 µm Sigma-Aldrich SLGPR33RB
Microfuge tubes Eppendorf
Micropipette tips Thermo Fisher Scientific TFLR140-200-Q21190531
Pasteur pipette glass Thermo Fisher Scientific 22-378893
Serological pipettes(5ml, 10ml, 25ml) Thermo Fisher Scientific BA08003, 08004, 08005
Antibodies
Goat Anti-Mouse Alexa Fluor 594 Invitrogen A11005
Goat Anti-Mouse, Alexa Fluor 488 Invitrogen A11001
Goat Anti-Rabbit Alexa Fluor 488 Invitrogen A11034
Goat Anti-Rabbit Alexa Fluor 594 Invitrogen A11037
Goat Anti-Rat Alexa Fluor 594 Invitrogen A11007
Mouse Anti-Cytokeratin 5 Abcam ab128190
Mouse Anti-FOX J1 Invitrogen 14-9965-82
Mouse Anti-Mucin 5AC Abcam ab3649
Mouse Anti-β-tubulin 4 Sigma T7941
Rabbit Anti-p63 Abcam ab124762
Rat Anti-Uteroglobin/CC-10 R&D Systems MAB4218-SP
Other reagent
TrypLE Select Enzyme (10X) Thermo Fisher Scientific A1217701 dissociation enzyme

References

  1. Sato, T., et al. Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett’s epithelium. Gastroenterology. 141 (5), 1762-1772 (2011).
  2. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  3. Karthaus, W. R., et al. Identification of multipotent luminal progenitor cells in human prostate organoid cultures. Cell. 159 (1), 163-175 (2014).
  4. Chua, C. W., et al. Single luminal epithelial progenitors can generate prostate organoids in culture. Nature Cell Biology. 16 (10), 951-954 (2014).
  5. Hu, H., et al. Long-term expansion of functional mouse and human hepatocytes as 3D organoids. Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).
  6. Huch, M., et al. In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration. Nature. 494 (7436), 247-250 (2013).
  7. Schlaermann, P., et al. A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut. 65 (2), 202-213 (2016).
  8. Bartfeld, S., et al. In vitro expansion of human gastric epithelial stem cells and their responses to bacterial infection. Gastroenterology. 148 (1), 126-136 (2015).
  9. Wroblewski, L. E., et al. Helicobacter pylori targets cancer-associated apical-junctional constituents in gastroids and gastric epithelial cells. Gut. 64 (5), 720-730 (2015).
  10. Huch, M., et al. Unlimited in vitro expansion of adult bi-potent pancreas progenitors through the Lgr5/R-spondin axis. The EMBO Journal. 32 (20), 2708-2721 (2013).
  11. Sachs, N., et al. A living biobank of breast cancer organoids captures disease heterogeneity. Cell. 172 (1-2), 373-386 (2018).
  12. Sachs, N., et al. Long-term expanding human airway organoids for disease modeling. The EMBO Journal. 38 (4), 100300 (2019).
  13. Zhou, J., et al. Differentiated human airway organoids to assess infectivity of emerging influenza virus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (26), 6822-6827 (2018).
  14. Clevers, H. Modeling development and disease with organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  15. Fatehullah, A., Tan, S. H., Barker, N. Organoids as an in vitro model of human development and disease. Nature Cell Biology. 18 (3), 246-254 (2016).
  16. Lancaster, M. A., Huch, M. Disease modelling in human organoids. Disease Model Mechanisms. 12 (7), (2019).
  17. . Millicell ERS-2 User Guide Available from: https://www.merckmillipore.com/HK/en/life-science-research/cell-culture-systems/cell-analysis/millicell-ers-2-voltohmmeter/FiSb.qB.LDgAAAFBdMhb3.r5 (2021)
  18. Dye, B. R., et al. In vitro generation of human pluripotent stem cell derived lung organoids. eLife. 4, 05098 (2015).
  19. Dye, B. R., Miller, A. J., Spence, J. R. How to grow a lung: Applying principles of developmental biology to generate lung lineages from human pluripotent stem cells. Current Pathobiology Reports. 4, 47-57 (2016).
  20. Glinka, A., et al. LGR4 and LGR5 are R-spondin receptors mediating Wnt/beta-catenin and Wnt/PCP signalling. EMBO Reports. 12 (10), 1055-1061 (2011).
  21. Groppe, J., et al. Structural basis of BMP signalling inhibition by the cystine knot protein Noggin. Nature. 420 (6916), 636-642 (2002).
  22. Tadokoro, T., Gao, X., Hong, C. C., Hotten, D., Hogan, B. L. BMP signaling and cellular dynamics during regeneration of airway epithelium from basal progenitors. Development. 143 (5), 764-773 (2016).
  23. Mou, H., et al. Dual SMAD signaling inhibition enables long-term expansion of diverse epithelial basal cells. Cell Stem Cell. 19 (2), 217-231 (2016).
  24. Balasooriya, G. I., Goschorska, M., Piddini, E., Rawlins, E. L. FGFR2 is required for airway basal cell self-renewal and terminal differentiation. Development. 144 (9), 1600-1606 (2017).
  25. Bar-Ephraim, Y. E., Kretzschmar, K., Clevers, H. Organoids in immunological research. Nature Reviews. Immunology. 20 (5), 279-293 (2019).
  26. Drost, J., Clevers, H. Translational applications of adult stem cell-derived organoids. Development. 144 (6), 968-975 (2017).
  27. Dutta, D., Heo, I., Clevers, H. Disease modeling in stem cell-derived 3D organoid systems. Trends in Molecular Medicine. 23 (5), 393-410 (2017).
  28. Zhou, J., et al. Infection of bat and human intestinal organoids by SARS-CoV-2. Nature Medicine. 26 (7), 1077-1083 (2020).
  29. Salahudeen, A. A., et al. Progenitor identification and SARS-CoV-2 infection in human distal lung organoids. Nature. 588 (7839), 670-675 (2020).
  30. Han, Y., et al. Identification of SARS-CoV-2 inhibitors using lung and colonic organoids. Nature. 589 (7841), 270-275 (2020).
  31. Mykytyn, A. Z., et al. SARS-CoV-2 entry into human airway organoids is serine protease-mediated and facilitated by the multibasic cleavage site. eLife. 10, 64508 (2021).
  32. Jacob, F., et al. Human pluripotent stem cell-derived neural cells and brain organoids reveal SARS-CoV-2 neurotropism predominates in choroid plexus epithelium. Cell Stem Cell. 27 (6), 937-950 (2020).
  33. Lamers, M. M., et al. SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science. 369 (6499), 50-54 (2020).
  34. Mallapaty, S. The mini lungs and other organoids helping to beat COVID. Nature. 593 (7860), 492-494 (2021).
check_url/fr/63684?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Li, C., Chiu, M. C., Yu, Y., Liu, X., Xiao, D., Huang, J., Wan, Z., Zhou, J. Establishing Human Lung Organoids and Proximal Differentiation to Generate Mature Airway Organoids. J. Vis. Exp. (181), e63684, doi:10.3791/63684 (2022).

View Video