Summary

שילוב של מיקרוסקופ קונפוקלי רפלקטנטי עם טומוגרפיה קוהרנטית אופטית לאבחון לא פולשני של סרטן העור באמצעות רכישת תמונה

Published: August 18, 2022
doi:

Summary

במאמר זה אנו מתארים פרוטוקולים לרכישת תמונות באיכות טובה באמצעות מכשירי הדמיה חדשניים ולא פולשניים של מיקרוסקופ קונפוקלי מחזיר אור (RCM) וטומוגרפיה משולבת של RCM וקוהרנטיות אופטית (OCT). אנו גם מכירים לקלינאים את היישומים הקליניים שלהם כדי שיוכלו לשלב את הטכניקות בזרימות עבודה קליניות רגילות כדי לשפר את הטיפול בחולים.

Abstract

סרטן העור הוא אחד מסוגי הסרטן הנפוצים ביותר בעולם. האבחון מסתמך על בדיקה חזותית ודרמוסקופיה ואחריה ביופסיה לאישור היסטופתולוגי. בעוד שהרגישות בדרמוסקופיה גבוהה, הספציפיות הנמוכה גורמת לכך ש-70%-80% מהביופסיות מאובחנות כנגעים שפירים בהיסטופתולוגיה (תוצאות חיוביות שגויות בדרמוסקופיה).

הדמיית מיקרוסקופ קונפוקלי מחזיר (RCM) וטומוגרפיה קוהרנטית אופטית (OCT) יכולה להנחות באופן לא פולשני את האבחנה של סרטן העור. RCM ממחיש מורפולוגיה תאית בשכבות en-face . הוא הכפיל את הספציפיות האבחנתית של מלנומה וסרטן עור קרטינוציטי פיגמנטי על פני דרמוסקופיה, והפחית בחצי את מספר הביופסיות של נגעים שפירים. RCM רכשה קודי חיוב בארה”ב וכעת היא משולבת במרפאות.

עם זאת, מגבלות כגון עומק רדוד (~ 200 מיקרומטר) של הדמיה, ניגודיות ירודה עבור נגעי עור שאינם פיגמנטים, והדמיה בשכבות en-face לגרום לספציפיות נמוכה יחסית לזיהוי של קרצינומה של תאי בסיס ללא פיגמנטציה (BCC) – BCCs שטחיים רציפים עם שכבת תאי הבסיס ו- BCC חדירה עמוקה יותר. לעומת זאת, OCT חסר רזולוציה תאית אך מצלם רקמות במישורים אנכיים עד לעומק של ~1 מ”מ, מה שמאפשר זיהוי של תת-סוגים שטחיים ועמוקים יותר של BCC. לפיכך, שתי הטכניקות משלימות במהותן.

התקן RCM-OCT משולב “רב-מודאלי” מצלם בו-זמנית נגעים בעור הן במצב הפנים והן במצב אנכי. זה שימושי לאבחון וניהול של BCCs (טיפול לא ניתוחי עבור BCCs שטחי לעומת טיפול כירורגי עבור נגעים עמוקים יותר). שיפור ניכר בספציפיות מתקבל עבור זיהוי BCC קטנים ולא פיגמנטיים על פני RCM בלבד. מכשירי RCM ו-RCM-OCT מביאים לשינוי פרדיגמה משמעותי באבחון וניהול של סרטן העור; עם זאת, השימוש בהם מוגבל כיום למרכזים אקדמיים שלישוניים וכמה מרפאות פרטיות. מאמר זה מכיר לקלינאים את המכשירים הללו ואת היישומים שלהם, ומתייחס למחסומים תרגומיים בתהליך העבודה הקליני השגרתי.

Introduction

באופן מסורתי, האבחנה של סרטן העור מסתמכת על בדיקה חזותית של הנגע ואחריה מבט מקרוב על נגעים חשודים באמצעות עדשה מגדלת הנקראת דרמטוסקופ. דרמטוסקופ מספק מידע תת קרקעי המגביר את הרגישות והספציפיות על פני זו של בדיקה חזותית לאבחון סרטן העור 1,2. עם זאת, דרמוסקופיה חסרה פרטים תאיים, מה שמוביל לעתים קרובות לביופסיה לאישור היסטופתולוגי. הספציפיות הנמוכה והמשתנה (67% עד 97%) של דרמוסקופיה3 גורמת לתוצאות חיוביות שגויות וביופסיות שמתבררות כמראות נגעים שפירים בפתולוגיה. ביופסיה היא לא רק הליך פולשני הגורם לדימום וכאב4 אלא גם מאוד לא רצויה באזורים רגישים מבחינה קוסמטית כמו הפנים עקב הצטלקות.

כדי לשפר את הטיפול בחולים על ידי התגברות על מגבלות קיימות, נבדקים מכשירי הדמיה רבים שאינם פולשניים in vivo 5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18 . מכשירי RCM ו-OCT הם שני המכשירים האופטיים הלא פולשניים העיקריים המשמשים לאבחון נגעי עור, במיוחד סרטן העור. RCM רכשה קודי חיוב של טרמינולוגיה פרוצדורלית נוכחית (CPT) בארה”ב והיא נמצאת בשימוש הולך וגובר במרכזי טיפול שלישוני אקדמיים ובכמה מרפאות פרטיות 7,8,19. RCM מצלם נגעים ברזולוציה כמעט היסטולוגית (סלולרית). עם זאת, התמונות נמצאות במישור הפנים (הדמיה של שכבת עור אחת בכל פעם), ועומק ההדמיה מוגבל ל~200 מיקרומטר, מספיק כדי להגיע לדרמיס השטחי (פפילרי) בלבד. הדמיית RCM מסתמכת על ניגודיות ההחזרה ממבנים שונים בעור. מלנין מקנה את הניגודיות הגבוהה ביותר, מה שהופך נגעים פיגמנטיים בהירים וקלים יותר לאבחון. לפיכך, RCM בשילוב עם דרמוסקופיה שיפר משמעותית את האבחנה (רגישות של 90% וספציפיות של 82%) על פני דרמוסקופיה של נגעים פיגמנטיים, כולל מלנומה20. עם זאת, בשל היעדר ניגודיות מלנין בנגעים ורודים, במיוחד עבור BCC, RCM יש ספציפיות נמוכה יותר (37.5%-75.5%)21. מכשיר OCT קונבנציונלי, מכשיר לא פולשני נפוץ נוסף, מצלם נגעים בעומק של עד 1 מ”מ בתוך העור וממחיש אותם במישור אנכי (בדומה להיסטופתולוגיה)9. עם זאת, OCT חסר רזולוציה סלולרית. OCT משמש בעיקר לאבחון נגעים קרטינוציטים, במיוחד BCC, אך עדיין יש לו ספציפיות נמוכה יותר9.

לפיכך, כדי להתגבר על המגבלות הקיימות של התקנים אלה, נבנה התקן RCM-OCT רב-מודאלי22. התקן זה משלב RCM ו-OCT בתוך גשושית הדמיה ידנית אחת, ומאפשר רכישה סימולטנית של תמונות RCM עם רישום משותף ותמונות OCT אנכיות של הנגע. OCT מספק פירוט אדריכלי של הנגעים ויכול לצלם תמונה עמוקה יותר (עד עומק של ~1 מ”מ) בתוך העור. יש לו גם שדה ראייה גדול יותר (FOV) של ~ 2 מ”מ22 בהשוואה למכשיר RCM כף יד (~ 0.75 מ”מ x 0.75 מ”מ). תמונות RCM משמשות כדי לספק פרטים סלולריים של הנגע שזוהה ב- OCT. אב טיפוס זה עדיין אינו מסחרי והוא משמש כמכשיר ניסיוני במרפאות23,24,25.

למרות הצלחתם בשיפור האבחון והניהול של סרטן העור (כפי שנתמך בספרות), מכשירים אלה עדיין אינם נמצאים בשימוש נרחב במרפאות. זה נובע בעיקר ממיעוט המומחים שיכולים לקרוא את התמונות הללו, אך גם ממחסור בטכנאים מיומנים שיכולים לרכוש תמונות באיכות אבחון ביעילות (במסגרת זמן קלינית) ליד המיטה8. בכתב יד זה, המטרה היא להקל על המודעות ובסופו של דבר על האימוץ של מכשירים אלה במרפאות. כדי להשיג מטרה זו, אנו מכירים רופאי עור, רופאי עור ומנתחי מוס עם תמונות של סרטן עור ועור רגיל שנרכש באמצעות מכשירי RCM ו- RCM-OCT. כמו כן נפרט את התועלת של כל מכשיר לאבחון סרטן העור. והכי חשוב, המוקד של כתב יד זה הוא לספק הדרכה שלב אחר שלב לרכישת תמונות באמצעות מכשירים אלה, אשר יבטיחו תמונות באיכות טובה לשימוש קליני.

Protocol

כל הפרוטוקולים המתוארים להלן עוקבים אחר הנחיות ועדת האתיקה המוסדית למחקר אנושי. 1. התקן RCM ופרוטוקול הדמיה הערה: קיימים שני התקני RCM זמינים באופן מסחרי in vivo : RCM (WP-RCM) בבדיקה רחבה ו-RCM (HH-RCM) בבדיקה ידנית. WP-RCM מגיע משולב עם דרמטוסקופ דיגיטלי. שני מכשירי?…

Representative Results

מיקרוסקופ קונפוקלי רפלקטנטי (RCM)פירוש תמונה ב-RCM:תמונות RCM מפורשות באופן המחקה הערכה של שקופיות היסטופתולוגיות. פסיפסים מוערכים תחילה כדי לקבל את הפרט האדריכלי הכולל ולזהות אזורים מדאיגים, בדומה להערכת קטעי היסטולוגיה על הגדלה סורקת (2x). לאחר מכן מתבצעת התקרבות לפסיפ…

Discussion

במאמר זה, תיארנו פרוטוקולים לרכישת תמונות באמצעות התקני in vivo RCM ו- RCM-OCT. נכון לעכשיו, קיימים שני התקני RCM הזמינים באופן מסחרי: התקן RCM (WP-RCM) רחב בדיקה או מותקן על זרוע והתקן RCM (HH-RCM) כף יד. חשוב להבין מתי להשתמש במכשירים אלה במסגרות קליניות. סוג ומיקום הסרטן הם הגורמים העיקריים הקובעים את בח?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

תודה מיוחדת ניתנת לקוואמי קטוסוגבו ואמילי קוואן על היותם מתנדבים להדמיה. מחקר זה ממומן על ידי מענק מהמכון הלאומי לסרטן / המכונים הלאומיים לבריאות (P30-CA008748) שניתן למרכז הסרטן ממוריאל סלואן קטרינג.

Materials

Crystal Plus 500FG mineral oil STE Oil Company, Inc. A food grade, high viscous mineral oil used with our various devices during in vivo imaging.
RCM-OCT Physical Science Inc. A “multi-modal” combined RCM-OCT device simultaneously images skin lesions in both horizonal and vertical modes.
Vivascope 1500 Caliber I.D. A wide-probe RCM (WP-RCM) device that attaches to the skin to campture in vivo devices.
Vivascope 3000 Caliber I.D. A hand-held RCM (HH-RCM) device that is moved across the skin to capture in vivo images.

References

  1. Argenziano, G., et al. Accuracy in melanoma detection: A 10-year multicenter survey. Journal of the American Academy of Dermatology. 67 (1), 54-59 (2012).
  2. Vestergaard, M. E., Macaskill, P., Holt, P. E., Menzies, S. W. Dermoscopy compared with naked eye examination for the diagnosis of primary melanoma: A meta-analysis of studies performed in a clinical setting. British Journal of Dermatology. 159 (3), 669-676 (2008).
  3. Reiter, O., et al. The diagnostic accuracy of dermoscopy for basal cell carcinoma: A systematic review and meta-analysis. Journal of the American Academy of Dermatology. 80 (5), 1380-1388 (2019).
  4. Abhishek, K., Khunger, N. Complications of skin biopsy. Journal of Cutaneous and Aesthetic Surgery. 8 (4), 239-241 (2015).
  5. Navarrete-Dechent, C., Fischer, C., Tkaczyk, E., Jain, M., Rao, B. K. Chapter 5: Principles of non-invasive diagnostic techniques in dermatology. Moschella and Hurley’s Dermatology. 1, (2019).
  6. Wassef, C., Rao, B. K. Uses of non-invasive imaging in the diagnosis of skin cancer: An overview of the currently available modalities. International Journal of Dermatology. 52 (12), 1481-1489 (2013).
  7. Rajadhyaksha, M., Marghoob, A., Rossi, A., Halpern, A. C., Nehal, K. S. Reflectance confocal microscopy of skin in vivo: From bench to bedside. Lasers in Surgery and Medicine. 49 (1), 7-19 (2017).
  8. Jain, M., Pulijal, S. V., Rajadhyaksha, M., Halpern, A. C., Gonzalez, S. Evaluation of bedside diagnostic accuracy, learning curve, and challenges for a novice reflectance confocal microscopy reader for skin cancer detection in vivo. JAMA Dermatology. 154 (8), 962-965 (2018).
  9. Sattler, E., Kästle, R., Welzel, J. Optical coherence tomography in dermatology. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 061224 (2013).
  10. Wang, Y. -. J., Huang, Y. -. K., Wang, J. -. Y., Wu, Y. -. H. In vivo characterization of large cell acanthoma by cellular resolution optical coherent tomography. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 26, 199-202 (2019).
  11. Balu, M., et al. Distinguishing between benign and malignant melanocytic nevi by in vivo multiphoton microscopy. Recherche en cancérologie. 74 (10), 2688-2697 (2014).
  12. Balu, M., et al. In vivo multiphoton microscopy of basal cell carcinoma. JAMA Dermatology. 151 (10), 1068-1074 (2015).
  13. Lentsch, G., et al. Non-invasive optical biopsy by multiphoton microscopy identifies the live morphology of common melanocytic nevi. Pigment Cell and Melanoma Research. 33 (6), 869-877 (2020).
  14. Dimitrow, E., et al. Sensitivity and specificity of multiphoton laser tomography for in vivo and ex vivo diagnosis of malignant melanoma. Journal of Investigative Dermatology. 129 (7), 1752-1758 (2009).
  15. Ruini, C., et al. Line-field optical coherence tomography: In vivo diagnosis of basal cell carcinoma subtypes compared with histopathology. Clinical and Experimental Dermatology. 46 (8), 1471-1481 (2021).
  16. Suppa, M., et al. Line-field confocal optical coherence tomography of basal cell carcinoma: A descriptive study. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. 35 (5), 1099-1110 (2021).
  17. Wang, Y. J., Wang, J. Y., Wu, Y. H. Application of cellular resolution full-field optical coherence tomography in vivo for the diagnosis of skin tumours and inflammatory skin diseases: A pilot study. Dermatology. 238 (1), 121-131 (2022).
  18. Jain, M., et al. Rapid evaluation of fresh ex vivo kidney tissue with full-field optical coherence tomography. Journal of Pathology Informatics. 6, 53 (2015).
  19. Mehta, P. P., et al. Patterns of use of reflectance confocal microscopy at a tertiary referral dermatology clinic. Journal of the American Academy of Dermatology. , (2021).
  20. Dinnes, J., et al. Reflectance confocal microscopy for diagnosing cutaneous melanoma in adults. Cochrane Database of Systematic Reviews. 12 (12), (2018).
  21. Dinnes, J., et al. Reflectance confocal microscopy for diagnosing keratinocyte skin cancers in adults. Cochrane Database of Systematic Reviews. 12 (12), (2018).
  22. Iftimia, N., et al. Handheld optical coherence tomography-reflectance confocal microscopy probe for detection of basal cell carcinoma and delineation of margins. Journal of Biomedical Optics. 22 (7), 76006 (2017).
  23. Monnier, J., et al. Combined reflectance confocal microscopy and optical coherence tomography to improve the diagnosis of equivocal lesions for basal cell carcinoma. Journal of the American Academy of Dermatology. 86 (4), 934-936 (2021).
  24. Navarrete-Dechent, C., et al. Management of complex head-and-neck basal cell carcinomas using a combined reflectance confocal microscopy/optical coherence tomography: a descriptive study. Archives of Dermatological Research. 313 (3), 193-200 (2021).
  25. Sahu, A., et al. Evaluation of a combined reflectance confocal microscopy-optical coherence tomography device for detection and depth assessment of basal cell carcinoma. JAMA Dermatology. 154 (10), 1175-1183 (2018).
  26. Rubinstein, G., Garfinkel, J., Jain, M. Live, remote control of an in vivo reflectance confocal microscope for diagnosis of basal cell carcinoma at the bedside of a patient 2500 miles away: A novel tele-reflectance confocal microscope approach. Journal of the American Academy of Dermatology. 81 (2), 41-42 (2019).
  27. Scope, A., et al. In vivo reflectance confocal microscopy imaging of melanocytic skin lesions: Consensus terminology glossary and illustrative images. Journal of the American Academy of Dermatology. 57 (4), 644-658 (2007).
  28. Calzavara-Pinton, P., Longo, C., Venturini, M., Sala, R., Pellacani, G. Reflectance confocal microscopy for in vivo skin imaging. Photochemistry and Photobiology. 84 (6), 1421-1430 (2008).
  29. Rajadhyaksha, M., Grossman, M., Esterowitz, D., Webb, R. H., Anderson, R. R. In vivo confocal scanning laser microscopy of human skin: Melanin provides strong contrast. Journal of Investigative Dermatology. 104 (6), 946-952 (1995).
  30. Gonzalez, S., Gonzalez, E., White, W. M., Rajadhyaksha, M., Anderson, R. R. Allergic contact dermatitis: Correlation of in vivo confocal imaging to routine histology. Journal of the American Academy of Dermatology. 40 (5), 708-713 (1999).
  31. Sahu, A., et al. Combined PARP1-targeted nuclear contrast and reflectance contrast enhances confocal microscopic detection of basal cell carcinoma. Journal of Nuclear Medicine. 63 (6), 912-918 (2021).
  32. González, S., Sackstein, R., Anderson, R. R., Rajadhyaksha, M. Real-time evidence of in vivo leukocyte trafficking in human skin by reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 117 (2), 384-386 (2001).
  33. Navarrete-Dechent, C., et al. Reflectance confocal microscopy terminology glossary for nonmelanocytic skin lesions: A systematic review. Journal of the American Academy of Dermatology. 80 (5), 1414-1427 (2019).
  34. Navarrete-Dechent, C., et al. Reflectance confocal microscopy terminology glossary for melanocytic skin lesions: A systematic review. Journal of the American Academy of Dermatology. 84 (1), 102-119 (2021).
  35. Sattler, E., Kastle, R., Welzel, J. Optical coherence tomography in dermatology. Journal of Biomedical Optics. 18 (6), 061224 (2013).
  36. Park, E. S. Skin-layer analysis using optical coherence tomography. Medical Lasers. 3 (1), 1-4 (2014).
  37. Marra, D. E., Torres, A., Schanbacher, C. F., Gonzalez, S. Detection of residual basal cell carcinoma by in vivo confocal microscopy. Dermatologic Surgery. 31 (5), 538-541 (2005).
  38. Alarcon, I., et al. In vivo reflectance confocal microscopy to monitor the response of lentigo maligna to imiquimod. Journal of the American Academy of Dermatology. 71 (1), 49-55 (2014).
  39. Guitera, P., et al. Surveillance for treatment failure of lentigo maligna with dermoscopy and in vivo confocal microscopy: new descriptors. British Journal of Dermatology. 170 (6), 1305-1312 (2014).
  40. Menge, T. D., Hibler, B. P., Cordova, M. A., Nehal, K. S., Rossi, A. M. Concordance of handheld reflectance confocal microscopy (RCM) with histopathology in the diagnosis of lentigo maligna (LM): A prospective study. Journal of the American Academy of Dermatology. 74 (6), 1114-1120 (2016).
  41. Chen, C. S., Elias, M., Busam, K., Rajadhyaksha, M., Marghoob, A. A. Multimodal in vivo optical imaging, including confocal microscopy, facilitates presurgical margin mapping for clinically complex lentigo maligna melanoma. British Journal of Dermatology. 153 (5), 1031-1036 (2005).
  42. Yelamos, O., et al. Handheld reflectance confocal microscopy for the detection of recurrent extramammary Paget disease. JAMA Dermatology. 153 (7), 689-693 (2017).
  43. Ardigo, M., Longo, C., Gonzalez, S. Multicentre study on inflammatory skin diseases from The International Confocal Working Group: Specific confocal microscopy features and an algorithmic method of diagnosis. British Journal of Dermatology. 175 (2), 364-374 (2016).
  44. Moscarella, E., Argenziano, G., Lallas, A., Pellacani, G., Longo, C. Confocal microscopy: A new era in understanding the pathophysiologic background of inflammatory skin diseases. Experimental Dermatology. 23 (5), 320-321 (2014).
  45. Bertrand, C., Corcuff, P. In vivo spatio-temporal visualization of the human skin by real-time confocal microscopy. Scanning. 16 (3), 150-154 (1994).
  46. Saknite, I., et al. Features of cutaneous acute graft-versus-host disease by reflectance confocal microscopy. British Journal of Dermatology. 181 (4), 829-831 (2019).
  47. Aleissa, S., et al. Presurgical evaluation of basal cell carcinoma using combined reflectance confocal microscopy-optical coherence tomography: A prospective study. Journal of the American Academy of Dermatology. 82 (4), 962-968 (2020).
  48. Bang, A. S., et al. Noninvasive, in vivo, characterization of cutaneous metastases using a novel multimodal RCM-OCT imaging device: A case-series. Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology. , (2022).
  49. Dickensheets, D. L., Kreitinger, S., Peterson, G., Heger, M., Rajadhyaksha, M. Wide-field imaging combined with confocal microscopy using a miniature f/5 camera integrated within a high NA objective lens. Optics Letters. 42 (7), 1241-1244 (2017).
  50. Kose, K., et al. Automated video-mosaicking approach for confocal microscopic imaging in vivo: an approach to address challenges in imaging living tissue and extend field of view. Scientific Reports. 7 (1), 10759 (2017).
  51. Zhao, J., et al. Deep learning-based denoising in high-speed portable reflectance confocal microscopy. Lasers in Surgery and Medicine. 53 (6), 880-891 (2021).
  52. Curiel-Lewandrowski, C., Stratton, D. B., Gong, C., Kang, D. Preliminary imaging of skin lesions with near-infrared, portable, confocal microscopy. Journal of the American Academy of Dermatology. 85 (6), 1624-1625 (2021).
  53. Freeman, E. E., et al. Feasibility and implementation of portable confocal microscopy for point-of-care diagnosis of cutaneous lesions in a low-resource setting. Journal of the American Academy of Dermatology. 84 (2), 499-502 (2021).
  54. Peterson, G., et al. Feasibility of a video-mosaicking approach to extend the field-of-view for reflectance confocal microscopy in the oral cavity in vivo. Lasers in Surgery and Medicine. 51 (5), 439-451 (2019).
  55. Kurugol, S., et al. Automated delineation of dermal-epidermal junction in reflectance confocal microscopy image stacks of human skin. Journal of Investigative Dermatology. 135 (3), 710-717 (2015).
  56. Kose, K., et al. Utilizing machine learning for image quality assessment for reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 140 (6), 1214-1222 (2020).
  57. Campanella, G., et al. Deep learning for basal cell carcinoma detection for reflectance confocal microscopy. Journal of Investigative Dermatology. 142 (1), 97-103 (2022).
  58. Wodzinski, M., Skalski, A., Witkowski, A., Pellacani, G., Ludzik, J. Convolutional neural network approach to classify skin lesions using reflectance confocal microscopy. 41st Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society EMBC 2019. , (2019).

Play Video

Citer Cet Article
Harris, U., Rajadhyaksha, M., Jain, M. Combining Reflectance Confocal Microscopy with Optical Coherence Tomography for Noninvasive Diagnosis of Skin Cancers via Image Acquisition. J. Vis. Exp. (186), e63789, doi:10.3791/63789 (2022).

View Video