Summary

Analyse dynamique de diffusion de la lumière pour la détermination de la taille des particules de complexes fer-glucides

Published: July 07, 2023
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Summary

La diffusion dynamique de la lumière (DLS) est apparue comme un test approprié pour évaluer la taille et la distribution des particules de complexes fer-glucides administrés par voie intraveineuse. Cependant, les protocoles manquent de normalisation et doivent être modifiés pour chaque complexe fer-glucides analysé. Le présent protocole décrit l’application et les considérations spéciales pour l’analyse du saccharose de fer.

Abstract

Les complexes de nanoparticules fer-glucides administrés par voie intraveineuse sont largement utilisés pour traiter la carence en fer. Cette classe comprend plusieurs complexes de nanoparticules structurellement hétérogènes, qui présentent une sensibilité variable aux conditions requises pour les méthodologies disponibles pour caractériser physicochimiquement ces agents. À l’heure actuelle, les attributs de qualité critiques des complexes fer-glucides n’ont pas été entièrement établis. La diffusion dynamique de la lumière (DLS) est apparue comme une méthode fondamentale pour déterminer la taille et la distribution des particules intactes. Cependant, des défis subsistent en ce qui concerne la normalisation des méthodologies entre les laboratoires, les modifications spécifiques requises pour les produits individuels à base de glucides de fer et la meilleure façon de décrire la distribution granulométrique. Il est important de noter que les diluants et les dilutions en série utilisés doivent être normalisés. La grande variance des approches pour la préparation des échantillons et la communication des données limite l’utilisation de la DLS pour la comparaison des agents fer-glucides. Ici, nous détaillons un protocole robuste et facilement reproductible pour mesurer la taille et la distribution granulométrique du complexe fer-glucides, le saccharose de fer, en utilisant la moyenne Z et l’indice de polydispersité.

Introduction

Le saccharose de fer (IS) est une solution colloïdale composée de nanoparticules constituées d’un complexe d’un noyau polynucléaire d’oxyhydroxyde de fer et de saccharose. IS est largement utilisé pour traiter la carence en fer chez les patients atteints d’une grande variété d’états pathologiques sous-jacents qui ne tolèrent pas la supplémentation orale en fer ou pour lesquels le fer oral n’est pas efficace1. IS appartient à la classe de médicaments complexes tels que définis par la Food and Drug Administration (FDA), qui est une classe de médicaments avec une chimie complexe proportionnelle aux produits biologiques2. L’évaluation réglementaire des médicaments complexes peut nécessiter des méthodes physicochimiques orthogonales supplémentaires et/ou des études précliniques ou cliniques pour comparer avec précision les médicaments complexes de suivi 3,4. Ceci est important parce que plusieurs études ont rapporté que l’utilisation de la SI par rapport à un produit de suivi ne produit pas les mêmes résultats cliniques. Cela souligne l’importance de l’utilisation de techniques de caractérisation nouvelles et orthogonales qui conviennent pour détecter les différences dans les propriétés physico-chimiques entre les produits IS 5,6.

L’élucidation précise de la taille et de la distribution granulométrique de la SI est d’une importance clinique, car la taille des particules est un facteur influent majeur dans le taux et l’étendue de l’opsonisation – la première étape critique dans la biodistribution de ces médicaments complexes 7,8. Même de légères variations dans la taille des particules et la distribution granulométrique ont été liées à des modifications du profil pharmacocinétique des complexes de nanoparticules d’oxyde de fer 9,10. Une étude récente de Brandis et coll. a montré que la taille des particules mesurée par DLS était significativement différente (14,9 nm ± 0,1 nm contre 10,1 nm ± 0,1 nm, p < 0,001) lorsqu’on compare un médicament de référence et un gluconate ferrique de sodium générique, respectivement11. La qualité, l’innocuité et l’efficacité constantes d’un lot à l’autre des produits glucidiques de fer dépendent entièrement de la mise à l’échelle du processus de fabrication, et la dérive potentielle de fabrication doit être soigneusement examinée9. Le procédé de fabrication peut entraîner la production de saccharose résiduel, et cela varie en fonction du fabricant12. Toute modification des variables du procédé de fabrication peut entraîner des changements importants dans le produit pharmaceutique complexe final en ce qui concerne la structure, la stabilité complexe et la disposition in vivo 9.

Pour évaluer la cohérence du médicament et prédire son comportement in vivo, des méthodologies analytiques orthogonales contemporaines sont nécessaires pour déterminer les propriétés physico-chimiques de nanomédicaments complexes. Cependant, il y a un manque de normalisation des méthodologies, ce qui peut entraîner un degré élevé de variation interlaboratoires dans la communication des résultats13. Malgré la reconnaissance de ces défis par les autorités réglementaires mondiales et la communauté scientifique14, la plupart des caractéristiques physico-chimiques des SI restent mal définies, et l’ensemble des attributs de qualité critiques dans le contexte des documents d’orientation réglementaires disponibles n’a pas été défini15. Les projets de documents d’orientation spécifiques aux produits publiés par la FDA pour les complexes fer-glucides suggèrent le DLS comme procédure d’évaluation de la taille et de la distribution granulométrique des produits de suite16,17.

Plusieurs publications ont détaillé les protocoles DLS établis pour déterminer les dimensions des nanoparticules IS13,18. Toutefois, étant donné que la préparation de l’échantillon, les conditions de procédure, l’instrumentation et les paramètres de réglage de l’instrumentation diffèrent d’une méthode publiée à l’autre, les résultats du DLS ne peuvent pas être comparés directement en l’absence d’une méthode normalisée pour interpréter les résultats13,18. La diversité des méthodologies et des méthodes de communication des données limite l’évaluation appropriée de ces caractéristiques à des fins de comparaison19. Il est important de noter que bon nombre des protocoles DLS précédemment publiés pour évaluer les IS ne tiennent pas compte de l’effet de la diffusion du saccharose dans la suspension en raison de la présence de saccharose libre, qui a été montré pour élever faussement les rayons hydrodynamiques calculés par la moyenne Z des nanoparticules dans les solutions colloïdales13,18. Le présent protocole vise à normaliser la méthodologie de mesure de la taille et de la distribution des particules de l’IS. La méthode a été développée et validée à cette fin.

Protocol

1. Utilisation de la machine Démarrage de la machine et du logicielREMARQUE : La figure supplémentaire S1A-D décrit les étapes de démarrage de la machine et du logiciel.Allumez l’instrument au moins 30 minutes avant de commencer les mesures, puis démarrez le PC. Double-cliquez sur l’icône du logiciel de l’instrument pour démarrer le programme. Entrez le nom d’utilisateur et le mot de passe dans la fenêtre de co…

Representative Results

La méthode décrite a été validée conformément à la ligne directrice Q2(R1)20 de l’ICH, qui impliquait la mesure de solutions d’essai dans différentes conditions. La précision n’était que de 0,5% RSD pour la taille moyenne Z, tandis qu’un maximum de 3,5% RSD a été calculé pour le PDI. Les résultats moyens des différents analystes et jours ne différaient que de 0,4% pour la taille moyenne Z et de 1,5% pour le PDI. Les statistiques ont été calculées à partir de 12 mesures …

Discussion

Le DLS est devenu un test fondamental pour la détermination de la taille et de la distribution granulométrique des nanoparticules pour des applications dans le développement de médicaments et l’évaluation réglementaire. Malgré les progrès réalisés dans les techniques DLS, des défis méthodologiques subsistent en ce qui concerne la sélection des diluants et la préparation des échantillons, qui sont particulièrement pertinents pour les complexes fer-glucides dans les solutions colloïdales. Il est importan…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Aucun

Materials

Equipment
Zetasizer Nano ZS Malvern NA equipped with Zetasizer software 7.12, Helium Neon laser (633 nm, max. 4 mW) and 173° backscattering geometry
Materials
Disposable plastic cuvettes 
LLG-Disposable plastic cells LLG labware LLG-Küvetten, Makro, PS; Order number 9.406011
low-particle water  (The use of freshly deionized and filtered (pore size 0.2 μm) water is recommended).
Microlitre pipette
Venofer 100 mg/5 mL Vifor Pharma
Volumetric flask 25 mL
Nanosphere Thermo 3020A Particle Standard
Software
Origin Pro v.8.5  Origin Lab Corporation

References

  1. Auerbach, M., Gafter-Gvili, A., Macdougall, I. C. Intravenous iron: A framework for changing the management of iron deficiency. Lancet Haematology. 7 (4), e342-e350 (2020).
  2. Generic drugs: FDA should make public its plans to issue and revise guidance on nonbiological complex drugs. US Government Accountability Office Available from: https://www.gao.gov/products/gao-18-80 (2017)
  3. Klein, K., et al. The EU regulatory landscape of non-biological complex drugs (NBCDs) follow-on products: Observations and recommendations. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 133, 228-235 (2019).
  4. Astier, A., et al. How to select a nanosimilar. Annals of the New York Academy of Sciences. 1407 (1), 50-62 (2017).
  5. Rottembourg, J., Kadri, A., Leonard, E., Dansaert, A., Lafuma, A. Do two intravenous iron sucrose preparations have the same efficacy. Nephrology Dialysis Transplantation. 26 (10), 3262-3267 (2011).
  6. Aguera, M. L., et al. Efficiency of original versus generic intravenous iron formulations in patients on haemodialysis. PLoS One. 10 (8), e0135967 (2015).
  7. Alphandery, E. Iron oxide nanoparticles for therapeutic applications. Drug Discovery Today. 25 (1), 141-149 (2020).
  8. Arami, H., Khandhar, A., Liggitt, D., Krishnan, K. M. In vivo delivery, pharmacokinetics, biodistribution and toxicity of iron oxide nanoparticles. Chemical Society Reviews. 44 (23), 8576-8607 (2015).
  9. Nikravesh, N., et al. Factors influencing safety and efficacy of intravenous iron-carbohydrate nanomedicines: From production to clinical practice. Nanomedicine. 26, 102178 (2020).
  10. Pai, A. B., et al. In vitro and in vivo DFO-chelatable labile iron release profiles among commercially available intravenous iron nanoparticle formulations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 97, 17-23 (2018).
  11. Brandis, J. E. P., et al. Evaluation of the physicochemical properties of the iron nanoparticle drug products: Brand and generic sodium ferric gluconate. Molecular Pharmaceutics. 18 (4), 1544-1557 (2021).
  12. Di Francesco, T., Sublet, E., Borchard, G. Nanomedicines in clinical practice: Are colloidal iron sucrose ready-to-use intravenous solutions interchangeable. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 131, 69-74 (2019).
  13. Di Francesco, T., Borchard, G. A robust and easily reproducible protocol for the determination of size and size distribution of iron sucrose using dynamic light scattering. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 152, 89-93 (2018).
  14. The Center for Research on Complex Generics. US Food and Drug Administration Available from: https://www.fda.gov/drugs/guidance-compliance-regulatory-information/center-research-complex-generics (2021)
  15. Drug products, including biological products, that contain nanomaterials – Guidance for industry. Center for Drug Evaluation and Research. FDA-2017-D-0759. US Food and Drug Administration Available from: https://www.fda.gov/regulatory-information/search-fda-guidance-documents/drug-products-including-biological-products-contain-nanomaterials-guidance-industry (2022)
  16. US Food and Drug Administration. Draft guidance on ferric oxyhydroxide. US Food and Drug Administration. , (2021).
  17. Zou, P., Tyner, K., Raw, A., Lee, S. Physicochemical characterization of iron carbohydrate colloid drug products. The AAPS Journal. 19 (5), 1359-1376 (2017).
  18. D’Mello, S. R., et al. The evolving landscape of drug products containing nanomaterials in the United States. Nature Nanotechnology. 12 (6), 523-529 (2017).
  19. Q2 (R1) Validation of analytical procedures: Text and methodology guidance for industry. FDA-2017-D-6821. US Food and Drug Administration Available from: https://www.fda.gov/regulatory-information/search-fda-guidance-documents/q2r1-validation-analytical-procedures-text-and-methodology-guidance-industry (2005)
  20. Reflection paper on the data requirements for intravenous iron-based nano-colloidal products developed with reference to an innovator medicinal product. European Medicines Agency Available from: https://www.ema.europe.eu/en/documents/scientific-guideline/reflection-paper-data-requirements-intravenous-iron-based-nano-colloidal-products-developed_en.pdf (2015)
  21. Fischer, K., Schmidt, M. Pitfalls and novel applications of particle sizing by dynamic light scattering. Biomaterials. 98, 79-91 (2016).
  22. Caputo, F., et al. Asymmetric-flow field-flow fractionation for measuring particle size, drug loading and (in)stability of nanopharmaceuticals. The joint view of European Union Nanomedicine Characterization Laboratory and National Cancer Institute – Nanotechnology Characterization Laboratory. Journal of Chromatography A. 1635, 461767 (2021).
  23. Yusa, S., Narain, R. Chapter 6 – Polymer characterization. Polymer Science and Nanotechnology. , 105-124 (2020).
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Citer Cet Article
Burgert, M., Marques, C. B., Borchard, G., Philipp, E., Wilhelm, M., Alston, A., Digigow, R. Dynamic Light Scattering Analysis for the Determination of the Particle Size of Iron-Carbohydrate Complexes. J. Vis. Exp. (197), e63820, doi:10.3791/63820 (2023).

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