Summary

השתלת כבד חזירי ללא מעקף ורידי כמודל תורם קריטריונים מורחבים

Published: August 17, 2022
doi:

Summary

בפרוטוקול זה מתואר מודל של השתלת כבד אורתוטופית חזירית לאחר אחסון קר סטטי של איברים תורמים למשך 20 שעות ללא שימוש במעקף ורידי במהלך השתלה. הגישה משתמשת בטכניקה כירורגית פשוטה עם מזעור השלב האנהפטי וניהול מתוחכם של נפח וזופרסור.

Abstract

השתלת כבד נחשבת לתקן הזהב לטיפול במגוון מחלות כבד קטלניות. עם זאת, סוגיות לא פתורות של כשל כרוני בהשתלות, מחסור מתמשך בתורמי איברים ושימוש מוגבר בשתלים שוליים קוראים לשיפור המושגים הנוכחיים, כגון יישום זליגת מכונות איברים. על מנת להעריך שיטות חדשות של שיפוץ ואפנון השתל, נדרשים מודלים תרגומיים. ביחס לדמיון אנטומי ופיזיולוגי לבני אדם וההתקדמות האחרונה בתחום הקסנוטרנספלנטציה, חזירים הפכו למיני בעלי החיים הגדולים העיקריים המשמשים במודלים של השתלות. לאחר הצגתו הראשונית של מודל השתלת כבד אורתוטופי חזירי על ידי Garnier et al. בשנת 1965, פורסמו מספר שינויים במהלך 60 השנים האחרונות.

בשל תכונות אנטומיות ספציפיות למפרטים, מעקף ורידי במהלך השלב האנהפטי נחשב כהכרח להפחתת גודש במעיים ואיסכמיה וכתוצאה מכך חוסר יציבות המודינמית ותמותה פריאופרטיבית. עם זאת, יישום מעקף מגדיל את המורכבות הטכנית והלוגיסטית של ההליך. יתר על כן, סיבוכים נלווים כגון תסחיף אוויר, דימום והצורך בכריתת רחם בו זמנית דווחו בעבר.

בפרוטוקול זה אנו מתארים מודל של השתלת כבד אורתוטופית חזירית ללא שימוש במעקף ורידי. חריטה של כבדים תורמים לאחר אחסון קר סטטי של 20 שעות – המדמה תנאי תורם קריטריונים מורחבים – מדגימה כי גישה פשוטה זו יכולה להתבצע ללא שינויים המודינמיים משמעותיים או תמותה תוך ניתוחית ועם ספיגה קבועה של תפקוד הכבד (כפי שהוגדר על ידי ייצור מרה ומטבוליזם CYP1A2 ספציפי לכבד). הצלחתה של גישה זו מובטחת על ידי טכניקה כירורגית אופטימלית וניהול מתוחכם של נפח הרדמה וזופרסור.

מודל זה צריך לעניין במיוחד קבוצות עבודה המתמקדות בקורס המיידי שלאחר הניתוח, פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה, מנגנונים אימונולוגיים נלווים, ושיפוץ איברים תורמים בקריטריונים מורחבים.

Introduction

השתלת כבד נותרה הסיכוי היחיד להישרדות במגוון מחלות שונות המובילות לכשל כבד חריף או כרוני. מאז יישומו המוצלח הראשון באנושות בשנת 1963 על ידי תומאס א. סטארצל, הרעיון של השתלת כבד התפתח לאפשרות טיפול אמינה המיושמת ברחבי העולם, בעיקר כתוצאה מהתקדמות בהבנת המערכת החיסונית, התפתחות דיכוי החיסון המודרני, ואופטימיזציה של טיפול פריאופרטיבי וטכניקות כירורגיות 1,2 . עם זאת, אוכלוסיות מזדקנות וביקוש גבוה יותר לאיברים הביאו למחסור בתורמים, עם שימוש מוגבר בשתלים שוליים מתורמים בעלי קריטריונים מורחבים והופעתם של אתגרים חדשים בעשורים האחרונים. ההערכה היא כי ההקדמה והיישום הנרחב של זליגת מכונות איברים פותחים מגוון אפשרויות בכל הנוגע לשיפוץ ומודולציה של השתלים ומסייעים בצמצום המחסור באיברים ומפחיתים את התמותה מרשימת ההמתנה 3,4,5,6.

על מנת להעריך מושגים אלה ואת השפעותיהם in vivo, מודלים השתלה תרגומית נחוצים7. בשנת 1983 הציגו קמהדע ואחרים מודל השתלת כבד אורתוטופית יעילה בחולדות, אשר מאז עבר שינויים נרחבים ויושם על ידי קבוצות עבודה ברחבי העולם 8,9,10,11. מודל השתלת הכבד האורתוטופית בעכברים הוא תובעני יותר מבחינה טכנית, אך גם בעל ערך רב יותר במונחים של העברה אימונולוגית, ודווח לראשונה בשנת 1991 על ידי Qian et al.12. למרות היתרונות לגבי זמינות, רווחת בעלי חיים ועלויות, מודלים של מכרסמים מוגבלים בתחולתם במסגרות קליניות7. לפיכך, נדרשים מודלים גדולים של בעלי חיים.

בשנים האחרונות, חזירים הפכו למיני בעלי החיים העיקריים המשמשים למחקר תרגומי בשל הדמיון האנטומי והפיזיולוגי שלהם עם בני אדם. יתר על כן, ההתקדמות הנוכחית בתחום הקסנוטרנספלנטציה עשויה להגביר עוד יותר את חשיבותם של חזירים כאובייקטים מחקריים13,14.

גרנייה ואחרים תיארו מודל השתלת כבד בחזירים כבר בשנת 196515. מספר מחברים, כולל Calne et al. בשנת 1967 ו- Chalstrey et al. בשנת 1971, דיווחו לאחר מכן על שינויים, ובסופו של דבר הובילו לרעיון בטוח ובר ביצוע של השתלת כבד חזירית ניסיונית בעשורים הבאים 16,17,18,19,20,21.

לאחרונה, קבוצות עבודה שונות סיפקו נתונים לגבי בעיות עכשוויות בהשתלת כבד בטכניקה של השתלת כבד אורתוטופית חזירית, כמעט תמיד כולל וריד-ורידי פעיל או פסיבי, כלומר, פורטו-קבאל, עוקף19,22. הסיבה לכך היא חוסר סובלנות ספציפי למין להידוק של הווריד הנבוב נחות ווריד הפורטל במהלך השלב האנהפטי עקב מעי גדול יותר באופן יחסי ופחות שונאי פורטו-קאוול או קבו-קאוול (למשל, היעדר וריד אזיגוס), וכתוצאה מכך תחלואה פריאופרטיבית מוגברתותמותה 23. טכניקות השתלת ורידים נחותים המיושמות במושתלים אנושיים כחלופה אינן אפשריות מכיוון שהווריד הנבוב החזירי נחות עטוף ברקמת הכבד23.

עם זאת, השימוש במעקף ורידי מגביר עוד יותר את המורכבות הטכנית והלוגיסטית בהליך כירורגי תובעני ממילא, ולכן אולי מונע מקבוצות עבודה לנסות ליישם את המודל לחלוטין. מלבד ההשפעות הפיזיולוגיות והאימונולוגיות הישירות של מעקף, כמה מחברים הצביעו על התחלואה המשמעותית כגון איבוד דם או תסחיף אוויר במהלך מיקום השנט ועל הצורך בכריתה סימולטנית, שעשויה להשפיע על התוצאות לטווח הקצר והארוך לאחר השתלה24,25.

הפרוטוקול הבא מתאר טכניקה פשוטה של השתלת כבד אורתוטופית חזירית לאחר אחסון קר סטטי של איברים תורמים למשך 20 שעות, המייצגת תנאי תורם בקריטריונים מורחבים ללא שימוש במעקף ורידי במהלך השתלה, כולל רכישת כבד תורם, הכנת שולחן אחורי, כריתת כבד מושתל וניהול הרדמה לפני ותוך ניתוח.

מודל זה צריך להיות בעל עניין מיוחד עבור קבוצות עבודה כירורגיות המתמקדות בקורס המיידי שלאחר הניתוח, פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה, שיפוץ איברים תורמים בקריטריונים מורחבים ומנגנונים אימונולוגיים נלווים.

Protocol

מחקר זה בוצע במעבדה למדעי בעלי חיים של בית הספר לרפואה של הנובר לאחר אישור של הרשות האזורית של סקסוניה התחתונה להגנת הצרכן ובטיחות מזון (Niedersächsisches Landesamt für Verbraucherschutz und Lebensmittelsicherheit [LAVES]; 19/3146) 1. רכישת כבד תורם הערה: תורמי הכבד היו חזירות בית נקבות (Sus scr…

Representative Results

הטכניקה המוצגת בפרוטוקול זה סיפקה תוצאות אמינות וניתנות לשחזור במונחים של יציבות המודינמית והישרדות בעלי חיים לאורך כל ההליך, כמו גם תפקוד השתל בקורס שלאחר הניתוח. לאחרונה, יישמנו את המודל לחקר פגיעות איסכמיה-רפרפוזיה והתערבויות טיפוליות הממתנות השפעות מזיקות בקורס המיי?…

Discussion

התפתחויות טכניות אחרונות כגון הכנסת זלוף מכונה יש פוטנציאל לחולל מהפכה בתחום השתלות הכבד. על מנת לתרגם את מושגי ההשתקה או השינוי למסגרות קליניות, מודלים של השתלות הניתנים לשחזור בבעלי חיים גדולים הם בלתי נמנעים.

לאחר ההקדמה הראשונית של השתלת כבד אורתוטופית חזירית, מספר מחב…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מודים לבריטה טראוטוויג, קורינה לבברט, אסטריד דינקל ואינגריד מדר על חריצותם ומחויבותם. יתר על כן, המחברים מודים לטום פיגיאל על הפקת חומר התמונה.

Materials

Abdominal retractor No Company Name available No Catalog Number available
Aortic clamp, straight Firma Martin No Catalog Number available
Arterial Blood Sampler Aspirator (safePICOAspirator) 1.5 mL Radiometer Medical ApS 956-622
Atropine (Atropinsulfat 0.5 mg/1 mL) B.Braun 648037
Backhaus clamp Bernshausen BF432
Bipolar forceps, 23 cm  SUTTER 780222 SG
Bowl 5 L, 6 L, 9 L Chiru-Instrumente 35-114327
Braunol Braunoderm B.Braun 3881059
Bulldog clamp Aesculap No Catalog Number available
Button canula Krauth + Timmermann GmbH 1464LL1B
Calcium gluconate (2.25 mmol/10 mL (10%)) B.Braun 2353745
Cell Saver (Autotransfusion Reservoir) Fresenius Kabi AG 9108471
Central venous catheter 7Fr., 3 Lumina, 30 cm 0.81 mm Arrow AD-24703
Clamp INOX B-17845  /  BH110  / B-481
Clamp Aesculap AN909R
Clamp, 260 mm Fehling Instruments GMbH &Co.KG ZAU-2
Clip Forceps, medium Ethicon LC207
Clip forceps, small Ethicon  LC107
CPDA-1 solution Fresenius Kabi AG 41SD09AA00
Custodiol (Histidin-Tryptophan-Ketogluterat-Solution) Dr.Franz Köhler Chemie GmbH 2125921
Dissecting scissors LAWTON  05-0641  No Catalog Number available
Dissecting scissors, 180 mm Metzenbaum  BC606R
Endotracheal tube 8.0 mm Covetrus 800764
Epinephrine (Adrenalin 1:1000) InfectoPharm 9508734
Falcon Tubes 50ml Greiner  227 261 L
Femoralis clamp Ulrich  No Catalog Number available
Fentanyl 0.1mg PanPharma 00483
Forceps, anatomical Martin 12-100-20
Forceps, anatomical, 250 mm Aesculap BD052R
Forceps, anatomical, 250 mm Aesculap BD032R
Forceps, anatomical, 250 mm  Aesculap BD240R
Forceps, surgical Bernshausen BD 671
Forceps, surgical INOX B-1357
G40 solution Serag Wiessner 10755AAF
Gelafundin ISO solution 40 mg/mL B. Braun 210257641
Guidewire with marker Arrow 14F21E0236
Haemostatic gauze ("Tabotamp"  5 x 7.5 cm) Ethicon 474273
Heparin sodium 25,000IE Ratiopharm W08208A
Hico-Aquatherm 60 Hospitalwerk No Catalog Number available
Infusion Set Intrafix B.Braun 4062981 L
Intrafix SafeSet 180 cm B.Braun 4063000
Introcan Safety, 18 G  B.Braun 4251679-01
Isofluran CP CP-Pharma No Catalog Number available
Large-bore venous catheter, 7Fr. Edwards Lifesciences I301F7
Ligaclip, medium Ethicon LT200
Ligaclip, small Ethicon  LT100
Material scissors Martin  11-285-23
Methylprednisolone (Urbason solubile forte 250 mg) Sanofi 7823704
Monopolar ERBE ICC 300 Fa. Erbe No Catalog Number available
NaCl solution (0.9%) Baxter 1533
Needle holder Aesculap BM36
Needle holder Aesculap BM035R
Needle holder Aesculap BM 67
Neutral electrode Erbe Elektromedizin GmbH Tübingen 21191 – 060
Norepinephrine (Sinora) Sintetica GmbH 04150124745717
Omniflush Sterile Filed 10 mL B.Braun 3133335
Original Perfusorline 300 cm B.Braun 21E26E8SM3
Overhold clamp INOX BH 959
Overhold clamp Ulrich CL 2911
Pentobarbital sodium(Release 500 mg/mL) WDT, Garbsen 21217
Perfusers B.Braun 49-020-031
Perfusor Syringe 50 mL B.Braun 8728810F
Petri dishes  92 x 17 mm Nunc 150350
Poole Suction Instrument Argyle flexibel Covidien, Mansfield USA 20C150FHX
Potassium chloride (7.45%) B.Braun 4030539078276
Pressure measurement set Codan pvb Medical GmbH 957179
Propofol (1%) CP-Pharma No Catalog Number available
S-Monovette 2.6 mL K3E Sarstedt 04.1901
S-Monovette 2.9 mL 9NC Sarstedt 04.1902
S-Monovette 7.5 mL Z-Gel Sarstedt 11602
Sartinski clamp Aesculap No Catalog Number available
Scalpel  No.11 Feather Safety Razor Co.LTD 02.001.40.011
Scissors INOX  BC 746
Seldinger Arterial catheter Arrow SAC-00520
Sodium bicarbonate (8.4%) B.Braun 212768082
Sterilization Set ("ProSet Preparation Kit CVC") B.Braun 4899719
Sterofundin ISO solution B.Braun No Catalog Number available
Suction Dahlhausen 07.068.25.301
Suction Aesculap Securat 80 Aesculap No Catalog Number available
Suction catheter ConvaTec 5365049
Sultamicillin (Unacid: 2000 mg Ampicillin/1000 mg Sulbactam) Pfizer DL253102
Suprapubic urinary catheter, "bronchialis", 50 cm ConvaTec UK  1F02772
Suprasorb ("Toptex lite RK") Lohmann & Rauscher 31654
Suture Vicryl 3-0 Ethicon VCP 1218 H
Suture Vicryl 4-0 Ethicon V392H
Suture, Prolene 4-0 Ethicon 7588 H
Suture, Prolene 5-0, double armed Ethicon  8890 H
Suture, Prolene 5-0, single armed Ethicon  8720 H
Suture, Prolene 6-0, double armed Ethicon  7230 H
Suture, Prolene 6-0, single armed Ethicon EH 7406 H
Suture, Prolene: blau 3-0  Ethicon EH 7499H
Suture, Safil 2/0 Aesculap C 1038446
Suture, Terylene 0 Serag Wiessner 353784
Syringe 2 mL, 5 mL, 10 mL, 20 mL B.Braun 4606027V
TransferSet "1D/X-double" steril 330 cm Fresenius Kabi AG 2877101
Ultrasound Butterfly IQ+ Butterfly Network Inc. 850-20014
Ventilator "Oxylog Dräger Fl" Dräger Medical AG No Catalog Number available
Yankauer Suction Medline RA19GMD
Zoletil 100 mg/mL  (50 mg Zolazepam, 50 mg tiletamin) Virbac 794-861794861

References

  1. Zarrinpar, A., Busuttil, R. W. Liver transplantation: Past, present and future. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 10 (7), 434-440 (2013).
  2. Song, A. T., et al. Liver transplantation: Fifty years of experience. World Journal of Gastroenterology. 20 (18), 5363-5374 (2014).
  3. Jakubauskas, M., et al. Machine perfusion in liver transplantation: A systematic review and meta-analysis. Visceral Medicine. , (2021).
  4. Serifis, N., et al. Machine perfusion of the liver: A review of clinical trials. Frontiers in Surgery. 8, 625394 (2021).
  5. Ceresa, C. D. L., Nasralla, D., Pollok, J. -. M., Friend, P. J. Machine perfusion of the liver: Applications in transplantation and beyond. Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology. 19 (3), 199-209 (2022).
  6. Schlegel, A., Muller, X., Dutkowski, P. Machine perfusion strategies in liver transplantation. Hepatobiliary Surgery and Nutrition. 8 (5), 490-501 (2019).
  7. Wenzel, N., Blasczyk, R., Figueiredo, C. Animal models in allogenic solid organ transplantation. Transplantology. 2 (4), 412-424 (2021).
  8. Kamada, N., Calne, R. Y. A surgical experience with five hundred thirty liver transplants in the rat. Surgery. 93 (1), 64-69 (1983).
  9. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. Journal of Visualized Experiments. (65), e4143 (2012).
  10. Yang, L., et al. A rat model of orthotopic liver transplantation using a novel magnetic anastomosis technique for suprahepatic vena cava reconstruction. Journal of Visualized Experiments. (133), e56933 (2018).
  11. Chen, X. -. C., et al. Reduced complications after arterial reconnection in a rat model of orthotopic liver transplantation. Journal of Visualized Experiments. (165), e60628 (2020).
  12. Qian, S. G., Fung, J. J., Demetris, A. V., Ildstad, S. T., Starzl, T. E. Orthotopic liver transplantation in the mouse. Transplantation. 52 (3), 562-564 (1991).
  13. Li, X., Wang, Y., Yang, H., Dai, Y. Liver and hepatocyte transplantation: What can pigs contribute. Frontiers in Immunology. 12, 802692 (2022).
  14. Reardon, S. First pig-to-human heart transplant: what can scientists learn. Nature. 601 (7893), 305-306 (2022).
  15. Garnier, H., et al. Liver transplantation in the pig: Surgical approach. Comptes Rendus Hebdomadaires des Seances de l’Academie des Sciences. Serie d: Sciences Naturelles. 260 (21), 5621-5623 (1965).
  16. Calne, R. Y., et al. Observations of orthotopic liver transplantation in the pig. British Medical Journal. 2 (5550), 478-480 (1967).
  17. Chalstrey, L. J., et al. Technique of orthotopic liver transplantation in the pig. The British Journal of Surgery. 58 (8), 585-588 (1971).
  18. Filipponi, F., Falcini, F., Benassai, C., Martini, E. Orthotopic liver transplant in pigs: Several variations of the surgical technic. Il Giornale di Chirurgia. 10 (7-8), 374-378 (1989).
  19. Spetzler, V. N., et al. Technique of porcine liver procurement and orthotopic transplantation using an active porto-caval shunt. Journal of Visualized Experiments. (99), e52055 (2015).
  20. Oldhafer, K. J., Hauss, J., Gubernatis, G., Pichlmayr, R., Spiegel, H. U. Liver transplantation in pigs: A model for studying reperfusion injury. Journal of Investigative Surgery. 6 (5), 439-450 (1993).
  21. Oldhafer, K. J., et al. Analysis of liver hemodynamics in severe ischemia and reperfusion injury after liver transplantation. Zentralblatt fur Chirurgie. 119 (5), 317-321 (1994).
  22. Vogel, T., et al. Successful transplantation of porcine liver grafts following 48-hour normothermic preservation. PLoS One. 12 (11), 0188494 (2017).
  23. Leal, A. J., et al. A simplified experimental model of large-for-size liver transplantation in pigs. Clinics. 68 (8), 1152-1156 (2013).
  24. Schiefer, J., et al. Regulation of histamine and diamine oxidase in patients undergoing orthotopic liver transplantation. Scientific Reports. 10 (1), 822 (2020).
  25. Esmaeilzadeh, M., et al. Technical guidelines for porcine liver allo-transplantation: A review of literature. Annals of Transplantation. 17 (2), 101-110 (2012).
  26. Oldhafer, F., et al. Supportive hepatocyte transplantation after partial hepatectomy enhances liver regeneration in a preclinical pig model. European Surgical Research. 62 (4), 238-247 (2021).
  27. Stockmann, M., et al. The LiMAx test: A new liver function test for predicting postoperative outcome in liver surgery. HPB. 12 (2), 139-146 (2010).
  28. Lapisatepun, W., Lapisatepun, W., Agopian, V., Xia, V. W. Venovenous bypass during liver transplantation: A new look at an old technique. Transplantation Proceedings. 52 (3), 905-909 (2020).
  29. Falcini, F., et al. Veno-venous bypass in experimental liver transplantation: portal-jugular versus caval-portal-jugular. Il Giornale di Chirurgia. 11 (4), 206-210 (1990).
  30. Copca, N., et al. Experimental liver transplantation on pigs — Technical considerations. Chirurgia. 108 (4), 542-546 (2013).
  31. Torres, O. J., et al. Hemodynamic alterations during orthotopic liver experimental transplantation in pigs. Acta Cirurgica Brasileria. 23 (2), 135-139 (2008).
  32. Canedo, B. F., et al. Liver autotransplantation in pigs without venovenous bypass: A simplified model using a supraceliac aorta cross-clamping maneuver. Annals of Transplantation. 20, 320-326 (2015).
  33. Battersby, C., Hickman, R., Saunders, S. J., Terblanche, J. Liver function in the pig. 1. The effects of 30 minutes’ normothermic ischaemia. The British Journal of Surgery. 61 (1), 27-32 (1974).
  34. Kaiser, G. M., Heuer, M. M., Frühauf, N. R., Kühne, C. A., Broelsch, C. E. General handling and anesthesia for experimental surgery in pigs. Journal of Surgical Research. 130 (1), 73-79 (2006).
  35. Oike, F., et al. Simplified technique of orthotopic liver transplantation in pigs. Transplantation. 71 (2), 328-331 (2001).
  36. Heuer, M., et al. Liver transplantation in swine without venovenous bypass. European Surgical Research. 45 (1), 20-25 (2010).
  37. Fondevila, C., et al. Step-by-step guide for a simplified model of porcine orthotopic liver transplant. The Journal of Surgical Research. 167 (1), 39-45 (2011).
check_url/fr/64152?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Beetz, O., Oldhafer, F., Weigle, C. A., Cammann, S., DeTemple, D., Sieg, L., Eismann, H., Palmaers, T., Vondran, F. W. R. Porcine Liver Transplantation Without Veno-Venous Bypass As an Extended Criteria Donor Model. J. Vis. Exp. (186), e64152, doi:10.3791/64152 (2022).

View Video