Summary

Обнаружение продукции активных форм кислорода в иммунном ответе риса в режиме реального времени с помощью хемилюминесцентного анализа

Published: November 25, 2022
doi:

Summary

Здесь мы описываем метод обнаружения в режиме реального времени продукции апопластических активных форм кислорода (АФК) в тканях риса в иммунном ответе, вызванном патогенным молекулярным паттерном. Этот метод прост, стандартизирован и дает высоковоспроизводимые результаты в контролируемых условиях.

Abstract

Активные формы кислорода (АФК) играют жизненно важную роль в различных биологических процессах, включая обнаружение абиотических и биотических стрессов. При заражении патогеном или контакте с химическими веществами, связанными с патогенами (патоген-ассоциированные молекулярные паттерны [PAMP]), в растениях быстро индуцируется множество иммунных реакций, включая взрыв АФК, что называется иммунитетом, вызванным PAMP (PTI). Всплеск АФК является отличительной реакцией PTI, которая катализируется группой локализованных в плазматической мембране НАДФН-оксидаз – белков семейства RBOH. Подавляющее большинство АФК содержит перекись водорода (H2O2), которая может быть легко и стабильно обнаружена методом хемилюминесценции на основе люминола. Хемилюминесценция представляет собой реакцию, продуцирующую фотоны, в которой люминол или его производное (например, L-012) подвергается окислительно-восстановительной реакции с АФК под действием катализатора. В этой статье описывается оптимизированный метод хемилюминесценции на основе L-012 для обнаружения продукции апопласта АФК в режиме реального времени при выявлении PAMP в тканях риса. Метод прост, устойчив, стандартизирован и легко воспроизводим в строго контролируемых условиях.

Introduction

Активные формы кислорода (АФК) включают ряд химически активных производных кислорода, включая супероксидные анионные радикалы (O2-) и его производные, гидроксильные радикалы (OH-), перекись водорода и продукты синглетного кислорода или окислительно-восстановительных реакций, которые постоянно образуются в пластидах и хлоропластах, митохондриях, пероксисомах и других субклеточных участках 1 . АФК играют важную роль во многих биологических процессах и необходимы для всех растений 2,3,4. Широкий спектр функций АФК варьируется от регуляции роста и развития до восприятия абиотических и биотических стрессов 5,6,7,8.

В иммунной системе растений рецепторы, локализованные в плазматической мембране растительных клеток – так называемые рецепторы распознавания образов (PRR) – воспринимают химические вещества, полученные из патогенов, – молекулярные паттерны, связанные с патогенами (PAMP). Это распознавание запускает серию быстрых иммунных реакций, включая приток кальция, взрыв АФК и каскад MAPK; таким образом, этот уровень иммунитета называется иммунитетом, вызванным PAMP (PTI). Всплеск АФК является отличительной реакцией PTI, определение которой широко применяется в исследованиях, связанных с PTI 9,10. Продукция АФК, инициируемая PAMP, объясняется резидентной плазматической мембраной белками семейства НАДФН-оксидазы или гомолога респираторной взрывооксидазы (RBOH), которые переносят электроны из цитозольного НАДФН или НАДН во внеклеточный кислород с образованием супероксида (O2), который спонтанно превращается в перекись водорода (H2O2O2) супероксиддисмутазой8 . Всплеск АФК, вызванный PAMP, довольно быстрый, появляется всего через несколько минут после лечения PAMP и достигает пика через ~ 10-12 минут. Подавляющее большинство молекул АФК содержит перекись водорода (H2O2), которую можно легко и стабильно обнаружить с помощью хемилюминесцентного анализа.

При хемилюминесценции хемилюминесцентный реагент реагирует с активным кислородом под действием катализатора с образованием промежуточных продуктов возбужденного состояния. Затем электроны в продукте возвращаются в основное состояние посредством безызлучательного перехода и испускают фотоны. Общие хемилюминесцентные реагенты включают люминол и L-012, причем люминол доминирует в применении11,12,13. Тем не менее, все больше исследователей выбирают L-012 для обнаружения образования АФК, поскольку L-012 имеет гораздо более высокую эффективность светового излучения в нейтральных или почти нейтральных условиях pH по сравнению с люминолом.

В данной работе описывается оптимизированный метод хемилюминесценции, основанный на L-012, для обнаружения продукции АФК в режиме реального времени после выявления PAMP в тканях риса (Oryza sativa), листовых дисках и оболочке. Представленный здесь метод прост, стабилен и стандартизирован и легко адаптируется к различным экспериментальным потребностям. Данные, полученные с помощью этого метода, обладают высокой воспроизводимостью в строго контролируемых условиях.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Протокол применим к различным тканям растений. Рисовая оболочка и листовые диски использовались в этом протоколе для обнаружения АФК при выявлении PAMP. Поскольку различия возникают главным образом из-за метода отбора проб, ниже описываются только общие процедуры, при этом п…

Representative Results

Здесь мы берем рисовый материал в качестве примера для определения АФК, полученных при обработке flg22. Генерация АФК после выявления является преходящей. В рисе увеличение продукции АФК было впервые обнаружено через 1-2 мин, достигло пика через 10-12 мин и вернулось к исходному уровню через …

Discussion

Цель этого исследования состояла в том, чтобы создать высокоэффективный метод количественной оценки ранней продукции АФК в ответ на ПАМП в тканях риса. Этот метод обеспечивает стандартизированную процедуру определения в режиме реального времени апопластных АФК, полученных из обрабо?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана грантами Шанхайского фонда естественных наук (номер гранта: 21ZR1429300 / BS1500016), Шанхайского университета Цзяотун (программа Agri-X, номер гранта: AF1500088/002), Шанхайского совместного инновационного центра сельскохозяйственных семян (номер гранта: ZXWH2150201/001) для Цзянбо Фана и Проекта сотрудничества в области медицины и инженерии Шанхайского университета Цзяотун (номер гранта: 21X010301734) для Кан Ли.

Materials

96-well microtiter plate WHB WHB-96-01
Ethanol absolute Innochem A43543
flg22 Sangon Biotech p20973 PAMP
Gen5 BioTek software
L-012 FUJIFILM 120-04891 8-amino-5-chloro-7-phenyl-2,3-dihydropyrido [3,4-d] pyridazine-1,4-dione, CAS #:143556-24-5
Microplate reader BioTek Synergy 2
MS Medium Solarbio M8521
NaCLO Aladdin S101636
Peroxidase from horseradish (HRP) Sigma P8375
Phytagel Sigma P8169
Sampler Miltex  15110-40
Sucrose Sangon Biotech A502792
Tris Sangon Biotech A610195

References

  1. Gechev, T. S., Van Breusegem, F., Stone, J. M., Denev, I., Laloi, C. Reactive oxygen species as signals that modulate plant stress responses and programmed cell death. Bioessays. 28 (11), 1091-1101 (2006).
  2. Mittler, R. ROS are good. Trends in Plant Science. 22 (1), 11-19 (2017).
  3. Gilroy, S., et al. ROS, calcium, and electric signals: key mediators of rapid systemic signaling in plants. Plant Physiology. 171 (3), 1606-1615 (2016).
  4. Mittler, R., Vanderauwera, S., Gollery, M., Van Breusegem, F. Reactive oxygen gene network of plants. Trends in Plant Science. 9 (10), 490-498 (2004).
  5. Marino, D., Dunand, C., Puppo, A., Pauly, N. A burst of plant NADPH oxidases. Trends in Plant Science. 17 (1), 9-15 (2012).
  6. Mittler, R., Zandalinas, S. I., Fichman, Y., Van Breusegem, F. Reactive oxygen species signalling in plant stress responses. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 23 (10), 663-679 (2022).
  7. Suzuki, N., Koussevitzky, S., Mittler, R., Miller, G. ROS and redox signalling in the response of plants to abiotic stress. Plant, Cell & Environment. 35 (2), 259-270 (2012).
  8. Suzuki, N., et al. Respiratory burst oxidases: the engines of ROS signaling. Current Opinion in Plant Biology. 14 (6), 691-699 (2011).
  9. Kadota, Y., Shirasu, K., Zipfel, C. Regulation of the NADPH oxidase RBOHD during plant immunity. Plant and Cell Physiology. 56 (8), 1472-1480 (2015).
  10. Segonzac, C., Zipfel, C. Activation of plant pattern-recognition receptors by bacteria. Current Opinion in Microbiology. 14 (1), 54-61 (2011).
  11. Roda, A., et al. Progress in chemical luminescence-based biosensors: A critical review. Biosensors and Bioelectronics. 76, 164-179 (2016).
  12. Hong, D., Joung, H. -. A., Lee, D. Y., Kim, S., Kim, M. -. G. Attomolar detection of cytokines using a chemiluminescence immunoassay based on an antibody-arrayed CMOS image sensor. Sensors and Actuators B: Chemical. 221, 1248-1255 (2015).
  13. Nishinaka, Y., et al. et al. new sensitive chemiluminescence probe, L-012, for measuring the production of superoxide anion by cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 193 (2), 554-559 (1993).
  14. Grundy, J., Stoker, C., Carre, I. A. Circadian regulation of abiotic stress tolerance in plants. Frontiers in Plant Science. 6, 648 (2015).
check_url/64776?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wang, Y., An, Z., Zhao, Z., Li, C., Fan, J. Real-Time Detection of Reactive Oxygen Species Production in Immune Response in Rice with a Chemiluminescence Assay. J. Vis. Exp. (189), e64776, doi:10.3791/64776 (2022).

View Video