Summary

En ex vivo modell av eggstokkreft peritoneal metastase ved bruk av humant omentum

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver etableringen av en tredimensjonal (3D) ex vivo-modell for kreftcelle-omentum-interaksjon. Modellen gir en plattform for å belyse protumormekanismer innenfor fettnisjen og for å teste nye terapier.

Abstract

Eggstokkreft er den dødeligste gynekologiske maligniteten. Omentum spiller en nøkkelrolle i å gi et støttende mikromiljø til metastatiske eggstokkreftceller, samt immunmodulerende signaler som tillater tumortoleranse. Vi har imidlertid begrensede modeller som tett etterligner samspillet mellom eggstokkreftceller og fettrikt vev. For ytterligere å forstå de cellulære og molekylære mekanismene som omentumet gir et protumoralt mikromiljø, utviklet vi en unik 3D ex vivo-modell for kreftcelle-omentum-interaksjon. Ved hjelp av humant omentum er vi i stand til å dyrke eggstokkreftceller i dette fettrike mikromiljøet og overvåke faktorene som er ansvarlige for tumorvekst og immunregulering. I tillegg til å gi en plattform for studiet av dette fettrike tumormikromiljøet, gir modellen en utmerket plattform for utvikling og evaluering av nye terapeutiske tilnærminger for å målrette metastatiske kreftceller i denne nisje. Den foreslåtte modellen er enkel å generere, billig og anvendelig for translasjonsundersøkelser.

Introduction

Eggstokkreft er den dødeligste gynekologiske maligniteten over hele verden1. Livstidsrisikoen for å utvikle denne kreften erca. 1 av 70, med median alder for diagnose ved 63 år 2. Primære maligniteter i eggstokkene klassifiseres histologisk som enten epitelial eller ikke-epitelial. Epitelial eggstokkreft (EOC) representerer over 90% av svulstene, og den vanligste subtypen er høyverdig serøs karsinom (HGSC), som står for omtrent 70% -80% av EOCs. For tiden finnes det ingen effektive screeningmetoder for å oppdage sykdom tidlig. Så de fleste pasienter diagnostiseres på et avansert stadium (dvs. Fédération Internationale de Gynécologie et d’Obstétrique [FIGO] stadium III eller IV) etter at kreften har spredt seg gjennom bukhulen2.

Standard førstelinjebehandling er cytoreduktiv kirurgi for å fjerne all synlig makroskopisk sykdom, etterfulgt av adjuvant platinabasert kjemoterapi for å ødelegge eventuell gjenværende mikroskopisk sykdom. Mens det har vært mange fremskritt i eggstokkreftbehandling de siste to tiårene, vil ca 70% av pasientene med avansert sykdom komme tilbake innen 3 års behandling3. Gitt den generelle dårlige prognosen til disse pasientene, har pågående og fremtidig translasjonsforskningsinnsats i EOC som mål å identifisere biomarkører for tidlig deteksjon, forhindre metastase, forbedre nåværende terapier for å unngå resistens og utvikle nye personlige kreftbehandlinger.

Generalisert metastase i bukhulen og tilhørende kjemoresistens er to av de største begrensningene for forbedring av behandlingen av pasienter med eggstokkreft 4,5. Omentum, en fettforklelignende struktur som henger ned fra magen over tarmene, er et hovedsted for eggstokkreftmetastase 6,7. I tillegg til sin funksjon som en fysisk barriere, har omentumet vist seg å ha regenerativ og angiogen kapasitet og ha immunaktiviteter, som sammen fremmer vaskularisering, akselererer sårheling og begrenser infeksjon8. Den inneholder en høy konsentrasjon av stamceller som kan differensiere i forskjellige celletyper og kan bidra til å reparere skadet vev. Omentum kan bli betent som respons på skade eller infeksjon, noe som utløser migrasjon av immunceller til skadestedet9. Disse immuncellene frigjør vekstfaktorer og andre molekyler som bidrar til å fremme reparasjon og regenerering av skadet vev. Immunceller, som makrofager, lymfocytter og plasmaceller, lokalisert i omentumet, er strukturer kjent som “melkeflekker”, som er ansvarlige for å oppdage og angripe patogener og regulere peritoneal immunitet. Omentum har også vist seg å spille en rolle i å indusere immuntoleranse10, som er immunsystemets evne til å tolerere selvantigener og ikke angripe sunt vev. Imidlertid er de samme immunrelaterte aktivitetene også involvert i patologiske responser, for eksempel vekst av omental svulster, metastase og rømning av immunovervåking 9,11. Tidligere studier fra vårt laboratorium og andre har vist en unik og aktiv rolle i fettmikromiljøet i inhiberingen av antitumorale immunresponser og i oppkjøpet av kjemoresistens12,13,14. Dessverre har vi begrenset informasjon om de cellulære og molekylære mekanismene som omentumet gir et protumoralt mikromiljø.

For bedre å forstå interaksjonene mellom kreftceller og omentumet ble det utviklet et 3D-kultursystem bestående av humane eggstokkreftceller og pasientavledede omentumeksplanter. Protokollen beskrevet her representerer en ny ex vivo-modell for peritoneal karsinomatose. Denne modellen etterligner den naturlige utviklingen av eggstokkreft tumorigenesis i dette fettrike vevet. Den foreslåtte modellen er enkel å generere, billig og potensielt anvendelig for translasjonsundersøkelser i eggstokkreftforskning.

Protocol

Følgende forskningsprotokoll ble gjennomgått og godkjent av Wayne State University Institutional Review Board (IRB). Informert samtykke ble innhentet fra alle pasientene før operasjonen. Figur 1 illustrerer de tre generelle trinnene i denne protokollen. 1. Fremstilling av humant omentumvev Tilberede omentumdyrkningsmedier (DMEM/F12 + 10 % fosterbovint serum + 1 % penicillin-streptomycin) og oppbevares ved 4 °C. Aliquot 30-40 ml av d…

Representative Results

Vellykket etablering av eggstokkreftceller i omentumprøver ble påvist ca. dag 14 (figur 3A-C). Minst 24 replikater ble fremstilt og injisert per innsamlet prøve for å tillate videre eksperimentering. Tumorvekst ble overvåket ved å ta fluorescerende bilder (figur 3D,E). Bilder måtte tolkes nøye, da det også vokste et monolag av kreftceller i bunnen av hver brønn som ikke var festet til omentumet. Vi for…

Discussion

Ved hjelp av denne protokollen ble en preklinisk modell av peritoneal karsinomatose for eggstokkreft utviklet ved hjelp av en kombinasjon av grunnleggende in vitro og ex vivo teknikker. En progressiv tumorvekst ble observert over 50 dager med samkultur etter såing av omentumprøver med mCherry+ OCSC1-F2 humane eggstokkreftceller. Denne metoden ble utviklet og optimalisert på tvers av flere eksperimentelle forsøk ved bruk av forskjellige omentumprøver. Vellykket tumorvekst var avhengig av kvaliteten …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien er delvis finansiert av The Janet Burros Memorial Foundation. Vi anerkjenner pasientene og Karmanos Cancer Institute Gynecologic Oncology Department for innsamling av omentumprøver. Vi anerkjenner også Biobank and Correlative Sciences Core ved Karmanos Cancer Institute for koordinering av pasientrekruttering og utarbeidelse av patologiske lysbilder. Biobanken og Correlative Sciences Core støttes delvis av NIH Center grant P30 CA22453 til Karmanos Cancer Institute ved Wayne State University.

Materials

0.05% Trypsin-EDTA (1x) Gibco 25300054
1 mL Insulin Syringe with 26 G detachable needle BD 329652
10 mL Serological Pipets CELLTREAT 229010B
100 mm Tissue Culture Dish Fisherbrand FB012924
15 mL Centrifuge Tube CELLTREAT 229411
24 Well Cell Culture Plate Costar 3524
50 mL Centrifuge Tube CELLTREAT 229421
75 cm2 Tissue Culture Flask CELLTREAT 229341
Corning Cell Counter Corning 9819000
Cytation 5 imager Biotek
DMEM/F12 (1:1) (1x), +L-Glutamine, +2.438 g/L Sodium Bicarbonate Gibco 11320033
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 1043028
Matrigel Corning 356230 Basement membrane matrix
No. 10 Stainless Steel Disposable Scalpel Integra-Miltex 4410
Penicillin Streptomycin Gibco 15140122
Phosphate Buffered Saline, pH 7.4 (1x) Gibco 10010023
Revolve microscope Echo

References

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Wagle, N. S., Jemal, A. Cancer statistics. CA Cancer J Clin. 73 (1), 17-48 (2023).
  2. Berek, J. S., Renz, M., Kehoe, S., Kumar, L., Friedlander, M. Cancer of the ovary, fallopian tube, and peritoneum: 2021 update. Int J Gynaecol Obstet. 155 (Suppl 1), 61-85 (2021).
  3. Ledermann, J. A., et al. Newly diagnosed and relapsed epithelial ovarian carcinoma: ESMO clinical practice guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann Oncol. 24 (Suppl 6), vi24-32 (2013).
  4. Jelovac, D., Armstrong, D. K. Recent progress in the diagnosis and treatment of ovarian cancer. CA Cancer J Clin. 61 (3), 183-203 (2011).
  5. Morgan, R. J., et al. Ovarian cancer. Clinical practice guidelines in oncology. J Natl Compr Canc Netw. 6 (8), 766-794 (2008).
  6. Nieman, K. M., et al. Adipocytes promote ovarian cancer metastasis and provide energy for rapid tumor growth. Nat Med. 17 (11), 1498-1503 (2011).
  7. Motohara, T., et al. An evolving story of the metastatic voyage of ovarian cancer cells: cellular and molecular orchestration of the adipose-rich metastatic microenvironment. Oncogene. 38 (16), 2885-2898 (2019).
  8. Di Nicola, V. Omentum a powerful biological source in regenerative surgery. Regen Ther. 11, 182-191 (2019).
  9. Meza-Perez, S., Randall, T. D. Immunological functions of the omentum. Trends Immunol. 38 (7), 526-536 (2017).
  10. Liu, M., Silva-Sanchez, A., Randall, T. D., Meza-Perez, S. Specialized immune responses in the peritoneal cavity and omentum. J Leukoc Biol. 109 (4), 717-729 (2021).
  11. Lee, W., et al. Neutrophils facilitate ovarian cancer premetastatic niche formation in the omentum. J Exp Med. 216 (1), 176-194 (2019).
  12. Cardenas, C., et al. Adipocyte microenvironment promotes Bclxl expression and confers chemoresistance in ovarian cancer cells. Apoptosis. 22 (4), 558-569 (2017).
  13. Wu, Q., et al. Cancer-associated adipocytes: key players in breast cancer progression. J Hematol Oncol. 12 (1), 95 (2019).
  14. Zhang, Z., Scherer, P. E. Adipose tissue: The dysfunctional adipocyte – a cancer cell’s best friend. Nat Rev Endocrinol. 14 (3), 132-134 (2018).
  15. Alvero, A. B., et al. TRX-E-002-1 Induces c-Jun-dependent apoptosis in ovarian cancer stem cells and prevents recurrence in vivo. Mol Cancer Ther. 15 (6), 1279-1290 (2016).
  16. Alvero, A. B., et al. Novel approach for the detection of intraperitoneal micrometastasis using an ovarian cancer mouse model. Sci Rep. 7, 40989 (2017).
  17. Craveiro, V., et al. Phenotypic modifications in ovarian cancer stem cells following Paclitaxel treatment. Cancer Med. 2 (6), 751-762 (2013).
  18. Sumi, N. J., et al. Murine model for non-invasive imaging to detect and monitor ovarian cancer recurrence. J Vis Exp. (93), e51815 (2014).
  19. Agarwal, R., et al. Macrophage migration inhibitory factor expression in ovarian cancer. Am J Obstet Gynecol. 196 (4), 348.e1-348.e5 (2007).
  20. Kelly, M. G., et al. TLR-4 signaling promotes tumor growth and paclitaxel chemoresistance in ovarian cancer. Cancer Res. 66 (7), 3859-3868 (2006).
  21. Li, J., et al. CBX7 binds the E-box to inhibit TWIST-1 function and inhibit tumorigenicity and metastatic potential. Oncogene. 39 (20), 3965-3979 (2020).
  22. Tedja, R., et al. Generation of stable epithelial-mesenchymal hybrid cancer cells with tumorigenic potential. Cancers (Basel). 15 (3), 15030684 (2023).
  23. Dauleh, S., et al. Characterisation of cultured mesothelial cells derived from the murine adult omentum. PLoS One. 11 (7), e0158997 (2016).
check_url/fr/66031?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Wong, T., Tedja, R., Chehade, H., Morris, R., Alvero, A. B., Mor, G. An Ex Vivo Model of Ovarian Cancer Peritoneal Metastasis Using Human Omentum. J. Vis. Exp. (203), e66031, doi:10.3791/66031 (2024).

View Video