Summary

En kromatin-analys för mänskliga hjärnvävnaden

Published: March 21, 2008
doi:

Summary

Fram till nyligen var uttryck studier på mänskliga hjärnan begränsad till kvantifiering av RNA eller protein. Med kromatin immunoprecipitation tekniker som beskrivs i detta dokument kommer det att vara möjligt att kartlägga histon metylering och andra epigenetiska regulatorer av genuttryck i döden hjärnan.

Abstract

Kroniska neuropsykiatriska sjukdomar som schizofreni, bipolär sjukdom och autism tros bero på en kombination av genetiska och miljömässiga faktorer som kan leda till epigenetiska förändringar av genuttryck och andra molekylär patologi. Traditionellt var dock uttryck studier i döden hjärnan begränsad till kvantifiering av mRNA eller protein. Begränsningarna stött på döden hjärnforskning som variabilitet i autolys tid och integrities vävnad är också sannolikt att påverka några studier av högre strukturer för kromatin. Men nucleosomal organisation av arvsmassans DNA inklusive DNA: core histon bindande – verkar vara i stort sett bevaras i representativa prover som tillhandahålls av olika hjärnan banker. Därför är det möjligt att studera metylering mönstret och andra kovalenta modifieringar av kärnan histoner vid definierade genetiska loci i döden hjärnan. Här presenterar vi en förenklad infödd kromatin immunoprecipitation (NChIP) protokoll för frysta (aldrig fast) mänskliga hjärnan exemplar. Från och med micrococcal nukleas rötning av hjärnan homogenat, följt NChIP av qPCR kan slutföras inom tre dagar. Den metod som presenteras här bör vara användbar för att belysa epigenetiska mekanismer av genuttryck i normala och sjuka mänskliga hjärnan.

Protocol

Förfarande: 1: a Day 1. Homogenisera 50-500 mg frysta efter slakt grå vävnad med Douncing buffert. ! VARNING – mänsklig vävnad måste hanteras med omsorg under strikta säkerhetskrav. Det ska hanteras på BSL-2 eller högre säkerhetsstandard. Ta tidigare dissekerade, obduktioner hjärnan från -80 ° C, dounce dem i 5X hjärnans volym Douncing buffert, och placera i 2,0 ml mikrocentrifugrör. Ma…

Discussion

Det protokoll som beskrivs här är särskilt användbart för utredarna intresserade histon och / eller DNA-metylering underskrifter mänskliga hjärnan, eftersom dessa kromatin märken kan vara mindre benägna att obduktion artefakter jämfört med andra typer av förändringar, inklusive (histon) acetylering och fosforylering 1, 2. Den obduktion hjärnan är mottaglig för studiet av mono-nucleosomal preparat; DNA är i stort sett knutna till kärnan histoner, åtminstone i prover med representativa autolys intervall (tiden me…

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett bidrag från National Institute of Mental Health (5R01MH071476).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Tris-HCl   EMD 9310  
Magnesium Chloride Hexahydrate   OmniPur 5980  
Calcium Chloride   Fisher Scientific C614-3  
EDTA, 0.5M Solution, pH8.0   OmniPur 4055  
Sodium Chloride   Mallinckrodt Chemicals 7581-06  
SDS Solution 10% (w/v)   Bio-Rad 161-0416  
Triton X-100   Fluka 93426  
Igepal CA-630   Sigma I-3021  
Sodium Deoxycholate   Sigma D6750-25G  
Lithium Chloride   Sigma L9650-100G  
Sodium Bicarbonate   Sigma S7277-250G  
Sodium Acetate (anhydrous)   Sigma S-2889  
Nuclease micrococcal from Staphylococcus   Sigma N3755-200UN  
Benzamidine   Fluka 12072  
Phenylmethanesulfonylfluoride   Sigma P7626-1G  
3M DTT   Fluka 43815  
Protein G Agarose, Fast Flow   Upstate 16-266  
Sonicated Salmon Sperm DNA Kit   Stratagene 201190  
Proteinase K from Engyodontium album   Sigma P2308  
Phenol:Chloroform 1:1   OmniPur 6810  
Glycogen, From Mussels   Sigma G1767-1VL  
Ethyl Alcohol (200 Proof)   Pharmco-AAPER 111000200  

Solutions:

  • nChIP Douncing Buffer : 10 mM Tris, 4 mM MgCl2, 1 mM CaCl2 adjust pH to 7.5
  • 10x FSB: 50 mM EDTA, 200 mM Tris, 500 mM NaCl adjust pH to 7.5
  • Low salt washing buffer: 0.1% SDS, 1% Triton X-100, 2 mM EDTA, 20 mM Tris (pH 8), 150 mM NaCl
  • High salt washing Buffer: 0.1% SDS, 1% Triton X-100, 2 mM EDTA, 20 mM Tris (Ph 8), 500 mM NaCl
  • Lithium Chloride Buffer: 1% IGEPAL-CA 630, 1% Deoxycholic acid, 1 mM EDTA (pH 8), 10 mM Tris (pH 8), 0.25 M LiCl
  • TE buffer: 10 mM Tris (pH 8), 1 mM EDTA
  • Elution Buffer: 0.1M NaHCO3, 1% SDS
  • Proteinase K digestion buffer (10X): 1M Tris, 50 mM EDTA, 2% SDS, 2M NaCl adjust pH to 8.0
  • 3 M Sodium Acetate: 24.61 g anhydrous sodium acetate (M.W.=82.03) in 100 mL of autoclaved distilled water. Adjust pH to 5.2 using concentrated acetic acid.

References

  1. Huang, H. S., Matevossian, A., Jiang, Y. Akbarian S. Chromatin immunoprecipitation in postmortem brain. J Neurosci Methods. 156, 284-292 .
  2. Huang, H. S., Matevossian, A., Whittle, C. Prefrontal dysfunction in schizophrenia involves mixed-lineage leukemia 1-regulated histone methylation at GABAergic gene promoters. J Neurosci. 27, 11254-11262 .
  3. O’Neill, L. P., Turner, B. M. Immunoprecipitation of native chromatin: NChIP. Methods. 31, 76-82 .
  4. Spiteri, E., Konopka, G., Coppola, G., et al. Identification of the transcriptional targets of FOXP2, a gene linked to speech and language, in developing human brain. Am J Hum Genet. 81, 1144-1157 .
  5. Huang, H. u. a. n. g., Akbarian, S. GAD1 mRNA expression and DNA methylation in prefrontal cortex of subjects with schizophrenia. PLoS ONE. 2, .
  6. Stadler, F., Kolb, G., Rubusch, L., Baker, S. P., Jones, E. G., Akbarian, S. Histone methylation at gene promoters is associated with developmental regulation and region-specific expression of ionotropic and metabotropic glutamate receptors in human brain. J Neurochem. 94, 324-336 .
check_url/fr/717?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Matevossian, A., Akbarian, S. A Chromatin Assay for Human Brain Tissue. J. Vis. Exp. (13), e717, doi:10.3791/717 (2008).

View Video