Summary

A gravação óptica de atividade elétrica na Guiné-porco Networks Enteric usando Tensão sensível Corantes

Published: December 04, 2009
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Summary

Este protocolo ilustra como sensíveis à voltagem corantes permitir a gravação ótica da atividade elétrica de redes neurais intactos, como os plexos do cobaia sistema nervoso entérico, com uma resolução ajustável que varia de single-células ganglionares para multi-circuitos.

Abstract

O sistema nervoso entérico (ENS) é uma rede independente com funções identificadas, capaz de executar comportamentos complexos em isolamento. Seus neurônios (10 a 25 m de diâmetro) são arranjados em plexos que se limitam a planos distintos da parede do intestino<sup> 1</sup>; Do plexo mioentérico podem ser encontrados entre as camadas musculares longitudinal e circular, eo plexo submucoso entre a camada muscular circular e da mucosa. Uma vez que os sistemas efetores para estes plexos (transporte de epitélio, as células endócrinas, elementos imunológico, vasos sanguíneos e músculo liso) também estão contidos dentro da parede do intestino, semi-intactas preparações podem ser dissecados que preservam os componentes individuais de diferentes vias reflexas. O comportamento dos sistemas efetores é controlado pelo plexos submucoso e mioentérico atuando em conjunto. Portanto, o conhecimento detalhado das interações sinápticas dentro e entre os gânglios, e de comunicação entre os plexos, é essencial para a compreensão da função gastrointestinal normal. A ENS, como um sistema nervoso intacto, é um modelo único experimental em que se pode correlacionar eventos moleculares e celulares com o comportamento elétrico da rede neuronal e suas saídas fisiológicas. Por causa da organização quase-bidimensional de sua plexos, a ENS é particularmente adequado para o estudo de redes neurais usando vários sites técnicas de gravação óptica que empregam corantes sensíveis à voltagem<sup> 2,7,8,9</sup>. Vamos ilustrar aqui o uso de um relativamente novo naphthylstyryl-piridínio corante (di-4-ANEPPDHQ)<sup> 3</sup> Que oferece múltiplas vantagens sobre seus antecessores, incluindo fototoxicidade muito baixa, baixa taxa de internalização, e estabilidade química notável. Quando usado em conjunto com uma câmera que permite sub-milissegundo tempo de resolução, este corante nos permite monitorar a atividade elétrica de todos os neurônios no campo de visão com uma resolução máxima espacial de ~ 2,5 mM-aumento de 100X. Com menor ampliação (10X ou 20X), o sacrifício de uma única célula de resolução é compensada por um ganho em perspectiva, revelando a complexidade do circuito inter-ganglionares.

Protocol

Parte 1: preparação do tecido Os preparativos submucoso e mioentérico do plexo são isolados por dissecção seqüencial a partir do intestino delgado de 150-200g (2-3 semanas de idade) Hartley porcos guinea que foram anestesiados por inalação de isoflurano e decapitado. Após a eutanásia, o intestino delgado é cortado e seu conteúdo removido por lavagem do lúmen com uma solução quente e oxigenado. Usamos Meio 199 suplementado com HEPES 25 mM, 5 mM NaHCO 3 e 2 mM de glutamina, e pH ajust…

Discussion

Este protocolo foi escrito com dois objetivos em mente. O primeiro é convencer outros investigadores que, graças aos avanços tecnológicos muitas da década passada, a gravação ótica da atividade elétrica utilizando corantes sensíveis à tensão tornou-se um dos mais poderosos, metodologias confiáveis ​​e acessíveis para o estudo de redes neuronais intacta, na verdade , poderia ser facilmente implementado, mesmo em um laboratório com recursos modestos. O segundo objetivo é promover o sistema nervoso ent?…

Acknowledgements

Gostaríamos de agradecer DA Coulter (CHOP) por nos permitir usar seu microscópio dois-fotão para adquirir as imagens 2-fótons mostrada no início do vídeo, e H. Takano por compartilhar conosco seus conhecimentos técnicos.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Medium 199   Sigma, St. Louis, MO M3769 With Earle’s salts Without L-Glutamine, Phenol Red and Sodium Bicarbonate
Sylgard   Dow Corning Corp., Midland, MI 184 silicone elastomer kit  
Insect pins used for dissection   F.S.T., Foster City, CA 26001-30  
Dumont forceps   F.S.T., Foster City, CA 11203-23 or 11200-33  
Moria MC19/B Pascheff-Wolff Spring Scissors   F.S.T., Foster City, CA 15371-92  
Pins to hold the tissue during the experiment   Seirin Corp., Shizuoka, Japan Seirin Spinex  
Collagenase VII   Sigma, St. Louis, MO C0773  
Protease IX   Sigma, St. Louis, MO P6141  
Fetal Bovine Serum   Invitrogen, Carlsbad, CA 10439-016  
PenStrep   GIBCO, BRL 15140  
L-Glutamine 100X   GIBCO, BRL 25030  
Nifedipine   Sigma, St. Louis, MO    
Di-4-ANEPPDHQ   Molecular Probes, Eugene, OR D36802  
4-Channel Stimulus Generator   Multi Channel System MCS GmbH, Reutlingen, Germany 2000 Series  
Peristaltic pump   Rainin, Woburn, MA 2-channel Dinamax RP-1  
High-speed camera   RedShirtImaging, LLC Decatur, GA NeuroCCD-SM  
1:10 demagnifier / relay lens   Optem, Qioptiq Linos, Inc., Rochester, NY    
Upright microscope   Olympus Optical Co., Tokyo, Japan BX61TRF  
Gibraltar fixed stage with motorized X-Y translator   Gibraltar, Burleigh Instruments, EXFO, Quebec, Canada PSSG–BX2  
Linear matrix electrodes   FHC, Inc., Bowdoin, ME Custom made  
Active vibration-isolation table   Halcyonics,Inc., Menlo Park, CA Micro 60  
Ultra-low-ripple feedback stabilized power supply   Kepco, Flushing, NY ATE 75-15M  
Heat filter   Schott Optical Glass, Duryea, PA KG-1  
High-Q interference filter   Chroma, Inc., Rockingham, VT HQ530/50  
Dichroic mirror   Chroma, Inc., Rockingham, VT 565 nm (50% transmission)  
Long-pass filter   Chroma, Inc., Rockingham, VT HQ572LP  
Acoustic curtains   Acoustical Surfaces, Inc. BSC-25  
Neuroplex   RedShirtImaging, Inc., Decatur, GA    
IDL   ITT Visual Information Solutions, Boulder, CO    
High-resolution CCD camera, with its own camera controller   Hamamatsu Photonics, KK, Hamamatsu City, Japan    
Frame-grabber for high-resolution camera   Data Translation, Marlboro, MA DT3120K-1  
Imaging software for high-resolution camera   Data Translation, Marlboro, MA Global Lab Image/2  

Riferimenti

  1. Costa, M. a. r. c. e. l. l. o., Furness, J. o. h. n. . B., Llewellyn-Smith, I. J., Johnson, L. e. o. n. a. r. d. . R. . in Physiology of the Gastrointestinal Tract, edited by Leonard R. , 1-1 (1987).
  2. Obaid, A. L. Spatiotemporal patterns of activity in an intact mammalian network with single-cell resolution: optical studies of nicotinic activity in an enteric plexus. J Neurosci. 19 (8), 3073-3073 (1999).
  3. Obaid, A. L., Loew, L. M., Wuskell, J. P., Salzberg, B. M. Novel naphthylstyryl-pyridinium potentiometric dyes offer advantages for neural network analysis. J. Neurosci. Methods. 134 (2), 179-179 (2004).
  4. Hirst, G. D., McKirdy, H. C. Synaptic potentials recorded from neurones of the submucous plexus of guinea-pig small intestine. J Physiol (Lond). 249 (2), 369-369 (1975).
  5. Salzberg, B. M., Barker, J., McKelvy, J. Current Methods in Cellular Neurobiology. , 139-139 (1983).
  6. Salzberg, B. M. An ultra-stable non-coherent light source for optical measurements in neuroscience and cell physiology. Journal of Neuroscience Methods. 141, 165-16 (2005).
  7. Obaid, A. L., Nelson, M. E., Lindstrom, J., Salzberg, B. M. Optical studies of nicotinic acetylcholine receptor subtypes in the guinea-pig enteric nervous system. J Exp Biol. 208 (Pt 15), 2981-2981 (2005).
  8. Obaid, A. L., Zou, D. J., Rohr, S., Salzberg, B. M. Optical recording with single cell resolution from a simple mammalian nervous system: Electrical activity in ganglia from the submucous plexus of the guinea-pig ileum. Biol. Bull. 183, 344-344 (1992).
  9. Salzberg, B. M., Davila, H. V., Cohen, L. B. Optical recording of impulses in individual neurones of an invertebrate central nervous system. Nature. 246 (5434), 508-508 (1973).

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Citazione di questo articolo
Obaid, A. L., Salzberg, B. M. Optical Recording of Electrical Activity in Guinea-pig Enteric Networks using Voltage-sensitive Dyes. J. Vis. Exp. (34), e1631, doi:10.3791/1631 (2009).

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