Summary

Quantificação de γH2AX Focos em resposta à radiação ionizante

Published: April 06, 2010
doi:

Summary

Quantificação de DNA dupla fita-estrias usando formação γH2AX como um marcador molecular tornou-se uma ferramenta valiosa na biologia da radiação. Aqui mostramos o uso de um teste de imunofluorescência para a quantificação dos focos γH2AX após a exposição das células à radiação.

Abstract

DNA dupla fita-breaks (LAP), que são induzidos por qualquer processos metabólicos endógenos ou por fontes exógenas, são uma das lesões DNA mais críticos com relação à sobrevivência e preservação da integridade genômica. Uma resposta rápida à indução de LAP é fosforilação da variante histona H2A, H2AX, na serina-139 resíduos, na altamente conservada motivo SQEY C-terminal, formando γH2AX<sup> 1</sup>. Após a indução de LAP, H2AX é rapidamente fosforilada pela fosfatidil-inosito 3-quinase (Pikk) família de proteínas, ataxia telangiectasia mutantes (ATM), subunidade proteína-quinase DNA catalítico e ATM e Rad3 relacionados (ATR)<sup> 2</sup>. Tipicamente, apenas alguns pares-base (pb) estão implicados em uma DSB, no entanto, não há amplificação de sinal significativo, dada a importância das modificações da cromatina na sinalização de danos ao DNA e reparo. Fosforilação de H2AX mediada predominantemente por ATM espalha para áreas adjacentes da cromatina, afetando aproximadamente 0,03% do total celulares H2AX por DSB<sup> 2,3</sup>. Isso corresponde a fosforilação de aproximadamente 2000 moléculas H2AX abrangendo ~ 2 Mbp regiões da cromatina em torno do local do DSB e resulta na formação de discretos focos γH2AX que podem ser facilmente visualizados e quantificados por microscopia de imunofluorescência<sup> 2</sup>. A perda de γH2AX no DSB reflete reparação, no entanto, há alguma controvérsia quanto ao que define o reparo completo da LAP, tem sido proposto que a recombinação de dois filamentos de DNA é adequada no entanto, também tem sido sugerido que restabelecimento do estado de compactação da cromatina originais é necessário<sup> 08/04</sup>. O desaparecimento de γH2AX envolve pelo menos em parte, pela desfosforilação fosfatases, fosfatase e fosfatase 2A 4C<sup> 5,6</sup>. Além disso, a remoção de γH2AX pela redistribuição envolvendo troca de histonas com H2A.Z tem sido implicado<sup> 7,8</sup>. Importante, a análise quantitativa de γH2AX focos levou a uma ampla gama de aplicações na pesquisa médica e nuclear. Aqui, nós demonstrar o método mais comumente usado de imunofluorescência para avaliação de danos no DNA inicial de detecção e quantificação de γH2AX focos em γ-irradiados aderente queratinócitos humanos<sup> 9</sup>.

Protocol

Preparação de células Queratinócitos humanos (FEP-1811) foram cultivadas em queratinócitos-Serum Médio gratuito (K-SFM; Invitrogen) suplementado com fator de crescimento epidérmico, o extrato de hipófise de bovinos e 20 mcg / ml de gentamicina, a 37 ° CO C e 5% 2. A suspensão única célula foi preparado por destacando com tripsina-EDTA (0,05% v / v) Células foram semeadas em oito bem-Lab Tek slides II MicroChamber (10.000 células / poço) e as lâminas foram i…

Discussion

Após a exposição à radiação ionizante (raios-γ), forma γH2AX focos rapidamente e os números de focos atingir um máximo entre 30-60 minutos 2. Portanto, nosso ponto de uma hora o tempo pós-irradiação reflete DSB formação inicial. Temos usado a dose de radiação clinicamente relevantes de 2 Gy para nosso experimento. No entanto, o método pode ser usado para as doses de radiação até 4 Gy para a detecção da formação inicial DSB; sobreposição significativa de focos impede a quantificaçã…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O apoio do Instituto Australiano de Ciência Nuclear e Engenharia é reconhecido. TCK foi o ganhador de prêmios AINSE. Lab Medicine epigenômico é suportado pelo National Health and Medical Research Council of Australia (566.559). LM é apoiada por Melbourne Research (University of Melbourne) e Biomedical Imaging bolsas complementares CRC. O apoio de Monash Micro Imaging (Drs. Stephen Cody e ISKA Carmichael) foi inestimável para este trabalho.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Keratinocyte-Serum Free Medium (K-SFM) Media Invitrogen 17005042 Keratinocyte media supplemented with human recombinant Epidermal Growth Factor 1-53 (EGF 1-53), and Bovine Pituitary Extract (BPE).
Lab Tek lI Chamber Slides (8-well) Chamber Slides Nunc Denmark NUN154534  
Coverslips (22x50mm) Coverslips Menzel-Gläser CS2250100  
Bovine Serum Albumin (BSA)   Sigma-Aldrich A7906 BSA (1%) is used to block any non-specific antibody binding. Primary and secondary antibodies are diluted in BSA.
PBS (without Ca2+ and Mg2+)   Invitrogen 17-517Q  
0.5% Trypsin-EDTA x10   Invitrogen 15400-054 Trypsin-EDTA (0.05%) used to detach cells from culture flasks.
Triton X-100 Reagent Sigma-Aldrich T8787 Triton X-100 (0.1%) used to permeabilise cells.
Paraformaldehyde Reagent Sigma-Aldrich 158127 Paraformaldehyde (4%) used to fix cells.
Mouse monoclonal anti-phospho histone-H2AX antibody Primary Antibody Millipore 16193 Dilution of primary antibody (1:500), in 1% BSA.
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) Secondary Antibody Invitrogen 11029 Dilution of secondary antibody (1:500), in 1% BSA.
TOPRO3 DNA Stain Invitrogen T3605 DNA stain commonly used: 4,6-diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI). Can only be used with microscopes with the appropriate excitation laser.
ProLong Gold Anti-fade solution Invitrogen P36930 Refractive index of 1.42 at 20°C.
Tissue Culture Flask, Vented Cap Culture Flask BD Falcon 353112  
Tissue Culture Dish (150x25mm) Petridish BD Falcon 353025  
Coplin Jar, glass   Grale Scientific P/L 1771-OG  
Staining Trough   Grale Scientific P/L V1991.99  
Gammacell 1000 Elite Irradiator Gamma Irradiator Nordion International Inc.    
Zeiss LSM 510 Meta Confocal Confocal Microscope      
Metamorph Software for Imaging analysis Molecular Devices, USA    

Riferimenti

  1. Rogakou, E. P., Boon, C., Redon, C., Bonner, W. M. Megabase chromatin domains involved in DNA double-strand breaks in vivo. J. Cell Biol. 146, 905-916 (1999).
  2. Bonner, W. M. Gamma H2AX and cancer. Nature Reviews Cancer. 8 (12), 957-967 (2008).
  3. Savic, V. Formation of Dynamic [gamma]-H2AX Domains along Broken DNA Strands Is Distinctly Regulated by ATM and MDC1 and Dependent upon H2AX Densities in Chromatin. Molecular Cell. 34 (3), 298-310 (2009).
  4. Downs, J. Binding of chromatin-modifying activities to phosphorylated histone H2A at DNA damage sites. Mol Cell. 16 (6), 979-990 (2004).
  5. Chowdhury, D. [gamma]-H2AX Dephosphorylation by Protein Phosphatase 2A Facilitates DNA Double-Strand Break Repair. Molecular Cell. 20 (5), 801-809 (2005).
  6. Nakada, S., Chen, G., Gingras, A., Durocher, D. PP4 is a gamma H2AX phosphatase required for recovery from the DNA damage checkpoint. EMBO Rep. 9 (10), 1019-1026 (2008).
  7. Altaf, M., Auger, A., Covic, M., Côté, J. Connection between histone H2A variants and chromatin remodeling complexes. Biochem Cell Biol. 87 (1), 35-50 (2009).
  8. Kusch, T. Acetylation by Tip60 Is Required for Selective Histone Variant Exchange at DNA Lesions. Science. 306, 2084-2087 (2004).
  9. Hurlin, P. Progression of human papillomavirus type 18-immortalized human keratinocytes to a malignant phenotype. Proc Natl Acad Sci U S A. 88 (2), 570-574 (1991).
  10. Dickey, J. H2AX: functional roles and potential applications. Chromosoma. , (2009).
check_url/it/1957?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Mah, L., Vasireddy, R. S., Tang, M. M., Georgiadis, G. T., El-Osta, A., Karagiannis, T. C. Quantification of γH2AX Foci in Response to Ionising Radiation. J. Vis. Exp. (38), e1957, doi:10.3791/1957 (2010).

View Video