Summary

(充电)酰化tRNA的使用微阵列技术水平的全基因组分析

Published: June 18, 2010
doi:

Summary

我们描述了一种用于微阵列分析的方法来确定所有的tRNA相对酰化水平<em> S。 cerivisiae。</em

Abstract

tRNA的氨酰化,或充电,水平可以迅速改变细胞内的环境[1]。 tRNA的变化,在原核和真核细胞收费水平,导致翻译调控,这是一个重大的应激反应的细胞机制。熟悉的例子是在严格的响应<em> E。大肠杆菌</em>和酵母中的GCN2压力反应途径([2-6])。最近的工作IN<em> E。大肠杆菌</em><em> S。酵母</em>表明,tRNA的收费模式是高度动态的,取决于细胞[1,6,7]的压力。高度动态的变量的性质,tRNA的收费使得有必要在基因组的规模确定tRNA的收费水平的变化,以充分阐明细胞反应环境变化。在这次审查中,我们目前的方法同时测量所有的tRNA相对充电水平<em> S。酵母</em>。酵母虽然这里介绍的协议,这个协议已经成功地应用在各种各样的生物体,包括确定相对的收费水平<em> E。大肠杆菌</em>和人类细胞培养[7,8]。

Protocol

第1部分:总收取的tRNA分离在2000年的RFC台式离心机在5分钟沉淀细胞。相当于600 1细胞的OD应该产生至少1μg总RNA和程序建议至少30微克。 悬浮细胞裂解缓冲液中,0.3米的缓冲 NA +醋酸(pH值4.5)和10 mM EDTA。 NA +醋酸饱和酚/氯仿(pH值4.5)的三倍为30秒同等体积的涡一定要始终保持在冰样本之间震荡。缓冲醋酸可准备从NaOAC和醋酸,而醋酸饱和酚/氯仿可以准备9份酚/氯仿混合1份5个M醋酸缓冲液(pH值4.5)。 注:总RNA的分离是轻度酸性条件下和在冰上进行,以避免收取的tRNA deacylation。 离心15分钟,在18600的RFC 4 ° C。取出水层和执行另一个醋酸饱和酚/氯仿抽提。 第二萃取沉淀后加入2.7倍体积的乙醇​​和30分钟,离心18600 RFC在4 ° C的RNA RNA的悬浮颗粒在裂解缓冲液,然后用乙醇沉淀的第二次。 最后,重悬的RNA在含有10 mM的醋酸缓冲液(pH 4.5)和1 mM EDTA的后续治疗解决方案。样本可稳定储存于-80 ° C,大约两个星期。更长的储存,不建议作为部分收取的tRNA将开始deacylate。 第2部分:tRNA的标准准备热E。大肠杆菌 tRNA的标准10.5微米至85 ° C在45毫米的Tris – CL pH值7.5 2分钟。以管为3分钟,在室温下离开。 MgCl 2的一个终浓度为20毫米,并培育在37℃5分钟。 所以最终的反应含有氯化钾10毫米,5微米的tRNA,60毫米的Tris – HCl(pH值7.5),12.5毫米氯化镁2,3 mM的二硫苏糖醇,1.5毫米ATP,精胺1毫米,1毫米各自添加合成反应混合物氨基酸,4.2单位/μL 大肠杆菌大肠杆菌氨酰- tRNA合成酶混合。 37 ° 15分钟。 加入同等体积的0.5 M的醋酸(pH值4.5)缓冲和醋酸饱和酚/ 氯仿提取,在pH值4.5 。 tRNA的标准2.7倍体积的乙醇​​,离心沉淀在18600 RFC 30分钟,在4 ° C 重悬在50毫米缓冲醋酸(pH值4.5)与1毫米EDTA和储存在-80 ° C至一个月标准。 第3部分:Cy3/Cy5 tRNA的标签对于收取的tRNA样品与0.066μM孵化总RNA E.浓度为0.1微克/μL 大肠杆菌 tRNA的标准(即0.67 pmole标准每人μg总RNA)和100毫米的缓冲醋酸(pH值4.5)在室温下30分钟的50毫米NaIO4存在。对于控制总tRNA的样品使用50毫米NaIO4地方氯化钠。请记住只稀释与缓冲的解决方案,以保持充电的RNA。 解渴的反应,添加葡萄糖100毫米,在室温下孵育5分钟。 为了从样本中删除任何剩余的NaIO4执行缓冲区交换使用G25离心柱。为了达到最佳效果平衡列运行通过它的200毫米的缓冲醋酸缓冲液(pH值4.5)之前申请您的样品。 样品缓冲醋酸(pH值4.5)的133毫米和NaCl终浓度加入到终浓度为66毫米和2.7倍体积的乙醇​​沉淀。偶尔氧化样品可能需要第二次降水。这是必要的,只有当颗粒看起来明显高于同一样品的控制颗粒不同。例如,一个显着更大的或更分散的颗粒。如果第二个需要乙醇沉淀重新悬浮颗粒在50 mM的醋酸缓冲液pH值4.5,氯化钠和200毫米,前增加乙醇。 deacylation tRNA的样品悬浮于50毫米的Tris – HCl(pH值)在37 ° C孵育30 min。反应是同等体积的50 mM的醋酸缓冲液(pH 4.5)和100 mM氯化钠此外瓦解。沉淀用2.7倍体积的乙醇​​。 RNA是经过沉淀,悬浮在水中〜1μg/μL的。琼脂糖凝胶上运行,在控制和氧化样品应检查RNA的质量。 要连接到tRNA的0.1微克/μLdeacylated RNA荧光寡核苷酸标记孵育1X连接酶缓冲液,15%二甲基亚砜,4微米Cy3标记或Cy5的含寡核苷酸,0.5单位/μLT4 DNA连接酶和酵母外磷酸酶(5000单位/μL16)° C过夜(超过16小时)。 EXO -磷酸仅适用于从酵母中获得的样本是必要的和可omitted如果这个协议是用于大肠杆菌大肠杆菌或人体标本。 结扎后的样品混合50 mM的KOAc(pH值7),200毫米氯化钾,并与等体积酚/氯仿提取,然后用4卷。水相萃取后,用乙醇沉淀RNA的准备工作和在水中的悬浮约0.1μg/μL的。 连接效率,可以运行5-10%的样本含7M尿素的12%聚丙烯酰胺凝胶,并用荧光凝胶扫描仪观察评估。此页的分析也是有用的,确定氧化和控制芯片杂交所需的样本量。一个良好结扎结果表明,〜10%或更多的Cy3/Cy5含有寡核苷酸酶的tRNA。对于良好的标记效率的样品,每个样品的总RNA 0.1-0.5微克用于阵列杂交。 第4部分:杂交和基因芯片分析杂交芯片幻灯片之前在蒸馏水中煮沸1-2分钟,以去除未结合的寡核苷酸。 Cy3/Cy5标记的样品相结合,与140μL的杂交缓冲液和鲑鱼的精子DNA的终浓度为140微克/毫升的poly(A)到终浓度为70微克/毫升。 杂交方案(表1),运行自动数组hybridizer。 tRNA的工作,这是强烈建议使用,因为人工杂交产生高的背景自动杂交机。 程序完成后手动用洗3解决方案的幻灯片至少两次轻轻摇晃3-5分钟,在50 ml锥形管。 幻灯片可以干离心5-10分钟,在较低的速度,小于200的RFC。重要的是保持光的幻灯片,因为暴露在光线下会漂白荧光团。 幻灯片干燥后,他们应该被扫描立即以达到最佳的效果,如果必要的话,他们可以几天在干燥的室温避光的地方保存。幻灯片可以扫描在图像质量没有明显退化的2-3倍。 第5部分:代表结果当孤立的总RNA样品应产生一个非常干净的频谱与外径 260: 外径 280接近2的比例。应该没有检测的蛋白质或酚污染。 1%琼脂糖凝胶上运行时,强大的tRNA的频段应与其他可能的核酸生物之间的不同波段观察。氧化后,一个干净的tRNA的频段应得到遵守。如果样品是明显比其他样品或涂抹观察弱,样品不应该被用来对芯片。微阵列应该有非常低的背景,这是一个幅度低于最弱的tRNA的探头。高的背景通常是由于在洗涤步骤中的问题。这通常是固定的准备新鲜的清洗解决方案,并彻底清洗所有设备和管道,以去除残留和SDS沉淀。 步骤详情 O型环空调 75℃,2分钟介绍样本 60℃ 变性样品 90℃,5分钟杂交 60℃,16H 洗1 50℃,流量10秒按住20秒洗2 42℃,流量10秒按住20秒洗3 42℃,流量10秒按住20秒 表1:杂交协议

Discussion

我们提出了一个方法,同时确定在基因组范围内的所有tRNA的收费水平相对。这里介绍的协议进行了优化, S. 酵母 ,它也被成功地用来衡量在大肠杆菌 tRNA的充电配置文件大肠杆菌和人类细胞培养。它可以修改,以适应任何生物体与已知的基因组序列(允许所有的tRNA基因的注释),只要可以得到总收取的tRNA。

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

酵母泛实验室工作是由一个从日本味之素公司,日本和美国国立卫生培训资助T32GM007183 – 33研究院授予。我们感谢酵母项目的长期合作在美国印第安纳大学医学院的罗纳德WEK博士。我们也感谢金佰利Dittmar博士充电芯片的方法开发的tRNA。

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Microspin G-25 columns   GE Healthcare 25-5325-01  
E. coli tRNAPhe   Sigma-Aldrich R3143  
E. coli tRNATyr   Sigma-Aldrich R0258  
E. coli tRNALys   Sigma-Aldrich R6018  
E. coli aminoacyl-tRNA synthetases   Sigma-Aldrich A3646  
T4 DNA ligase   USB 70042X  
PerfectHyb Plus   Sigma-Aldrich H-7033  
Hyb4 station   Digilab    
GenePix 4000B scanner   Axon instruments    
GenePix 6.0   Axon instruments    

Riferimenti

  1. Zaborske, J. M. Genome-wide analysis of tRNA charging and activation of the eIF2 kinase Gcn2p. J Biol Chem. 284 (37), 25254-25267 (2009).
  2. Wek, S. A., Zhu, S., Wek, R. C. The histidyl-tRNA synthetase-related sequence in the eIF-2 alpha protein kinase GCN2 interacts with tRNA and is required for activation in response to starvation for different amino acids. Mol Cell Biol. , 4497-4506 (1995).
  3. Hinnebusch, A. G. Translational Regulation of GCN4 and the General Amino Acid Control of Yeast. Annual Review of Microbiology. 59 (1), 407-450 (2005).
  4. Braeken, K. New horizons for (p)ppGpp in bacterial and plant physiology. Trends in Microbiology. 14 (1), 45-54 (2006).
  5. Dong, J. Uncharged tRNA Activates GCN2 by Displacing the Protein Kinase Moiety from a Bipartite tRNA-Binding Domain. Molecular Cell. 6 (2), 269-279 (2000).
  6. Cashel, M., Neidhardt, F. C. The Stringent Response. Escherichia coli and Salmonella: cellular and molecular biology. , 1458-1496 (1996).
  7. Dittmar, K. A. Selective charging of tRNA isoacceptors induced by amino-acid starvation. EMBO Rep. 6 (2), 151-157 (2005).
  8. Zhou, Y. High levels of tRNA abundance and alteration of tRNA charging by bortezomib in multiple myeloma. Biochem Biophys Res Commun. 385 (2), 160-164 (2009).
check_url/it/2007?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Zaborske, J., Pan, T. Genome-wide Analysis of Aminoacylation (Charging) Levels of tRNA Using Microarrays. J. Vis. Exp. (40), e2007, doi:10.3791/2007 (2010).

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