Summary

RNAi Вмешательство инъекций в дсРНК Drosophila Эмбрионы

Published: April 11, 2011
doi:

Summary

РНК-интерференция была доказана очень эффективно анализировать функции генов в<em> Drosophila</em> Трахеи развития. Подробное протокол, используемый Цзян лаборатории, чтобы придать дсРНК в летают эмбрионов нокдауна экспрессии генов иллюстрируется. Эта технология обладает потенциалом для скрининга генов, необходимых для развития тканей и органов в<em> Drosophila</em>.

Abstract

Генетический скрининг является одним из самых мощных методов, доступных для получения взглянуть на сложный биологический процесс, 1. За эти годы много улучшений и инструментов для генетических манипуляций стали доступны у дрозофилы 2. Вскоре после первоначального открытия Фри и Мелло 3 видно, что двухцепочечной РНК могут быть использованы для нокдаун активности отдельных генов в Caenorhabditis Элеганс, РНК-интерференция (RNAi) было показано, что обеспечивает мощный обратный генетический подход к анализу функций генов в развитии дрозофилы орган 4, 5.

Многие органы, в том числе легких, почек, печени, сосудистой системы, состоят из трубчатых разветвленных сетей, транспорта жизненно важные жидкости или газы, 6, 7. Анализ дрозофилы трахеи образование обеспечивает отличную модель системы для изучения морфогенеза других трубчатых органов 8. Беркли дрозофилы генома проекта выявил сотни генов, которые выражаются в трахеи системы. Для изучения молекулярных и клеточных механизмов трубки образования, задача состоит в том, чтобы понять роль этих генов в развитии трахеи. Здесь мы описали подробный метод дсРНК инъекции в эмбрион дрозофилы нокдаун отдельных экспрессии генов. Мы успешно сбил эндогенных dysfusion (дисфункции) экспрессии генов с помощью инъекции дсРНК. Дисфункции является bHLH-PAS белка выражается в клетках трахеи синтеза, а это необходимо для трахеи филиала слияние 9, 10. дисфункции RNAi полностью устранить дисфункции выражение и в результате трахеи дефект синтеза. Этот сравнительно простой метод обеспечивает инструментом для выявления генов requried для tissure и развития органов у дрозофилы.

Protocol

1. Эмбрион коллекции Настройка клетки при 25 ° С с использованием 2-4 дневных ш 1118 пластин сок flies.Grape меняются каждый час в течение суток для синхронизации сбора яиц в течение 1-2 дней до сбора Сбор эмбрионов в 1 час при 25 ° С Отрежьте прямоугольный кусок виноградного со…

Discussion

Метод дсРНК инъекции присутствует здесь дает очень чувствительный и быстрый анализ функций генов дрозофилы трахеи развития. Этот метод потенциально может быть применена для анализа функции гена и для других тканей и органов развитии.

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Стивена Экипажи для dysfusion кДНК, DYS антител и W 1118 мух.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Halocarbon oil 700   Sigma-Aldrich H8898  
Picospritzer III picopump   Parker Precision Fluidics 051-0500-900  
Micro-pipettes   Fisher 21170M  
Microloaders   Eppendorf 930001007  

Riferimenti

  1. St Johnston, D., Nusslein-Volhard, C. The origin of pattern and polarity in the Drosophila embryo. Cell. 68, 201-219 (1992).
  2. Venken, K. J., Bellen, H. J. Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster. Nat. Rev. Genet. 6, 167-178 (2005).
  3. Fire, A. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  4. Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway. Cell. 95, 1017-1026 (1998).
  5. Misquitta, L., Paterson, B. M. Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 1451-1456 (1999).
  6. Horowitz, A., Simons, M. Branching morphogenesis. Circ. Res. 103, 784-795 (2008).
  7. Hogan, B. L., Kolodziej, P. A. Organogenesis: molecular mechanisms of tubulogenesis. Nat. Rev. Genet. 3, 513-523 (2002).
  8. Ghabrial, A., Luschnig, S., Metzstein, M. M., Krasnow, M. A. Branching morphogenesis of the Drosophila tracheal system. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 19, 623-647 (2003).
  9. Jiang, L., Crews, S. T. Dysfusion transcriptional control of Drosophila tracheal migration, adhesion, and fusion. Mol. Cell. Biol. 26, 6547-6556 (2006).
  10. Jiang, L., Crews, S. T. The Drosophila dysfusion basic helix-loop-helix (bHLH)-PAS gene controls tracheal fusion and levels of the trachealess bHLH-PAS protein. Mol. Cell. Biol. 23, 5625-5637 (2003).

Play Video

Citazione di questo articolo
Iordanou, E., Chandran, R. R., Blackstone, N., Jiang, L. RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (50), e2477, doi:10.3791/2477 (2011).

View Video