Summary

Bröst Transplantation av stromaceller och celler carcinoma in C57BL/6J Möss

Published: August 12, 2011
doi:

Summary

I den här rapporten visar vi ett system för att isolera och odla celler givare från mus juvret och orthotopically transplantera dessa celler i mottagarländerna möss att analysera stromaceller: epiteliala interaktioner under juvertumör utveckling.

Abstract

Inverkan av stromaceller, bland andra fibroblaster på bröst tumörprogression är väl dokumenterade med hjälp av musmodeller, särskilt genom transplantation av stromaceller och epitelceller i mjölkkörtlar hos möss. Aktuella transplantation modeller innebär ofta användning av nedsatt immunförsvar möss på grund av olika genetiska bakgrunder stromaceller och epitelceller. Extracellulär matriser används ofta för att bädda in två olika celltyper för konsekvent cell-cell interaktioner, men omfattar användning av Matrigel eller råtta svans kollagen, som är immunogena substrat. Avsaknaden av fungerande T-celler från immunsupprimerade möss förhindrar korrekt bedömning av stromaceller om juvertumör progression in vivo, med viktiga konsekvenser för läkemedelsutveckling och effekt. Dessutom nedsatt immunförsvar möss är dyra, svåra att föda upp och kräver särskild omsorg villkor. För att övervinna dessa hinder, har vi utvecklat ett förhållningssätt till orthotopically transplantation stromaceller celler och epitelceller i möss med samma genetiska bakgrunden för att framkalla konsekvent tumörbildning. Detta system innebär avverkning normalt, cancer förknippas fibroblaster, PyVmT bröst celler cancer och kollagen från givare C57BL/6J möss. Cellerna är sedan inbäddade i kollagen och transplanteras i inguinal mjölkkörtlar hos kvinnliga C57BL/6J möss. Transplantation av PyVmT celler ensam bilda palpabla tumörer 30-40 dagar efter transplantation. Endpoint analys på 60 dagar visar att co-transplantation med fibroblaster ökar juvertumör tillväxt jämfört med PyVmT celler transplanterade ensam. Medan celler och matris från C57BL/6J möss användes i dessa studier, kan isolering av celler och matrix och transplantation tillvägagångssätt användas mot möss med olika genetisk bakgrund visar mångsidighet. Sammanfattningsvis kan detta system användas för att undersöka molekylära interaktioner mellan stromaceller och epitelceller, och övervinner kritiska begränsningar hos immunsupprimerade musmodeller.

Protocol

1. Isolering och utvinning av givare kollagen från C57BL/6J möss Offra mogna normala kvinnliga C57BL/6J möss med godkända IACUC metoder. Skörda svansar och njuta i 70% etanol i 45 minuter för att sterilisera vävnader. Torka svansar med silkespapper, linda i aluminiumfolie. Förvara svansar i -20 ° C tills det behövs. Placera svansar i en steril miljö som ett laminärt flöde huva. Använda sax, dela huden vid svansroten och dra bort från svansen. Ta bort från 0,5 till 1 cm frå…

Discussion

Den funktionella bidrag fibroblaster i tumörprogression har visats genom transplantation modeller, där cancer förknippas fibroblaster samarbete transplanteras med godartade bröst epitelceller leder till ökad tumörtillväxt och invasiv 5. Konventionella transplantation metoder har inblandade användning av SCID eller nakna möss att samarbeta transplantation stromaceller och epitelceller från olika genetiska mus bakgrunder eller olika arter. Nedsatt immunförsvar möss saknar fungerande T-celler, som sp…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta projekt finansieras genom av NIH / NCI licensnummer R00 CA127357 och University of Kansas Cancer Center Endowment.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
C57BL/6N mice Harlan N/A  
MMTV-PyVmT transgenic mice Jackson laboratories 002374  
Fetal Bovine Serum Fisher SH3039603PR  
DMEM VWR 10000113873  
Penicillin/streptomycin Fisher MT-30-001  
amphotericin fisher BP2645-20  
Amicon filtration columns ultracel 50k Millipore UFC905008  
Tubes for Beckman TI rotor Beckman 355618  
Rat tail collagen Fisher CB 40236  
10x EBSS Sigma Aldrich E7510-100ML  
Trypsin 1X, 0.25% in HBSS w/o Calcium and Magnesium Fisher MT-25-050-CI  
Glacial acetic acid Fisher A491-212  
Coomasie blue Fisher BP101 25  
Trypsin Sigma Aldrich T3924-100ml  
Collagenase A Sigma AldrichC0130-50    
hyalronidase Sigma Aldrich H3884  
DNase Sigma Aldrich D5025  
Kaleidoscope Protein standard Biorad 1610375  
Glass slides Fisher 12545-78  
Glass coverslips VWR 101400-042  
Vimentin antibody S-20 Santa Cruz Biotechnology SC-7558  
α-smooth muscle actin antibody Abcam ab5694  
CK14 antibody Santa Cruz Biotechnology sc-53253  
CK18 antibody Abcam ab668  
DAPI Sigma Aldrich D9542  
Anti-mouse biotinylated Vector laboratories BA9200 Distributed through Fisher
Anti-mouse-alexa-568 Invitrogen A10037  
Anti-mouse- alexa-488 Invitrogen A11001  
Streptavidin- alexa-488 Invitrogen S11226  
DAPI Invitrogen D21490  
Prolong antifade Invitrogen P-36930  
Surgical scissors Fine Science Tools 91400-12  
Fine spring scissors Fine Science Tools 15000-02  
Blunt forceps Fine Science Tools 11002-12  
# 5 fine forceps Fine Science Tools 11251-10  
Gut chromic suture Fisher NC9326254  
Glass Pasteur pipet Fisher 22-042-815  
Ethanol Fisher A406P 4  
betadine fisher NC9386574  
Wound clips Fisher 12032-07  
Wound staple Fisher 12031-07  

Riferimenti

  1. Hayward, S., Haughney, P. C., Rosen, M. A., Greulich, K. M., Weier, H. U., Dahiya, R., Cunha, G. R. Interactions between adult human prostatic epithelium and rat urogenital sinus mesenchyme in a tissue recombination model. Differentiation. 63, 131-131 (1998).
  2. Cunha, G., Hom, Y. K., Young, P., Brody, J., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  3. Ethier, S. P., Ammerman, C. A., Dziubinski, M. L., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  4. Medina, D., Kittrell, F., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  5. Kalluri, R., Zeisberg, M. Fibroblasts in cancer. Nat Rev Cancer. 6, 392-401 (2006).
  6. DeNardo, D. G., Johansson, M., Coussens, L. M. Immune cells as mediators of solid tumor metastasis. Cancer Metastasis. 27, 11-18 (2008).
  7. Naito, M. Macrophage differentiation and function in health and disease. Pathol Int. 58, 143-155 (2008).
  8. Firestein, G. S. The T cell cometh: interplay between adaptive immunity and cytokine networks in rheumatoid arthritis. J Clin Invest. 114, 471-474 (2004).
  9. Cheng, N., Chytil, A., Shyr, Y., Joly, A., Moses, H. L. Enhanced Hepatocyte Growth Factor Signaling by Type II Transforming Growth Factor-{beta} Receptor Knockout Fibroblasts Promotes Mammary Tumorigenesis. Cancer Res. 67, 4869-4877 (2007).
  10. Qiu, T. H. Global expression profiling identifies signatures of tumor virulence in MMTV-PyMT-transgenic mice: correlation to human disease. Cancer Res. 64, 5973-5981 (2004).
  11. Schaffhausen, B. S., Roberts, T. M. Lessons from polyoma middle T antigen on signaling and transformation: A DNA tumor virus contribution to the war on cancer. Virology. 384, 304-316 (2009).
  12. Cepko, C. L. Immortalization of neural cells via retrovirus-mediated oncogene transduction. Annu Rev Neurosci. 12, 47-65 (1989).
  13. O’Hare, M. J. Conditional immortalization of freshly isolated human mammary fibroblasts and endothelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 646-651 (2001).
  14. Shay, J. W., Wright, W. E., Werbin, H. Defining the molecular mechanisms of human cell immortalization. Biochim Biophys Acta. 1072, 1-7 (1991).
  15. Gudjonsson, T., Villadsen, R., Ronnov-Jessen, L., Petersen, O. W. Immortalization protocols used in cell culture models of human breast morphogenesis. Cell Mol Life Sci. 61, 2523-2534 (2004).
  16. Raschke, W. C., Baird, S., Ralph, P., Nakoinz, I. Functional macrophage cell lines transformed by Abelson leukemia virus. Cell. 15, 261-267 (1978).
  17. Shen, G. Immortalization of endothelial cells differentiated from mouse embryonic stem cells. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 35, 218-228 (2002).
  18. Wang, S. J., Greer, P., Auerbach, R. Isolation and propagation of yolk-sac-derived endothelial cells from a hypervascular transgenic mouse expressing a gain-of-function fps/fes proto-oncogene. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 32, 292-299 (1996).
  19. Tiede, B. J., Owens, L. A., Li, F., DeCoste, C., Kang, Y. A novel mouse model for non-invasive single marker tracking of mammary stem cells in vivo reveals stem cell dynamics throughout pregnancy. PLoS One. 4, e8035-e8035 (2009).
  20. Guzman, R. Intracarotid injection of fluorescence activated cell-sorted CD49d-positive neural stem cells improves targeted cell delivery and behavior after stroke in a mouse stroke model. Stroke. 39, 1300-1306 (2008).
  21. Duda, D. G. Differential transplantability of tumor-associated stromal cells. Cancer Res. 64, 5920-5924 (2004).
check_url/it/2716?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Cheng, N., Lambert, D. L. Mammary Transplantation of Stromal Cells and Carcinoma Cells in C57BL/6J Mice. J. Vis. Exp. (54), e2716, doi:10.3791/2716 (2011).

View Video