Summary

Молочные трансплантации стромальных клеток и клетки карциномы у мышей C57BL/6J

Published: August 12, 2011
doi:

Summary

В этом докладе, мы демонстрируем системы, чтобы изолировать и культуры донорских клеток от мышей молочной железы, и orthotopically трансплантации этих клеток мышам-получателей, чтобы проанализировать стромальных: эпителиальных взаимодействий в молочных развития опухоли.

Abstract

Влиянием стромальных клеток, включая фибробласты на молочные прогрессии опухоли были хорошо документированы с помощью мыши моделей, в частности, путем трансплантации стромальных клеток и клеток эпителия молочной железы мышей. Современные модели трансплантации часто связаны с использованием иммунитетом мышей из-за различных генетических особенностей, характерных для клетки стромы и эпителиальных клеток. Внеклеточной матрицы часто используется для внедрения двух различных типов клеток для последовательного межклеточных взаимодействий, но связаны с использованием Матригель или крысы хвост коллагена, которые иммуногенных субстратов. Отсутствие функциональной Т-клеток от мышей иммунитетом предотвращает точную оценку стромальных клеток опухоли молочной железы на прогрессию в живом организме, что имеет важные последствия на развитие и эффективность лекарств. Более того, ослабленным иммунитетом мышей являются дорогостоящими, трудно породы и требуют особых условий ухода. Чтобы преодолеть эти препятствия, мы разработали подход к orthotopically трансплантации стромальных клеток и эпителиальных клеток мышам с того же генетического фона, чтобы вызвать последовательное формирование опухоли. Эта система включает в себя уборка нормальная, рак связаны фибробластов, PyVmT клетки молочной железы рак и коллаген-доноров мышам C57BL/6J. Затем клетки встроенных в коллагене и пересадить в паховых молочных желез самок мышей C57BL/6J. Трансплантация PyVmT клетки только форма ощутимой опухоли 30-40 дней после пересадки. Endpoint анализ на 60 дней показывает, что совместное трансплантации фибробластов усиливает рост опухоли молочной сравнению с PyVmT клетки трансплантировали в одиночку. Хотя клетки и матрицы от мышей C57BL/6J были использованы в этих исследованиях, изоляции клеток и матричных и трансплантации подход может быть применен к мышей от различных генетических фоны демонстрируя универсальность. Таким образом, эта система может быть использована для исследования молекулярных взаимодействий между клетками стромы и эпителиальных клеток, и преодолевает ограничения критических с ослабленным иммунитетом модели мыши.

Protocol

1. Выделение и извлечение доноров коллагена от мышей C57BL/6J Жертва зрелых нормальных самок мышей C57BL/6J с использованием утвержденных IACUC методами. Урожай хвосты и замочить в 70% этаноле в течение 45 минут для стерилизации тканей. Сухие хвосты с папиросную бумагу, завернуть в алюми…

Discussion

Функциональный вклад фибробластов в опухолевой прогрессии была продемонстрирована на основе моделей трансплантации, в которых рак связаны фибробластов совместно с пересаженной доброкачественные эпителиальные клетки результатов в увеличении роста опухоли и инвазивности 5. Тр…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Этот проект был профинансирован через НИЗ / NCI номер гранта R00 CA127357 и Канзасского университета онкологический центр фонда.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
C57BL/6N mice Harlan N/A  
MMTV-PyVmT transgenic mice Jackson laboratories 002374  
Fetal Bovine Serum Fisher SH3039603PR  
DMEM VWR 10000113873  
Penicillin/streptomycin Fisher MT-30-001  
amphotericin fisher BP2645-20  
Amicon filtration columns ultracel 50k Millipore UFC905008  
Tubes for Beckman TI rotor Beckman 355618  
Rat tail collagen Fisher CB 40236  
10x EBSS Sigma Aldrich E7510-100ML  
Trypsin 1X, 0.25% in HBSS w/o Calcium and Magnesium Fisher MT-25-050-CI  
Glacial acetic acid Fisher A491-212  
Coomasie blue Fisher BP101 25  
Trypsin Sigma Aldrich T3924-100ml  
Collagenase A Sigma AldrichC0130-50    
hyalronidase Sigma Aldrich H3884  
DNase Sigma Aldrich D5025  
Kaleidoscope Protein standard Biorad 1610375  
Glass slides Fisher 12545-78  
Glass coverslips VWR 101400-042  
Vimentin antibody S-20 Santa Cruz Biotechnology SC-7558  
α-smooth muscle actin antibody Abcam ab5694  
CK14 antibody Santa Cruz Biotechnology sc-53253  
CK18 antibody Abcam ab668  
DAPI Sigma Aldrich D9542  
Anti-mouse biotinylated Vector laboratories BA9200 Distributed through Fisher
Anti-mouse-alexa-568 Invitrogen A10037  
Anti-mouse- alexa-488 Invitrogen A11001  
Streptavidin- alexa-488 Invitrogen S11226  
DAPI Invitrogen D21490  
Prolong antifade Invitrogen P-36930  
Surgical scissors Fine Science Tools 91400-12  
Fine spring scissors Fine Science Tools 15000-02  
Blunt forceps Fine Science Tools 11002-12  
# 5 fine forceps Fine Science Tools 11251-10  
Gut chromic suture Fisher NC9326254  
Glass Pasteur pipet Fisher 22-042-815  
Ethanol Fisher A406P 4  
betadine fisher NC9386574  
Wound clips Fisher 12032-07  
Wound staple Fisher 12031-07  

Riferimenti

  1. Hayward, S., Haughney, P. C., Rosen, M. A., Greulich, K. M., Weier, H. U., Dahiya, R., Cunha, G. R. Interactions between adult human prostatic epithelium and rat urogenital sinus mesenchyme in a tissue recombination model. Differentiation. 63, 131-131 (1998).
  2. Cunha, G., Hom, Y. K., Young, P., Brody, J., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  3. Ethier, S. P., Ammerman, C. A., Dziubinski, M. L., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  4. Medina, D., Kittrell, F., Asch, B. B., Ip, M. M. . Methods in Mammary Gland Biology. , (2000).
  5. Kalluri, R., Zeisberg, M. Fibroblasts in cancer. Nat Rev Cancer. 6, 392-401 (2006).
  6. DeNardo, D. G., Johansson, M., Coussens, L. M. Immune cells as mediators of solid tumor metastasis. Cancer Metastasis. 27, 11-18 (2008).
  7. Naito, M. Macrophage differentiation and function in health and disease. Pathol Int. 58, 143-155 (2008).
  8. Firestein, G. S. The T cell cometh: interplay between adaptive immunity and cytokine networks in rheumatoid arthritis. J Clin Invest. 114, 471-474 (2004).
  9. Cheng, N., Chytil, A., Shyr, Y., Joly, A., Moses, H. L. Enhanced Hepatocyte Growth Factor Signaling by Type II Transforming Growth Factor-{beta} Receptor Knockout Fibroblasts Promotes Mammary Tumorigenesis. Cancer Res. 67, 4869-4877 (2007).
  10. Qiu, T. H. Global expression profiling identifies signatures of tumor virulence in MMTV-PyMT-transgenic mice: correlation to human disease. Cancer Res. 64, 5973-5981 (2004).
  11. Schaffhausen, B. S., Roberts, T. M. Lessons from polyoma middle T antigen on signaling and transformation: A DNA tumor virus contribution to the war on cancer. Virology. 384, 304-316 (2009).
  12. Cepko, C. L. Immortalization of neural cells via retrovirus-mediated oncogene transduction. Annu Rev Neurosci. 12, 47-65 (1989).
  13. O’Hare, M. J. Conditional immortalization of freshly isolated human mammary fibroblasts and endothelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 646-651 (2001).
  14. Shay, J. W., Wright, W. E., Werbin, H. Defining the molecular mechanisms of human cell immortalization. Biochim Biophys Acta. 1072, 1-7 (1991).
  15. Gudjonsson, T., Villadsen, R., Ronnov-Jessen, L., Petersen, O. W. Immortalization protocols used in cell culture models of human breast morphogenesis. Cell Mol Life Sci. 61, 2523-2534 (2004).
  16. Raschke, W. C., Baird, S., Ralph, P., Nakoinz, I. Functional macrophage cell lines transformed by Abelson leukemia virus. Cell. 15, 261-267 (1978).
  17. Shen, G. Immortalization of endothelial cells differentiated from mouse embryonic stem cells. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao. 35, 218-228 (2002).
  18. Wang, S. J., Greer, P., Auerbach, R. Isolation and propagation of yolk-sac-derived endothelial cells from a hypervascular transgenic mouse expressing a gain-of-function fps/fes proto-oncogene. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 32, 292-299 (1996).
  19. Tiede, B. J., Owens, L. A., Li, F., DeCoste, C., Kang, Y. A novel mouse model for non-invasive single marker tracking of mammary stem cells in vivo reveals stem cell dynamics throughout pregnancy. PLoS One. 4, e8035-e8035 (2009).
  20. Guzman, R. Intracarotid injection of fluorescence activated cell-sorted CD49d-positive neural stem cells improves targeted cell delivery and behavior after stroke in a mouse stroke model. Stroke. 39, 1300-1306 (2008).
  21. Duda, D. G. Differential transplantability of tumor-associated stromal cells. Cancer Res. 64, 5920-5924 (2004).

Play Video

Citazione di questo articolo
Cheng, N., Lambert, D. L. Mammary Transplantation of Stromal Cells and Carcinoma Cells in C57BL/6J Mice. J. Vis. Exp. (54), e2716, doi:10.3791/2716 (2011).

View Video