Summary

Stamcelletransplantation i en In vitro Simuleret Iskæmi / reperfusion Model

Published: November 05, 2011
doi:

Summary

Vi viser, hvordan du opretter en<em> In vitro</em> Iskæmi / reperfusion model og hvordan man kan vurdere effekten af ​​stamcellebehandling på postischemic hjerteceller.

Abstract

Stamcelletransplantation protokoller er at finde deres vej ind i klinisk praksis 1,2,3. Kom i bedre resultater, hvilket gør de protokoller mere robust, og finde nye kilder til implantable celler er i fokus i nyere forskning 4,5. Undersøgelse af effektiviteten af celleterapier er ikke en let opgave, og nye værktøjer er nødvendige for at undersøge de mekanismer, der er involveret i behandlingsprocessen 6. Vi har designet en forsøgsprotokol af iskæmi / reperfusion for at tillade observation af cellulære forbindelser og endda subcellulære mekanismer under iskæmi / reperfusion skade og efter stamcelletransplantation, og at evaluere effekten af ​​celleterapi. H9c2 cardiomyoblast celler blev placeret på cellekultur plader 7,8. Iskæmi blev simuleret med 150 minutter i en glukose frit medie med ilt niveau under 0,5%. Derefter var normale medier og ilt niveauer genindført at simulere reperfusion. Efter ilt glukose afsavn,de beskadigede celler blev behandlet med transplantation af mærket menneskelige knoglemarv afledt mesenchymale stamceller ved at tilføje dem til kulturen. Mesenchymale stamceller er foretrukket i kliniske forsøg, fordi de er let tilgængelige med minimal invasiv kirurgi, nemt kan udvides og autolog. Efter 24 timers co-dyrkning, blev cellerne farvet med calcein og ethidium-homodimer at skelne mellem levende og døde celler. Denne opsætning gav os mulighed for at undersøge intercellulære forbindelser ved hjælp af konfokal fluorescens mikroskopi og at kvantificere overlevelsesraten for postischemic celler ved flowcytometri. Konfokal mikroskopi viste samspillet mellem de to cellepopulationer såsom celle fusion og dannelsen af ​​intercellulære nanorør. Flowcytometri analyse viste 3 klynger af beskadigede celler, som kan plottes på en graf og analyseret statistisk. Disse befolkninger kan undersøges separat og konklusioner, der kan trækkes på disse data om effektiviteten af ​​den simuleredeterapeutiske tilgang.

Protocol

1. Forberedelse H9c2 cardiomyoblast celler H9c2 rotte cardiomyoblasts blev indhentet fra ATCC (Wesel, Tyskland) og udvidet i høj glukose (4,5 g / L) DMEM med 10% føtalt bovint serum, 4 mM L-glutamin, 100 E / ml penicillin og 100 mg / ml streptomycin. Den H9c2 myoblast cellelinje er afledt af embryonale rotte hjertet, er det brugt som en in vitro model for både skelet-og hjertemuskulaturen 8,9. Forbered 12 brønds plade af H9c2 celler: Fje…

Discussion

Det viste protokollen er en in vitro tilgang til det langt mere komplekse spørgsmål om stamcelleterapi i myokardieinfarkt, med alle de fordele og ulemper ved en sådan model. Naturligvis kan den ikke afspejler den komplekse (fx immunologiske) begivenheder, der finder sted under og efter myokardieinfarkt, men kan fokusere på de direkte effekter af den tilførte celler på postischemic celler. Virkningerne af simulerede iskæmi på H9c2 cardiomyoblasts meget afhænger af tidspunktet for OGD, om overgangen antallet af d…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af OTKA (Hungarian Scientific Research Fund) D45933, T049621, TET (ungarsk Science and Technology Foundation) A4/04, Arg-17/2006 og synd, Bolyai, Öveges stipendier og TÁMOP 4.2.2-08 / 1 / KMR-2008-0004 og 4.2.1 / B 09/1/KMR-2010-0001. OTKA 83803. Vi vil gerne takke William Gesztes for at levere voice-over.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
calcein-AM Molecular Probes L3224, C3099 http://www.invitrogen.com
ethidium homodimer-2 Molecular Probes L3224, E3599 http://www.invitrogen.com
Vybrant DiD Molecular Probes V22887 http://www.invitrogen.com

Table 1. Reagents.

Name of the equipment Company Comments (optional)
PeCon cell incubation system for Zeiss microscopes PeCon GmbH www.pecon.biz/

Table 2. Equipment.

Riferimenti

  1. Dimmeler, S., Burchfield, J., Zeiher, A. M. Cell-Based Therapy of Myocardial Infarction. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 28, (2008).
  2. Kim, S. U., de Vellis, J. Stem cell-based cell therapy in neurological diseases: A review. Journal of Neuroscience Research. 87, 2183-21 (2009).
  3. Lee, K., Chan, C. K., Patil, N., Goodman, S. B. Cell therapy for bone regeneration-Bench to bedside. Journal of Biomedical Materials Research Part B: Applied Biomaterials. 89, 252-25 (2009).
  4. Gaipa, G. GMP-based CD133+ cells isolation maintains progenitor angiogenic properties and enhances standardization in cardiovascular cell therapy. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 14, 1619-1619 (2010).
  5. Trounson, A. New perspectives in human stem cell therapeutic research. BMC medicine. 7, 29-29 (2009).
  6. Mazhari, R., Hare, J. M. Mechanisms of action of mesenchymal stem cells in cardiac repair: potential influences on the cardiac stem cell niche. Nat Clin Pract Cardiovasc Med. 4, S21-S21 (2007).
  7. Kimes, B. W., Brandt, B. L. Properties of a clonal muscle cell line from rat heart. Experimental Cell Research. 98, 367-367 (1976).
  8. Sardao, V. A. Vital imaging of H9c2 myoblasts exposed to tert-butylhydroperoxide–characterization of morphological features of cell death. BMC Cell Biol. 8, 11-11 (2007).
  9. Hescheler, J. Morphological, biochemical, and electrophysiological characterization of a clonal cell (H9c2) line from rat heart. Circulation research. 69, 1476-1476 (1991).
  10. Cselenyak, A. Mesenchymal stem cells rescue cardiomyoblasts from cell death in an in vitro ischemia model via direct cell-to-cell connections. BMC Cell Biol. 11, 29-29 (2010).
  11. Sauvant, C. Implementation of an in vitro model system for investigation of reperfusion damage after renal ischemia. Cell Physiol Biochem. 24, 567-567 (2009).
  12. Namas, R. A. Hypoxia-Induced Overexpression of BNIP3 is Not Dependent on Hypoxia-Inducible Factor 1alpha in Mouse Hepatocytes. Shock. 36, 196-196 (2011).
  13. Cao, L. Hypoxia/Reoxygenation Up-Regulated the Expression of Death Receptor 5 and Enhanced Apoptosis in Human Hepatocyte Line. Transplantation Proceedings. 38, 2207-2207 (2006).
  14. Meloni, B. P., Meade, A. J., Kitikomolsuk, D., Knuckey, N. W. Characterisation of neuronal cell death in acute and delayed in vitro ischemia (oxygen-glucose deprivation) models. Journal of Neuroscience Methods. 195, 67-67 (2011).
  15. Mimeault, M., Hauke, R., Batra, S. K. Stem cells: a revolution in therapeutics–recent advances in stem cell biology and their therapeutic applications in regenerative medicine and cancer therapies. Clinical Pharmacology & Therapeutics. 82, 252-252 (2007).
  16. Angoulvant, D. Mesenchymal stem cell conditioned media attenuates in vitro and ex vivo myocardial reperfusion injury. J Heart Lung Transplant. 30, 95-95 (2010).
  17. Lim, Y. J., Zheng, S., Zuo, Z. Morphine Preconditions Purkinje Cells against Cell Death under In Vitro Simulated Ischemia/Reperfusion Conditions. Anesthesiology. 100, 562-562 (2004).
  18. Guo, J. Estrogen-receptor-mediated protection of cerebral endothelial cell viability and mitochondrial function after ischemic insult in vitro. J Cereb Blood Flow Metab. 30, 545-545 (2010).
check_url/it/3575?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Cselenyák, A., Benko, Z., Szepes, M., Kiss, L., Lacza, Z. Stem Cell Transplantation in an in vitro Simulated Ischemia/Reperfusion Model. J. Vis. Exp. (57), e3575, doi:10.3791/3575 (2011).

View Video