Summary

Dan Ekstrasellüler Akışkan Vampiric İzolasyonu<em> Caenorhabditis elegans</em

Published: March 19, 2012
doi:

Summary

Model organizma<em> C. elegans</em> Pasif bir dolaşım sistemi olarak pseudocoelomic sıvısı kullanır. Bu sıvı Doğrudan testi daha önce mümkün olmamıştır. Burada doğrudan tahlil ekstrasellüler boşluğa bir roman tekniği sunmak ve ilke örnek bir kanıtı olarak RNAi yanıtı sırasında sistemik susturulması sinyalleri kullanır.

Abstract

Genetik uysal model organizma C. elegans büyüme ve küçük boyutu kolaylığı, kısa döl süresi olarak etkin, biyolojik soruları sayısız içgörüler sağladı. Bu küçük boyutlu olsa da, diğer model sistemlerde bulunan teknik yaklaşımlar bir dizi izin vermemesi. Örneğin, memeli sistemlerinde ve bitkilerde aşılama teknikleri, kan transfüzyonları dolaşım sistemi bileşimi ve sinyalizasyon sorular sorarak etkinleştirdiğinizde. Son zamanlarda doğrudan test edilmesi imkansız kadar solucanın dolaşım sistemi, pseudocoelom vardır. Hücrelerarası sinyalizasyon ve dolaşım sistemi kompozisyon C. soruları cevaplamak için elegans araştırmacılar geleneksel genetik analiz, hücre / doku spesifik kurtarma ve mozaik analizi döndü. Bu teknikler hücreler arasında ne olup bittiğini anlaması için bir araç sağlar, ancak ekstrasellüler moleküllerin tanımlanması ve karakterizasyonu evrensel olarak geçerli değildir. Burada biz ne sunuyoruzdoğrudan tahlil C. pseudocoelomic sıvı WLY geliştirilmiş tekniği elegans. Tekniği ekstraselüler sıvı hacmini artırmak için genetik veya fiziksel manipülasyon ile başlar. Daha sonra hayvanların ince bir denge basıncı kontrolü sağlayan bir mikroenjeksiyon kulesi kullanarak bir vampir ters mikroenjeksiyon tekniği tabi tutulur. Ekstrasellüler sıvı izolasyonundan sonra, toplanan sıvı diğer hayvanların içine transferi ile ya da moleküler araçlar ile tayin edilebilir. Bu tekniğin etkinliğini göstermek için bir sistemik RNAi yanıtı sırasında tahlil ekstraselüler sinyal molekülleri, uzun dsRNA belirli bir örnek için ayrıntılı bir yaklaşım sunmak. Sistemik RNAi karakterizasyonu prensibi örnek bir kanıtı olsa da, biz dolaşım sistemi bileşimi ve sinyalizasyon soruları çeşitli cevaplamak için adapte olarak bu tekniği görmek.

Protocol

1. Malzemelerinin Hazırlanması Vampirimsi ters Mikroenjeksiyon için gerekli malzeme transgenik C'ye yapmak için kullanılan standart mikroenjeksiyon teknikleri için gereken ile benzerdir elegans suşlar 1. Bazı reaktifler (ör. test plakaları) deneysel transfer günü yapılmasına rağmen, malzemelerin çok koordineli bir 8 gün süresi (zaman tablo için bakınız Tablo 1) fazla hazırlıklı olmalıdır. Bunun gibi, (gerekli reaktifle…

Discussion

Biz burada model organizma C'den ekstrasellüler sıvı izolasyonu ve karakterizasyonu sağlayan yeni bir yöntem sundu elegans. Tekniği ekstrasellüler sıvı toplam hacmi artırmak için donör solucanlar genetik veya fiziksel manipülasyon ile başlar. Hücre dışı sıvı daha sonra bir modifiye mikroenjeksiyon tekniği kullanılarak izole edilir. Solucanlar işlem sırasında halen solucanlar tutmak için kuru agaroz pedleri kullanarak mikroenjeksiyon için monte edilmiştir. Pad fiziksel ek…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz Hunter laboratuar işbirlikçi doğasını kabul etmek ister ve bu tekniğin geliştirilmesi mümkün ve eğlenceli hale faydalı tartışma ve yardım için kendilerine teşekkür ederim. Biz Nigel Delaney ve solucan ve bakteriyel suşları için Caenorhabditis Genetik Merkezi teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri CPH GM089795 hibe ile desteklenmiştir.

Materials

Day Worm Prep Material Prep
-7 or prior Maintain clean, well fed clr-1(e1745) and N2 worms Make injection pads, NGM plates, NGM +Carb/IPTG plates, OP50 LB stock
-6 Streak out RNAi food on LB + Carb
-5 Inoculate 3 mL overnight with RNAi food
-4 Move embryos to RNAi plate Seed RNAi plate
-3
-2
-1
0 Shift worms to 25 for 4 hours Make assay plates
Move worms to clean NGM plates
Vampiric transfer
Recover recipient
+1 Remove transfer recipient
+2 Score Progeny

Table 1. Material preparation timeline.

Equipment Company Catalogue number
Picoliter Pressure Injector Warner Instruments 65-0001  (PLI-100)
Flaming/Brown micropipette Puller Sutter Instruments P97
Axiovert 200 Zeiss  
Reagents
Mineral Oil EM Science MX1560-1
22×50 no 1½  Cover Glass Corning  
SeaKem LE Agarose Lonza 50004 
Borosilicate Glass Capillaries World Precisions Instruments 1B100F-4
Sodium Hypochlorite Solution (5% available Chlorine) J.T. Baker 9416-01
C. elegans and Bacterial Strains
clr-1(e1745)II 9 The Caenorhabditis Genetics Center (CGC) CB3241
glp-1 RNAi vector 10 Source Bioscience (Ahringer Feeding Library) F02A9.6
pal-1 RNAi vector11   pHC187
OP50-GFP 5 The Caenorhabditis Genetics Center (CGC) OP50-GFP
YFP E. coli 4   MC4100-YFP

Table 2. Specific reagents and equipment.

Riferimenti

  1. Berkowitz, L. A., Knight, A. L., Caldwell, G. A., Caldwell, K. A. Generation of Stable Transgenic C. elegans Using Microinjection. J. Vis. Exp. (18), e833-e833 (2008).
  2. Hirose, T., Nakano, Y., Nagamatsu, Y., Misumi, T., Ohta, H., Ohshima, Y. Cyclic GMP-dependent protein kinase EGL-4 controls body size and lifespan in C elegans. Development. 130, 1089-1099 (2003).
  3. Kimble, J. Alterations in cell lineage following laser ablation of cells in the somatic gonad of Caenorhabditis elegans. Dev. Biol. 87, 286-300 (1981).
  4. Hegreness, M., Shoresh, N., Hartl, D., Kishony, R. An equivalence principle for the incorporation of favorable mutations in asexual populations. Science. 311, 1615-1617 (2006).
  5. Labrousse, A., Chauvet, S., Couillault, C., Kurz, C. L., Ewbank, J. J. Caenorhabditis elegans is a model host for Salmonella typhimurium. Curr. Biol. 10, 1543-1545 (2000).
  6. Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome. Biol. 2, (2001).
  7. Min, K., Kang, J., Lee, J. A modified feeding RNAi method for simultaneous knock-down of more than one gene in Caenorhabditis elegans. Biotechniques. 48, 229-232 (2010).
  8. Zhuang, J. J., Hunter, C. P. Tissue-specificity of Caenorhabditis elegans Enhanced RNAi Mutants. Genetica. 188 (1), 235-237 (2011).
  9. Way, J. C., Chalfie, M. mec-3, a homeobox-containing gene that specifies differentiation of the touch receptor neurons in C. elegans. Cell. 54, 5-16 (1988).
  10. Kamath, R. S., Fraser, A. G., Dong, Y., Poulin, G., Durbin, R., Gotta, M., Kanapin, A., Bot, N. L. e., Moreno, S., Sohrmann, M. Systematic functional analysis of the Caenorhabditis elegans genome using RNAi. Nature. 421, 231-237 (2003).
  11. Winston, W. M., Molodowitch, C., Hunter, C. P. Systemic RNAi in C. elegans requires the putative transmembrane protein SID-1. Science. 295, 2456-2459 (2002).
check_url/it/3647?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Banse, S. A., Hunter, C. P. Vampiric Isolation of Extracellular Fluid from Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (61), e3647, doi:10.3791/3647 (2012).

View Video