Cette technique chirurgicale illustre l'injection de vecteurs de thérapie génique et les cellules souches dans l'espace sous-rétinien de l'oeil de la souris.
La perte de la vue affecte environ 3,4 millions de personnes aux États-Unis et devrait augmenter dans les années à venir. 1 Récemment, la thérapie génique et les transplantations de cellules souches sont devenus les principaux outils thérapeutiques pour le traitement de la cécité due à des maladies dégénératives rétiniennes. Plusieurs formes de transplantation autologue pour la dégénérescence maculaire liée à l'âge (DMLA), comme l'iris pigment transplantation de cellules épithéliales, ont généré des résultats encourageants, et les essais cliniques humains ont commencé pour d'autres formes de thérapies cellulaires de gènes et la tige. 2 Il s'agit de remplacement de gène RPE65 chez des patients souffrant amaurose congénitale de Leber et une greffe de cellules RPE en utilisant de l'homme souches embryonnaires (ES) cellules dans la maladie de Stargardt. 3-4 Maintenant qu'il ya des vecteurs de thérapie génique et les cellules souches disponibles pour le traitement de patients atteints de maladies rétiniennes, il est important de vérifier ces thérapies potentielles dans les modèles animaux avant d'appliquertion entre eux dans les études humaines. La souris est devenue un modèle important scientifique pour tester l'efficacité thérapeutique de vecteurs de thérapie génique et de la transplantation de cellules souches dans l'œil. 5-8 Dans cet article, vidéo, nous présentons une technique pour injecter des vecteurs de thérapie génique et les cellules souches dans l'espace sous-rétinien de l'œil de la souris tout en minimisant les dommages aux tissus environnants.
Cette technique vidéo fournit des instructions sur l'achèvement de la procédure chirurgicale injection sous-rétinienne avec succès, et veiller à ce que le vecteur de thérapie génique ou les cellules souches sont placés dans l'emplacement nécessaire pour traiter efficacement la maladie ophtalmique. Cette technique permet le ciblage des cellules de la rétine comme l'EPR ou photorécepteurs, car il place les vecteurs de thérapie génique ou de cellules souches dérivées de tissus dans le voisinage …
The authors have nothing to disclose.
Research to Prevent Blindness, l'assistance expérimentale de Takayuki Nagasaki; Cette recherche est conforme à la Déclaration ARVO pour l'utilisation des animaux en ophtalmologie et de la recherche visuelle. KJW est financée par des subventions du NIH 5T32EY013933 et 5T32DK007647-20. VBM est soutenu par NIH K08EY020530.
Name | Company | Catalog | Comments |
0.8-1.10 x 100 mm Capillary Tube (glass) | Kimble Glass, Inc. | 34502 99 | |
Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instrument | P-97 | Narishige microforge can be used instead. Catalog #MF-900 |
Sigmacote | Sigma Aldrich | SL2-25ML | Silicone |
Dubecco’s Phosphate Buffered Saline with Calcium Chloride and Magnesium Chloride | Gibco-Invitrogen | 14040-133 | |
Safety-Lok 25 3/4G x 12″; Blood Collection Set | B-D Vacutainer | 367298 | |
1 ml Sub-Q 26 5/8G Slip-Tip Syringe | Becton-Dickinson | 309597 | |
0.5-10 μl Finnpipette II Adjustable-Volume Pipetter | Fisherbrand | 21-377-815 | |
1-200 μl Natural Beveled Tips | USA Scientific, Inc. | 1111-1700 | |
Discovery.V8 Stereo Microscope | Zeiss | MC1500 | |
60 mm x 15 mm Style Treated Polystyrene Cell Culture Dish | Corning Incorporated | 430166 | |
Vannas Straight Scissors | Storz Ophthalmics | E3383 S | |
Curved Dressing Forceps with Serrations Delicate | Storz Ophthalmics | E1408 | |
15 Degree Microsurgery Knife | Wilson Ophthalmic Corp. | 091204 | |
Ketamine | Ketaset III | NADA #45-290 | |
Xylazine | Lloyd Laboratories | NADA #139-236 | |
Bupivacaine (Marcaine) | AstraZeneca | N/A | |
Buprenorphine | Sigma Aldrich | B9275 |