Summary

Musmodeller för Graft åderförkalkning

Published: May 14, 2013
doi:

Summary

Vi beskriver protokoll för våra arteriosclerois mus transplantat (GA) modeller som innefattar en mellanliggande mus kärlsegment till en mottagare av samma inavlade stam. Genom tillbakakorsning ytterligare genetiska förändringar i kärlet donator, kan modellen bedöma effekten av specifika gener på GA.

Abstract

Graft arteriosclerois (GA), även kallad transplantatvaskulopati, är en patologisk lesion som utvecklas över flera månader eller år i transplanterade organ kännetecknas av diffus, omgivande stenos i hela vaskulär träd. Den mest kritiska komponenten i GA patogenes är tillväxten av glatta muskel-liknande celler i intima. När en human kransartär segmentet är insatt in i den infra-renala aorta av immundefekta möss, kunde intimas skall expandera som svar på adoptivt överförda humana T-celler allogena till artären donator eller exogent humant IFN-γ i frånvaro av humana T-celler. En mellanliggande mus aorta från en stam till en annan musstam mottagare är begränsad som en modell för kronisk avstötning hos människor eftersom det akuta cell-medierad avvisande svar i denna musmodell helt eliminerar alla givare-härledda vaskulära celler från transplantat inom två-tre veckor. Vi har nyligen utvecklat två nya mouse modeller för att kringgå dessa problem. Den första modellen innebär en mellanliggande kärlsegment från en manlig mus in i en kvinnlig mottagare av samma inavlade stam (C57BL/6J). Transplantatavstötning i detta fall är riktad endast mot smärre histokompatibilitetsantigener kodade av Y-kromosomen (närvarande i manliga men inte kvinnliga) och avstötningsreaktioner som följer är tillräckligt loj att bevara donator-härledda glatta muskelceller i flera veckor. Den andra modellen innebär anbringande av en artär segment från en vild typ C57BL/6J mus givare i en värd mus av samma stam och kön som saknar receptorn för IFN-γ följt av administrering av mus-IFN-γ (levereras via infektion av musen levern med en adenoviral vektor. Det finns ingen avstötning i detta fall eftersom både givare och möss mottagare är av samma stam och kön men donor glattmuskelceller proliferera som svar på cytokinet medan värd-härledda celler, som saknar receptorn fördetta cytokin, svarar inte. Genom tillbakakorsning ytterligare genetiska förändringar i kärlet donator, kan båda modellerna kan användas för att bedöma effekten av specifika gener på GA progression. Här beskriver vi detaljerade protokoll för vår mus GA-modeller.

Introduction

Graft arteriosclerois (GA), även kallad transplantatvaskulopati, är en patologisk lesion som utvecklas över flera månader eller år i transplanterade organ kännetecknas av diffus, omgivande stenos i hela vaskulär träd 7. Tidiga skeden kan orsaka excentriska och fokal stenoser som är mer uppenbart i artärerna, vilket närmare liknar stenoser ses i konventionella ateroskleros. Lumen avstötning av transplantatet till fartyg resulterar från intimal expansion på grund av infiltration av celler värd-T och makrofager och speciellt till ackumulering av extracellulär matrix och glatt muskulatur-liknande celler härstammar från transplantat, värd eller båda 5, 13, 19, som är otillräckligt kompenseras genom passiv fartyg ombyggnad. I hjärt allografts, de mest kliniskt signifikanta lesioner är de i epikardiella och intramyocardial kranskärl. I slutändan kommer GA i kranskärlen orsakar ischemisk hjärtsvikt. GA är den största orsaken till sent hjärt grakterut förlust. De stenoser GA stannar vid sutur linjer, starkt binder värdsvaret att ympa alloantigener i dess patogenes och leder oss att klassificera GA som en form av kronisk avstötning 3. Emellertid kan andra former av arteriell skada ökar risken för GA, antingen genom att öka nettobörda av skada eller genom att intensifiera och / eller modulera alloimmun svar. Den endotelcell (EG) beklädnad av transplantat artärer bevaras i human GA och de mest ytliga regionerna av intima intill EG fodret är platsen tyngst infiltrerats av värd-härledd IFN-γ-producerande T-celler och makrofager 11; i vissa patienter GA är förknippade med utvecklingen av donator-specifika alloantikroppar som binder till transplantatet EC 16 men fartygen visar få tecken på den fibrinoid nekros som är kännetecknande för akut antikropp-medierad avstötning 11.

Den mest kritiska komponenten i GA patogenes ärproliferation av glatta muskel-liknande celler i intima, om denna process kan bli arresterad, är GA osannolikt att utvecklas. Tidigare arbete från vår grupp hade visat att intimas av mänskliga kransartärsjukdomar segment insatt in i den infra-renala aorta av immundefekta möss expandera som svar på adoptivt överförda humana T-celler allogena till artären donator och att denna process kunde hämmas genom att neutralisera humant IFN- γ 18. Vidare exogen human IFN-γ kan orsaka intimal (och mediala) vaskulära glatta muskelceller (VSMC) spridning i dessa arteriella transplantat i frånvaro av humana T-celler 15, 17. (Det är viktigt att notera att människa och mus IFN-γ korsar inte arter, utesluter indirekta effekter på musen värd i denna experimentella systemet.) Dessa humaniserade musmodeller har förmånen att rekapitulera human T-cell / vaskulära interaktioner cell och intimala lesioner är till stor del består av humana (dvs. transplantat-härledda) celler,som har observerats i kliniska prover, men de har inte fullt rekapitulera den kliniska situationen eftersom de ignorerar den roll som värd makrofager och eventuellt andra celltyper som deltar i kliniska transplantationer lesioner. En konventionell mus modell av denna process skulle teoretiskt ta itu med detta problem, komplettera begränsningarna av humaniserad modellen genom att involvera ett komplett värdimmunsystemet och ger den ytterligare fördelen att kraften i musen genetiska metoder som ska tillämpas till GA. De två mest använda musmodeller involverar heterotop hjärttransplantation och orthotopic artär transplantation 1. De skador som utvecklas i artärerna i heterotopiska hjärttransplantat är till stor del består av värdceller, troligen av benmärg ursprung, medan intima celler i artärerna i mänskliga hjärttransplantat är övervägande av transplantat ursprung 5, 13, 19. Detta är en viktig distinktion som har fått oss att utveckla alternativa musmodeller. Mellanlägg aven mus aorta från en stam till en annan musstam mottagare är ännu mer begränsad som en modell för kronisk avstötning hos människor eftersom den akut cell-medierad avvisande svar i denna musmodell helt eliminerar alla givare-härledda vaskulära celler från transplantat inom två-tre veckor 19. Följaktligen, de efterföljande förändringarna ses i det mellanliggande kärlsegmentet är enbart ett svar på värdceller som har återpopuleras den decellulariserade fartyget schavotten, skapa ett starkt artefaktuella situation av begränsad betydelse som förebild för de förändringar i transplantatet fartyg som förekommer i kliniken. Vi har nyligen utvecklat två nya musmodeller för att kringgå dessa problem 21. Den första modellen innebär en mellanliggande kärlsegment från en manlig mus in i en kvinnlig mottagare av samma inavlade stam (C57BL/6J). Den andra modellen innebär anbringande av en artär segment från en vild typ C57BL/6J mus givare i en värd mus av samma stam och kön som saknar receptor för IFN-γ (IFN-yR-KO) följt av administrering av mus-IFN-γ (levereras via infektion i muslever med en adenoviral vektor. Här beskriver vi detaljerade protokoll och fördelarna med våra mus GA modeller.

Protocol

Mus allograft och syngena transplantat transplantation modell Samtliga djurstudier har godkänts av Institutional Animal Care och kommittéer användning av Yale University. För transplantatavstötning modell, var segment av aorta från manlig, 4-5 veckor gamla WT (C57BL/6J) eller IFN-yR-KO möss insatt i bukaorta av kvinnlig mottagare, 8-12 veckor gamla WT med en end-to -end mikrokirurgisk anastomotic teknik (se nästa för detaljer). För syngen transplantat modellen var segment av bröstkor…

Representative Results

Mus allograft arterioskleros (GA) modell: I denna modell är en manlig donator aorta transplanteras in kvinnliga mottagaren så att den mottagande inducerar alloreaktiva T-cells medierade alloimmuna svar mot en mindre Y-antigen (den manliga-specifika underordnade histokompatibilitetsantigenet HY) uttrycks på transplantatet 12, och i sin tur T-cell-producerade IFN-γ enheter VSMCs proliferation 20 som observerats i andra modeller allograft transplantation 2, 6, 8-10, 14….

Discussion

De beskrivna protokollen är fokuserade på mus GA-modeller. Förfarandena kan tillämpas på andra graft transplantation modeller. Dessa modeller inkluderar humaniserad xenotransplantat (dvs. mänskliga kranskärl segment insatt i den infra-renala aorta av möss med immunbrist), och akut avstötning mus GA-modellen (dvs. en mus aorta från en genetisk stam till en annan genetisk stam mottagare). Våra beskrivna musmodeller är mer att stänga mänskliga GA lesioner. Den första modellen innebär en me…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH bidrag R01 HL109420 till WM och AHA 9320033N till LY.

Materials

Name of the Reagent Company Catalogue Number Comments (optional)
C57BL/6J (H-2b) Jackson Laboratories (Bar Harbor, ME) 000664 Donor (5 weeks)
Recipient (8-12weeks)
Ketamine Hydrochloride Injection Hospira Inc. NDC 0409-2053 Storage Solution(50 mg/ml)
Working Solution(5 mg/ml)
Xylazine Sterile Solution Lloyd Inc. NADA# 139-236 Storage Solution(100 mg/ml)
Working Solution(1 mg/ml)
Ketoprofen Fort Dodge Animal Health NDC 0856-4396-01 Storage Solution(100 mg/ml)
Working Solution-oral
(0.027 mg/ml)
Heparin Sodium Sagent Pharmaceticals NDC 25021-400 Storage Solution(1000 U/ml)
Working Solution(100 U/ml)
Saline solution (Sterile 0.9% Sodium Chloride) CareFusion AL4109
0.9% Sodium Chloride Injection Hospira Inc. NDC 0409-4888-10 To prepare the anesthetic
Petrolatum Ophthalmic Ointment Dechra Veterinary Products NDC 17033-211-38
Iodine Prep Pads Triad Disposables, Inc. NDC 50730-3201-1
Alcohol Prep Pads McKesson Corp. NDC 68599-5805-1
Microscope Leica MZ95
Micro Scissors Roboz Surgical Instrument Co. RS-5693
Spring Scissors F.S.T 15009-08 To transect the aorta of donor or recipient
Extra Narrow Scissors F.S.T 14088-10
Needle Holder/Forceps MICRINS MI1542 To hold the needle
Fine Forceps F.S.T 11254-20
Forceps F.S.T 11251-35
Standard Pattern Forceps F.S.T 11000-12
Forceps F.S.T 13011-12
LANCASTER Eye Speculum Zepf Medical Instruments 42-1209-07
Micro Vascular Clip Roboz Surgical Instrument Co. RS-6472
Micro Clip Applying Forceps With Lock Roboz Surgical Instrument Co. RS-5440
Black Polyamide Monofilament Suture AROSurgical Instruments Corporation Cat #T4A10Q07 10-0 suture, Needle=70 microns
Black Monofilament Nylon Suture Syneture
(Covidien)
SN-1956 6-0 suture
Non-Woven Songes McKesson Corp. Reorder No. 94442000
1 ml Syringe BD REF 309659
3 ml Syringe BD REF 309657
10 ml Syringe BD REF 309604
18G 1 1/2, Hypodermic Needle BD REF 305196
25G 7/8, Hypodermic Needle BD REF 305124
27G 1/2, Hypodermic Needle BD REF 305109
30G 1/2, Hypodermic Needle BD REF 305106
Hearting Pad Sunbeam Z-1228-001
Trimmer Wahl 9854-500
Table 2. Specific reagents and equipment.

Riferimenti

  1. George, J. F., Pinderski, L. J., Litovsky, S., Kirklin, J. K. Of mice and men: mouse models and the molecular mechanisms of post-transplant coronary artery disease. J. Heart Lung Transplant. 24, 2003-2014 (2005).
  2. Koulack, J., McAlister, V. C., MacAulay, M. A., Bitter-Suermann, H., MacDonald, A. S., Lee, T. D. Importance of minor histocompatibility antigens in the development of allograft arteriosclerosis. Clin. Immunol. Immunopathol. 80, 273-277 (1996).
  3. Libby, P., Pober, J. S. Chronic rejection. Immunity. 14, 387-397 (2001).
  4. Lorber, M. I., Wilson, J. H., Robert, M. E., Schechner, J. S., Kirkiles, N., Qian, H. Y., Askenase, P. W., Tellides, G., Pober, J. S. Human allogeneic vascular rejection after arterial transplantation and peripheral lymphoid reconstitution in severe combined immunodeficient mice. Transplantation. 67, 897-903 (1999).
  5. Minami, E., Laflamme, M. A., Saffitz, J. E., Murry, C. E. Extracardiac progenitor cells repopulate most major cell types in the transplanted human heart. Circulation. 112, 2951-2958 (2005).
  6. Mitchell, R. N. Allograft arteriopathy: pathogenesis update. Cardiovasc. Pathol. 13, 33-40 (2004).
  7. Mitchell, R. N. Graft vascular disease: immune response meets the vessel wall. Annu Rev Pathol. 4, 19-47 (2009).
  8. Nagano, H., Libby, P., Taylor, M. K., Hasegawa, S., Stinn, J. L., Becker, G., Tilney, N. L., Mitchell, R. N. Coronary arteriosclerosis after T-cell-mediated injury in transplanted mouse hearts: role of interferon-gamma. Am. J. Pathol. 152, 1187-1197 (1998).
  9. Nagano, H., Mitchell, R. N., Taylor, M. K., Hasegawa, S., Tilney, N. L., Libby, P. Interferon-gamma deficiency prevents coronary arteriosclerosis but not myocardial rejection in transplanted mouse hearts. J. Clin. Invest. 100, 550-557 (1997).
  10. Raisanen-Sokolowski, A., Glysing-Jensen, T., Koglin, J., Russell, M. E. Reduced transplant arteriosclerosis in murine cardiac allografts placed in interferon-gamma knockout recipients. Am. J. Pathol. 152, 359-365 (1998).
  11. Salomon, R. N., Hughes, C. C. W., Schoen, F. J., Payne, D. D., Pober, J. S., Libby, P. Human Coronary Transplantation-Associated Arteriosclerosis – Evidence for a Chronic Immune Reaction to Activated Graft Endothelial Cells. Am. J. Pathol. 138, 791-798 (1991).
  12. Scott, D. M., Ehrmann, I. E., Ellis, P. S., Chandler, P. R., Simpson, E. Why do some females reject males? The molecular basis for male-specific graft rejection. J. Mol. Med. 75, 103-114 (1997).
  13. Shimizu, K., Sugiyama, S., Aikawa, M., Fukumoto, Y., Rabkin, E., Libby, P., Mitchell, R. N. Host bone-marrow cells are a source of donor intimal smooth- muscle-like cells in murine aortic transplant arteriopathy. Nat. Med. 7, 738-741 (2001).
  14. Tellides, G., Pober, J. S. Interferon-gamma axis in graft arteriosclerosis. Circ. Res. 100, 622-632 (2007).
  15. Tellides, G., Tereb, D. A., Kirkiles-Smith, N. C., Kim, R. W., Wilson, J. H., Schechner, J. S., Lorber, M. I., Pober, J. S. Interferon-gamma elicits arteriosclerosis in the absence of leukocytes. Nature. 403, 207-211 (2000).
  16. Vassalli, G., Gallino, A., Weis, M., von Scheidt, W., Kappenberger, L., von Segesser, L. K., Goy, J. J. Alloimmunity and nonimmunologic risk factors in cardiac allograft vasculopathy. Eur. Heart J. 24, 1180-1188 (2003).
  17. Wang, Y., Bai, Y., Qin, L., Zhang, P., Yi, T., Teesdale, S. A., Zhao, L., Pober, J. S., Tellides, G. Interferon-gamma induces human vascular smooth muscle cell proliferation and intimal expansion by phosphatidylinositol 3-kinase dependent mammalian target of rapamycin raptor complex 1 activation. Circ. Res. 101, 560-569 (2007).
  18. Wang, Y., Burns, W. R., Tang, P. C., Yi, T., Schechner, J. S., Zerwes, H. G., Sessa, W. C., Lorber, M. I., Pober, J. S., Tellides, G. Interferon-gamma plays a nonredundant role in mediating T cell-dependent outward vascular remodeling of allogeneic human coronary arteries. Faseb J. 18, 606-608 (2004).
  19. Yacoub-Youssef, H., Marcheix, B., Calise, D., Thiers, J. C., Benoist, H., Blaes, N., Segui, B., Dambrin, C., Thomsen, M. Chronic vascular rejection: histologic comparison between two murine experimental models. Transplant. Proc. 37, 2886-2887 (2005).
  20. Yokota, T., Shimokado, K., Kosaka, C., Sasaguri, T., Masuda, J., Ogata, J. Mitogenic activity of interferon gamma on growth-arrested human vascular smooth muscle cells. Arterioscler. Thromb. 12, 1393-1401 (1992).
  21. Yu, L., Qin, L., Zhang, H., He, Y., Chen, H., Pober, J., Tellides, G., Min, W. AIP1 prevents graft arteriosclerosis by inhibiting IFN-γ-dependent smooth muscle cell proliferation and intimal expansion. Cir. Res. 109, 418-427 (2011).
check_url/it/50290?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Qin, L., Yu, L., Min, W. Mouse Models for Graft Arteriosclerosis. J. Vis. Exp. (75), e50290, doi:10.3791/50290 (2013).

View Video