Summary

マウス肺挿管の簡単な方法

Published: March 21, 2013
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Summary

本論文では、マウスが回復することを可能にし、それ以降の回で学んだことが肺機能測定や肺点滴用のマウスを挿管のstriaghforwardかつ効率的な方法を説明します。手続きは、直接気管を照らす安価な光ファイバ光源を必要とする。

Abstract

肺機能測定のためのマウスを挿管するための簡単​​な手順では、限られた数字や高価な動物との縦断的研究では、いくつかの利点を持っているでしょう。これは、より日常的に行われていないことを理由の一つは、それを達成するための方法を説明するいくつか発表された研究があるにもかかわらず、相対的に難しいということです。本稿では、挿管の全体の時間の間に気管を可視化することが、この挿管​​に関連する主要なハードルの一つを排除する手順を示しています。アプローチは、マウスの気管内に挿管カニューレを指示するイントロデューサとして機能0.5ミリメートルファイバーオプティックライトソースを使用します。我々は、それが少なくとも数週間の時間経過とともに、個々のマウスの肺メカニクスを測定するためにこのプロシージャを使用することが可能であることを示している。技術は、比較的少ない費用と専門知識を使用して設定することができ、それが日常的に比較的少しのトレーニングで達成することができる。これは、MAKべき日常的にこの挿管を行うために、任意の実験室のための可能な電子ば、それによって個々のマウスにおける縦断的研究、それによって必要とされるマウスの数を最小限にし、独自のコントロールとして、それぞれのマウスを使用して統計的検出力を増加させることを可能にする。

Introduction

1999年には、ブラウンらは、マウス肺1の挿管のための方法を説明する論文を発表した。このような技術は、縦断的研究2における個々のマウスにおける反復肺機能や気管支肺胞洗浄を行う際に、かなりのユーティリティを持っています。そのオリジナルの紙なので、マウス挿管3月9日に異なるアプローチを説明してきた他のいくつかの論文があった。これらの方法のすべてが正常に使用できますが、彼らは通常、かなりのトレーニングやコストを必要とします。そのような挿管の主な問題の一つは、挿管カニューレが近づくにつれて気管保留中の挿入に近づく、カニューレ自体が故に光、それが行く必要がどこの可視化を阻止することである。したがって、挿入が最も重要な時期にあるブラインドになります。本稿では、それによって、比較的少ないトレーニングで成功した挿管を確保するか、または、簡単かつ安価この可視化の問題を解消する方法を示し経験。

Protocol

1。手順の準備一つは、最初に以下のアイテムを入手し、準備する必要があります。 カニューレ。20〜35グラムのマウスの気管内挿管については、我々は長い1または1.5インチ、20ゲージの静脈カテーテル(BD Insylte、スパークス、MDまたはJelco Optiva、Carlsbad、CA)を使用しています。新しい滅菌カテーテルを各マウスに使用することができますが、カテー…

Representative Results

方法の評価として、我々は27.7の平均重量(±SEM)±0.40 gで4つの20週齢の雄BALB / cマウスを使用していました。彼らは肺抵抗が以前11に記載されているように 、システムを用いて測定した5週連続、について調査を行った。各マウスは、IP注射を介して生理食塩水にケタミン(100μg/ gでBW)およびキシラジン(15μg/ gで、BW)で麻酔しました。上記のように彼らはその後挿管…

Discussion

ここで説明する手順では、いくつかの利点があります。最初の装置はシンプルで比較的安価である..装置の製作は、特別なツールや高価な設備を必要としません。カテーテルの使用はまた、光源が一つは紹介者が気管開口部に近​​づくにつれて、気管開口部の視力を失うことがないことを意味していることを紹介しています。 0.5ミリメートル導入器の使用はまた、大規模なカニューレの最?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

NIHは、HL-10342でサポートされている。

Materials

Material Company Catalog # Comment
Intubation cannula BD Insylte, Sparks, MD or Jelco Optiva, Carlsbad, CA   1-in.-long, 20-gauge intravenous (IV) catheter
Fiber-optic cable Edmund Optics, Barrington, NJ #NT02-542 Approximately 2-ft length of 0.5-mm optical fiber (Communication grade plastic fiber). The edge of the fiber end that is inserted into the trachea should be gently rounded by holding the fiber ≈2 cm from the end and then making small circles while dragging the tip for a few seconds on 1,000-grit emory paper.
Light Source Volpi NCL-150 Although we use a 150-W halogen light source, any equivalent light source, even with much lower wattage can be used.
Silicone rubber stopper     A #1 silicone rubber stopper fits the light source used in this demonstration. Different light sources may require a different size.
Small silicone rubber tube Cole-Palmer EW-96410-13 A ≈1.5 cm piece of silicone rubber tubing (0.8 inner diameter, 4 mm outer diameter)
Angled support stand     Ours is constucted from plexiglass, but any material to which a thread or wire can be affixed to hold the mouse at an almost vertical angle can be used.

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Das, S., MacDonald, K., Chang, H. S., Mitzner, W. A Simple Method of Mouse Lung Intubation. J. Vis. Exp. (73), e50318, doi:10.3791/50318 (2013).

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