Summary

Bygging av Microdrive Arrays for Kroniske Neural Recordings i Awake Behaving Mus

Published: July 05, 2013
doi:

Summary

Prosjektering og montering av Microdrives for in vivo elektrofysiologiske opptak av hjernen signaler fra musen er beskrevet. Ved å feste microelectrode bunter til solide kjørbar bærere, disse teknikkene gir mulighet for langsiktig og stabil nevrale innspillinger. Den lette designen sørger for ubegrenset atferdsmessige ytelse av dyret følgende stasjon implantasjon.

Abstract

State-of-the-art elektrofysiologiske opptak fra hjernen til fritt oppfører dyr tillate forskere å samtidig undersøke lokale feltet potensialer (LFPs) fra populasjoner av nerveceller og aksjonspotensialer fra enkeltceller, som dyret engasjerer seg i eksperimentelt relevante oppgaver. Kronisk implantert Microdrives tillate hjernen innspillinger til å vare over perioder på flere uker. Miniatyriserte stasjoner og lette komponenter tillate disse langsiktige opptak til forekomme i små pattedyr, for eksempel mus. Ved å bruke tetrodes, som består av flettede bunter av tett fire elektroder hvor hver ledning har en diameter på 12,5 mikrometer, er det mulig å isolere fysiologisk aktive neuroner i overfladiske hjerneområder slik som cerebral cortex, dorsal hippocampus, og subiculum, samt som dypere områder som i striatum og amygdala. Videre sikrer denne teknikken stabil, høy fidelity nevrale innspillinger som dyret blir utfordret med en variety av atferdsmessige oppgaver. Dette manuskriptet beskriver flere teknikker som har blitt optimalisert for å ta opp fra musen hjernen. Først viser vi hvordan du kan dikte tetrodes, laste dem inn i kjørbar rør, og gull-plate sine tips for å redusere sin impedans fra MΩ til kohm rekkevidde. Sekund, viser vi hvordan du kan lage en tilpasset Microdrive montering for gjennomføring og flytting av tetrodes vertikalt, med bruk av billige materialer. Tredje, viser vi trinn for montering av en kommersielt tilgjengelig Microdrive (Neuralynx VersaDrive) som er designet til å bære uavhengig bevegelige tetrodes. Til slutt presenterer vi representative resultater på lokalt felt potensialer og single-enhet signaler innhentet i dorsal subiculum av mus. Disse teknikkene kan enkelt endres for å imøtekomme ulike typer elektrode arrays og opptak ordninger i musen hjernen.

Introduction

Bruken av mikroelektroden teknikk for opptak av ekstracellulære signaler nevrale in vivo har en lang tradisjon og vurderes i en Neuroscience, 2.. Muligheten for å registrere elektrisk aktivitet fra mange områder av hjernen i fritt oppfører dyrene er imidlertid en nyere teknologi som blir stadig mer vanlig som programvarepakkene for erverv, analyse og diskriminering av nevrale signaler blir mer sofistikert og brukervennlig tre, 4. Den teknologiske fremskritt på programvaresiden har også vært ledsaget av reduksjoner i vekt og mesteparten av implanterbare enheter, som har blitt skalert ned tilstrekkelig for opptak i små pattedyr, for eksempel mus. Ved å bruke lette (hovedsakelig plast) komponenter, forskerne er i stand til å konstruere Microdrives som gir mulighet for uavhengig justering av elektroder eller tetrodes å målrette et bredt spekter av områder av hjernen 5-7. Selv dype strukturer i hjernen, slik somamygdala 6 og striatum 5, kan rutinemessig målrettet med valget av en hensiktsmessig lang kjøretur skruen. Disse innspillingen teknikker tillate forskere å oppnå høy-fidelity nevrale signaler og er i register med den elektriske aktiviteten av single nevroner registrert intracellulært 8, 9. Ved hjelp av disse typer Microdrive, har vi lykkes spilt single-enheter fra mus i opptil to måneder etter implantasjon 10. I tillegg har den lette vekten av de enheter (ca. 1,5-2,0 g) resulterte i atferdsmessige ytelse som kan sammenlignes med ikke-implanterte mus i mange atferdsmessige oppgaver. Spesielt har vi vist at implantert mus viser normal ytelse i romanen objekt anerkjennelse oppgave 10 og objektet sted oppgave (upubliserte data).

Bruk av Microdrive koblet til flere tetrodes tillater forskerne å overvåke og analysere nevrale aktiviteten på nettverksnivåsamtidig opptak fra flere single-enheter i hjernen. Opptak med disse tetrodes har flere store fordeler for enhet identifikasjon og gjør det mulig for høy nøyaktighet kjøp og diskriminering av flere single-enheter 11. Vi beskriver hvordan å dikte og gull-plate tetrode bunter og så deretter laste dem inn i kjørbar elektrode bærere. En type stasjon transportør vi beskriver er kommersielt tilgjengelig, og den andre er en enkel, men lett utvides, drive design som kan romme flere operatører og tetrode ordninger uten en betydelig investering av ressurser.

Protocol

En. Tetrode Fabrication Starter ved hjelp av isolerte 12,5 mikrometer (0,0005 ") diameter kjerne platina-iridium ledning fra California fin tråd. Lengden av tråden bør kuttes til passende lengde for målstrukturen. Eksempelvis kutte ledningen til minst 30 cm lang for målretting dorsal subiculum eller hippocampus. Brett ledning over på midten slik at det er to parallelle tråder som vil være 15 cm i lengde. Drapere midtpunktet av denne ledning over en horisontal arm for å danne fire paral…

Representative Results

<p class="jove_content"> Etter implantering av Microdrive og senke elektrodene til de tiltenkte hjernen mål, en forsterket datainnsamling system, for eksempel en Neuralynx Lynx-8, er nødvendig for opptak av nevrale signaler. Representative nevrale innspillinger av lokale felt potensialer (LFPs) og single-enhet aksjonspotensialer (ofte kalt "pigger") fra musen dorsal subiculum er vist i<strong> Figur 2</strong>. LFP signalene ble samplet på 3 kHz og band-pass filtrert mellom 0,1 til 500 Hz (<strong> Figur 2A</strong> …

Discussion

Vi har beskrevet et sett med teknikker for å konstruere lette og kompakte Microdrives for opptak av ekstracellulær enhet og feltpotensial aktivitet i mus. Ved å bygge tilpassede Microdrives med baser fashioned fra akrylglass (metylmetakrylat), kan kjernen systemet enkelt tilpasses for flere stasjoner og for målretting av et bredt spekter av nevrale regioner. Vi har nå endret systemet for innspilling fra flere hjernen mål og med større arrays for opptak i mus. Med ytterligere endringer, kan motoriserte drivelement…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Daniel Carpi for hans hjelp og tidlige bidrag til dette prosjektet. Vi takker også Lucrecia Novoa for hennes assistanse med kunstverk og bilder. Dette arbeidet ble støttet av NIH / NIAID program stipend 5P01AI073693-03.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
0.0005″ (12.5 μM) diameter Platinum-Iridium wire California Fine Wire CFW#100-167 HML VG insulated www.calfinewire.com
0.002″ (50 μM) diameter Stableohm 675 wire California Fine Wire CFW# 100-188 HML insulated Ni-Cr
polyamide tubing Polymicro Technologies 1068150020 99 micron I.D., 166 micron O.D. www.polymicro.com
brass guides World Plastics Inc 3.3 x 6.6 mm
Delrin blocks World Plastics Inc 3.13 x 2.5 mm
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 00-90 x 1/2 drive screw www.jimorrisco.com
hex brass nuts J.I. Morris Co. 00-90
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 000-120 x 3/32 EIB mount and ground screw
plexiglass acrylic Canal Street Plastics 5 mm thick, clear, www.cpcnyc.com
cyanoacrylate Krazy Glue 2 g tube
electronic interface board Neuralynx EIB-18 www.neuralynx.com
non-cyanide gold solution SIFCO SIFCO 5355 www.sifcoasc.com
VersaDrive 4 Neuralynx four tetrode model
tetrode assembly station Neuralynx
motorized tetrode spinner Neuralynx tetrode spinner 2.0
VersaDrive jig Neuralynx
soldering iron Radio Shack 64-2802B www.radioshack.com
nanoZ Neuralynx
small bit drill/driver Ram Products Rampower 35 with footpedal controller, www.ramprodinc.com
drill bits Small Parts, Inc. 3/32″ bits, www.smallpartsinc.com
dissecting microscope Olympus SZ-60 www.olympusamerica.com
heat gun Alphawire Fit gun 3 use setting “1” only, www.alphawire.com
26 AWG copper wire Arcor Electronics F26 for ground wires, www.arcorelectronics.com
soldering flux Eagle 2 oz, #205
0.02″ diameter solder Kester 24-6337-0010 www.kester.com
benchtop vise Vacu-Vise Model 300
fiber optic light Nikon MKII dual light arms, www.nikon.com
5-min epoxy Allied Electronics 25 ml, www.alliedelec.com
fine tweezers Roboz Surgical Instrument Co. RS-4907, RS-5010 INOX material, www.roboz.com
micro dissecting scissors Roboz Surgical Instrument Co. RS-5880

Table 1. Materials and reagents used for constructing tetrodes and microdrives.

Riferimenti

  1. Recce, M. L., O’Keefe, J. The tetrode: a new technique for multi-unit extracellular recording. Soc. Neurosci. Abstr. 15, 1250 (1989).
  2. O’Keefe, J., Recce, M. Phase relationship between hippocampal place units and the EEG theta rhythm. Hippocampus. 3, 317-330 (1993).
  3. Chen, G., Wang, L. P., Tsien, J. Z. Neural population-level memory traces in the mouse hippocampus. PLoS ONE. 4 (12), e8256 (2009).
  4. Buzsáki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. The origin of extracellular fields and currents — EEG, ECoG, LFP, and spikes. Nat. Rev. Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).
  5. Tort, A. B., Kramer, M. A., et al. Dynamic cross-frequency coupling of local field potential oscillations in rat striatum and hippocampus during performance of a T-maze task. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 105 (51), 20517-20522 (2008).
  6. Seidenbecher, T., Laxmi, R., et al. Amygdalar and hippocampal theta rhythm synchronization during fear memory retrieval. Science. 301 (5634), 846-850 (2003).
  7. Yamamoto, J., Wilson, M. A. Large-scale chronically implantable precision motorized microdrive array for freely behaving animals. J. Neurophysiol. 100 (4), 2430-2440 (2008).
  8. Harris, K. D., Henze, D. A., et al. Accuracy of tetrode spike separation as determined by simultaneous intracellular and extracellular measurements. J. Neurophysiol. 84 (1), 401-414 (2000).
  9. Henze, D. A., Borhegyi, Z., et al. Intracellular features predicted by extracellular recordings in the hippocampus in vivo. J. Neurophysiol. 84 (1), 390-400 (2000).
  10. Chang, E. H., Huerta, P. T. Neurophysiological correlates of object recognition in the dorsal subiculum. Front. Behav. Neurosci. 6, 46 (2012).
  11. Gray, C. M., Maldonado, P. E., et al. Tetrodes markedly improve the reliability and yield of multiple single-unit isolation from multi-unit recordings in cat striate cortex. J. Neurosci. Methods. 63 (1-2), 43-54 (1995).
  12. O’Keefe, J., Dostrovsky, J. The hippocampus as a spatial map. Preliminary evidence from unit activity in the freely-moving rat. Brain Res. 34 (1), 171-175 (1971).
  13. Wilson, M. A., McNaughton, B. L. Dynamics of the hippocampal ensemble code for space. Science. 261 (5124), 1055-1058 (1993).
  14. Buzsáki, G. . Rhythms of the Brain. , (2006).
  15. McHugh, T. J., Blum, K. I., et al. Impaired hippocampal representation of space in CA1-specific NMDAR1 knockout mice. Cell. 87 (7), 1339-1349 (1996).
  16. Resnik, E., McFarland, J. M., et al. The effects of GluA1 deletion on the hippocampal population code for position. J. Neurosci. 32 (26), 8952-8968 (2012).
  17. Cacucci, F., Yi, M., et al. Place cell firing correlates with memory deficits and amyloid plaque burden in Tg2576 Alzheimer mouse model. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (22), 7863-7868 (2008).
  18. Sigurdsson, T., Stark, K. L., et al. Impaired hippocampal-prefrontal synchrony in a genetic mouse model of schizophrenia. Nature. 464 (7289), 763-767 (2010).
  19. Engel, A. K., Moll, C. K., et al. Invasive recordings from the human brain: clinical insights and beyond. Nat. Rev. Neurosci. 6 (1), 35-47 (2005).
  20. Cash, S. S., Halgren, E., et al. The human K-complex represents an isolated cortical down-state. Science. 324 (5930), 1084-1087 (2009).

Play Video

Citazione di questo articolo
Chang, E. H., Frattini, S. A., Robbiati, S., Huerta, P. T. Construction of Microdrive Arrays for Chronic Neural Recordings in Awake Behaving Mice. J. Vis. Exp. (77), e50470, doi:10.3791/50470 (2013).

View Video