Summary

Opførelse af Microdrive Arrays for kroniske Neural Recordings i Awake Behaving Mus

Published: July 05, 2013
doi:

Summary

Udformningen og montage af Microdrives til in vivo elektrofysiologiske optagelser af hjernens signaler fra musen er beskrevet. Ved at binde mikroelektrode bundter til robuste køreklare luftfartsselskaber giver disse teknikker for langsigtede og stabile neurale optagelser. Det lette design giver mulighed for ubegrænset adfærdsmæssige resultater af dyret følgende drev implantation.

Abstract

State-of-the-art elektrofysiologiske optagelser fra hjerner frit opfører dyr give forskere til samtidig at undersøge de lokale feltpotentialer (LFPs) fra populationer af neuroner og handling potentialer fra individuelle celler, som dyret engagerer sig i eksperimentelt relevante opgaver. Kronisk implanterede Microdrives tillader hjernen optagelser til strække sig over perioder på flere uger. Miniaturiserede drev og lette komponenter tillader disse langsigtede optagelser forekomme i små pattedyr, såsom mus. Ved hjælp tetrodes, der består af tæt flettede bundter af fire elektroder, hvor hver ledning har en diameter på 12,5 um, er det muligt at isolere fysiologisk aktive neuroner i overfladiske områder af hjernen, såsom hjernebarken, dorsal hippocampus, og subiculum, samt som dybere regioner som striatum og amygdala. Desuden er denne teknik sikrer stabile, high-fidelity neurale optagelser, da dyret udfordres med en variety adfærdsmæssige opgaver. Dette håndskrift beskriver flere teknikker, som er blevet optimeret til at optage fra musen hjernen. Først viser vi, hvordan at fabrikere tetrodes, indlæse dem i køreklare rør og guld-plade deres tips for at reducere deres impedans fra MOhm til kQ rækkevidde. For det andet, vi vise, hvordan man konstruere en brugerdefineret mikrodrev samling til transport og bevæge tetrodes lodret, med brug af billige materialer. For det tredje, vi viser trinene for at samle en kommercielt tilgængelig mikrodrev (Neuralynx VersaDrive), der er designet til at bære selvstændigt bevægelige tetrodes. Endelig præsenterer vi repræsentative resultater af lokale feltpotentialer og single-unit signaler opnået i den dorsale subiculum af mus. Disse teknikker kan let modificeres til at rumme forskellige typer af elektrode arrays og optagelse ordninger i musehjernen.

Introduction

Anvendelsen af mikroelektrode teknik til optagelse ekstracellulære neurale signaler in vivo har en lang og værdsat tradition i neurovidenskab 1, 2. Evnen til at optage elektriske aktivitet fra mange områder af hjernen i frit opfører dyr er dog en nyere teknologi, der bliver mere og mere almindeligt som de softwarepakker til erhvervelse, analyse og diskrimination af neurale signaler bliver mere sofistikerede og brugervenlige 3, 4.. De teknologiske fremskridt på software siden er også blevet ledsaget af reduktioner i vægt og hovedparten af ​​implantabelt udstyr, som er blevet skaleret ned tilstrækkeligt til optagelse i små pattedyr, såsom mus. Ved at bruge letvægts (hovedsagelig plast) komponenter, er forskere i stand til at konstruere Microdrives der giver mulighed for uafhængig positionering af elektroder eller tetrodes at målrette en bred vifte af hjernen regioner 5-7. Selv dybe hjernens strukturer, såsomamygdala 6 og striatum 5 kan rutinemæssigt målrettet med udvælgelsen af en passende lang drivskrue. Disse optagelse teknikker give forskere til at opnå high-fidelity neurale signaler, og er i register med den elektriske aktivitet i enkelte neuroner indspillet intracellulært 8, 9. Ved hjælp af disse typer af Microdrives, har vi med succes indspillet single-enheder fra mus i op til to måneder efter implantation 10. Desuden har den lette karakter af indretningerne (ca. 1,5-2,0 g) resulterede i adfærdsmæssige ydeevne, der er sammenlignelig med ikke-implanterede mus i mange adfærdsmæssige opgaver. Især har vi påvist, at implanterede mus udviser normale udførelse i den nye objekt anerkendelse opgave 10 og objektet sted opgave (upublicerede data).

Brugen af ​​Microdrives koblet til flere tetrodes giver forskerne at overvåge og analysere neurale aktivitet på netværksniveausamtidig optagelse fra flere single-enheder i hjernen. Optagelse med disse tetrodes har flere store fordele for unit identifikation og gør det muligt høj nøjagtighed erhvervelse og diskrimination af multiple single-enheder 11. Vi beskriver, hvordan at fabrikere og guld-plade tetrode bundter og efterfølgende indlæse dem i køreklare elektrode luftfartsselskaber. En type drev luftfartsselskab, vi beskriver, er kommercielt tilgængelige, og den anden er en enkel, men let udvides, drev design, der kan rumme flere luftfartsselskaber og tetrode arrangementer uden en betydelig investering af ressourcer.

Protocol

1.. Tetrode Fabrication Start med at bruge isolerede 12,5 um (0,0005 ") diameter core platin-iridium wire fra Californien Fin Wire. Længden af ​​wiren skal skæres i passende længde for målet struktur. F.eks tråden skæres til mindst 30 cm lang til målretning ryggens subiculum eller hippocampus. Fold tråden over på midten, så at der er to parallelle tråde, der vil være 15 cm i længden. Drapere midtpunktet af denne ledning over en vandret arm til dannelse fire parallelle tråde p?…

Representative Results

<p class="jove_content"> Efter implantering af mikrodrevet og sænke elektroderne til de tilsigtede hjernen mål, en forstærket dataopsamlingssystem, såsom en Neuralynx Lynx-8, der er nødvendig til optagelse neurale signaler. Repræsentative neurale optagelser af lokale feltpotentialer (LFPs) samt single-unit action potentialer (ofte kaldet "spikes") fra muse dorsale subiculum er vist i<strong> Figur 2</strong>. LFP signaler blev samplet ved 3 kHz og båndpasfiltrerede mellem 0,1-500 Hz (<strong> 2A</strong> Og<stron…

Discussion

Vi har beskrevet en række teknikker til konstruktion lette og kompakte Microdrives til optagelse af ekstracellulære enhed og marken potentielle aktivitet i mus. Ved at bygge brugerdefinerede Microdrives med baser gammeldags fra akrylglas (methylmethacrylat), kan det centrale system, der let tilpasses til flere drev og for målretning af en bred vifte af neurale områder. Vi har med succes ændret systemet til optagelse fra flere hjerne targets og med større arrays til optagelser i mus. Med yderligere modifikation kan…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Daniel Carpi for hans hjælp og tidlig bidrag til dette projekt. Vi takker også Lucrecia Novoa for hendes hjælp med illustrationer og billeder. Dette arbejde blev støttet af NIH / NIAID programmet tilskud 5P01AI073693-03.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
0.0005″ (12.5 μM) diameter Platinum-Iridium wire California Fine Wire CFW#100-167 HML VG insulated www.calfinewire.com
0.002″ (50 μM) diameter Stableohm 675 wire California Fine Wire CFW# 100-188 HML insulated Ni-Cr
polyamide tubing Polymicro Technologies 1068150020 99 micron I.D., 166 micron O.D. www.polymicro.com
brass guides World Plastics Inc 3.3 x 6.6 mm
Delrin blocks World Plastics Inc 3.13 x 2.5 mm
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 00-90 x 1/2 drive screw www.jimorrisco.com
hex brass nuts J.I. Morris Co. 00-90
Fillister head brass screws J.I. Morris Co. 000-120 x 3/32 EIB mount and ground screw
plexiglass acrylic Canal Street Plastics 5 mm thick, clear, www.cpcnyc.com
cyanoacrylate Krazy Glue 2 g tube
electronic interface board Neuralynx EIB-18 www.neuralynx.com
non-cyanide gold solution SIFCO SIFCO 5355 www.sifcoasc.com
VersaDrive 4 Neuralynx four tetrode model
tetrode assembly station Neuralynx
motorized tetrode spinner Neuralynx tetrode spinner 2.0
VersaDrive jig Neuralynx
soldering iron Radio Shack 64-2802B www.radioshack.com
nanoZ Neuralynx
small bit drill/driver Ram Products Rampower 35 with footpedal controller, www.ramprodinc.com
drill bits Small Parts, Inc. 3/32″ bits, www.smallpartsinc.com
dissecting microscope Olympus SZ-60 www.olympusamerica.com
heat gun Alphawire Fit gun 3 use setting “1” only, www.alphawire.com
26 AWG copper wire Arcor Electronics F26 for ground wires, www.arcorelectronics.com
soldering flux Eagle 2 oz, #205
0.02″ diameter solder Kester 24-6337-0010 www.kester.com
benchtop vise Vacu-Vise Model 300
fiber optic light Nikon MKII dual light arms, www.nikon.com
5-min epoxy Allied Electronics 25 ml, www.alliedelec.com
fine tweezers Roboz Surgical Instrument Co. RS-4907, RS-5010 INOX material, www.roboz.com
micro dissecting scissors Roboz Surgical Instrument Co. RS-5880

Table 1. Materials and reagents used for constructing tetrodes and microdrives.

Riferimenti

  1. Recce, M. L., O’Keefe, J. The tetrode: a new technique for multi-unit extracellular recording. Soc. Neurosci. Abstr. 15, 1250 (1989).
  2. O’Keefe, J., Recce, M. Phase relationship between hippocampal place units and the EEG theta rhythm. Hippocampus. 3, 317-330 (1993).
  3. Chen, G., Wang, L. P., Tsien, J. Z. Neural population-level memory traces in the mouse hippocampus. PLoS ONE. 4 (12), e8256 (2009).
  4. Buzsáki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. The origin of extracellular fields and currents — EEG, ECoG, LFP, and spikes. Nat. Rev. Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).
  5. Tort, A. B., Kramer, M. A., et al. Dynamic cross-frequency coupling of local field potential oscillations in rat striatum and hippocampus during performance of a T-maze task. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 105 (51), 20517-20522 (2008).
  6. Seidenbecher, T., Laxmi, R., et al. Amygdalar and hippocampal theta rhythm synchronization during fear memory retrieval. Science. 301 (5634), 846-850 (2003).
  7. Yamamoto, J., Wilson, M. A. Large-scale chronically implantable precision motorized microdrive array for freely behaving animals. J. Neurophysiol. 100 (4), 2430-2440 (2008).
  8. Harris, K. D., Henze, D. A., et al. Accuracy of tetrode spike separation as determined by simultaneous intracellular and extracellular measurements. J. Neurophysiol. 84 (1), 401-414 (2000).
  9. Henze, D. A., Borhegyi, Z., et al. Intracellular features predicted by extracellular recordings in the hippocampus in vivo. J. Neurophysiol. 84 (1), 390-400 (2000).
  10. Chang, E. H., Huerta, P. T. Neurophysiological correlates of object recognition in the dorsal subiculum. Front. Behav. Neurosci. 6, 46 (2012).
  11. Gray, C. M., Maldonado, P. E., et al. Tetrodes markedly improve the reliability and yield of multiple single-unit isolation from multi-unit recordings in cat striate cortex. J. Neurosci. Methods. 63 (1-2), 43-54 (1995).
  12. O’Keefe, J., Dostrovsky, J. The hippocampus as a spatial map. Preliminary evidence from unit activity in the freely-moving rat. Brain Res. 34 (1), 171-175 (1971).
  13. Wilson, M. A., McNaughton, B. L. Dynamics of the hippocampal ensemble code for space. Science. 261 (5124), 1055-1058 (1993).
  14. Buzsáki, G. . Rhythms of the Brain. , (2006).
  15. McHugh, T. J., Blum, K. I., et al. Impaired hippocampal representation of space in CA1-specific NMDAR1 knockout mice. Cell. 87 (7), 1339-1349 (1996).
  16. Resnik, E., McFarland, J. M., et al. The effects of GluA1 deletion on the hippocampal population code for position. J. Neurosci. 32 (26), 8952-8968 (2012).
  17. Cacucci, F., Yi, M., et al. Place cell firing correlates with memory deficits and amyloid plaque burden in Tg2576 Alzheimer mouse model. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (22), 7863-7868 (2008).
  18. Sigurdsson, T., Stark, K. L., et al. Impaired hippocampal-prefrontal synchrony in a genetic mouse model of schizophrenia. Nature. 464 (7289), 763-767 (2010).
  19. Engel, A. K., Moll, C. K., et al. Invasive recordings from the human brain: clinical insights and beyond. Nat. Rev. Neurosci. 6 (1), 35-47 (2005).
  20. Cash, S. S., Halgren, E., et al. The human K-complex represents an isolated cortical down-state. Science. 324 (5930), 1084-1087 (2009).
check_url/it/50470?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Chang, E. H., Frattini, S. A., Robbiati, S., Huerta, P. T. Construction of Microdrive Arrays for Chronic Neural Recordings in Awake Behaving Mice. J. Vis. Exp. (77), e50470, doi:10.3791/50470 (2013).

View Video