Summary

生殖様細胞に新生マウス皮膚由来幹細胞の分化<em>インビトロ</em

Published: July 16, 2013
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Summary

近年、インビトロ培養法において用い生殖細胞の形成は、体性幹細胞のいくつかの異なるタイプを使用して実証されている。この記事では、視覚的に早期の卵母細胞様細胞に新生マウス由来幹細胞の分化を紹介します。

Abstract

生殖細胞の形成と分化を研究することは、伝統的に低い細胞数と途上胚奥深くその場所のために非常に困難であった。 試験管ベースのシステム 、 "クローズド"の可用性は、配偶子形成の我々の理解のための貴重な証明することができた。新生児マウス皮膚から単離された体性幹細胞から卵​​母細胞様細胞(OLCs)の形成が実証されており、このビデオプロトコルで可視化することができる。結果OLCsはそのようなのOct4、ヴァーサ、BMP15、そしてSCP3として卵母細胞と一致し、様々なマーカーを発現する。しかし、彼らは成熟や減数分裂を完了するために、障害のために受精を受けることができないままです。このプロトコルは、より成熟した配偶子に生殖細胞の初期段階の形成と分化を研究するために有用であるシステムを提供します。初期の分化の間のOct4(電位生殖細胞様細胞)を発現する細胞の数をfしかしながら、現在、約5%に達するOLCsのormationは比較的非効率的なままです。特別な注意を出発細胞集団の健康と早いパッセージであることを確認するために取られるべきであるにもかかわらずプロトコルは比較的単純です。

Introduction

初期胚発生時には、配偶子形成は性腺尾根の始原生殖細胞(PGC)の形成、移行、および最終的に植民地化を含む一連の段階を介して行われます。この時間の間のPGCがますます成熟配偶子1に増殖および分化を受ける。始原生殖細胞は胚の後腸に尿膜のベースから、最終的には最終的には性腺尾根に定着背壁に沿って移動しているという事実には、2を勉強するには、それらを非常に困難になります。分野における進歩にもかかわらず、PGCの形成および分化を理解しようとする研究は、その限られた数、位置、渡り鳥自然3,4によって妨げてきた。

近年、胚性幹細胞は、 インビトロ 5,6 生殖細胞を形成する電位を有することが示されている。同様に、いくつかの体性幹細胞は、生殖細胞のfollのを形成する可能性を有することが示されている体外培養7-11 おかげ。最近生まれたばかりのマウスの皮膚から単離された細胞を幹生殖細胞様細胞と初期段階の卵母細胞12in vitroで分化させた。分化中のOct4を発現する幹細胞のサブセットが増加し、構造が類似している卵丘 – 卵母細胞複合体を形成した。卵母細胞様細胞(OLCs)培養物から採取し、天然の卵母細胞と比較することができる。 40-45程度を測定するこの培養方法のOLCsを使用して得られるようGdf9b、VASA、そしてDAZLなどの卵母細胞に発現する類似のマーカー。現在までに生じOLCsが成熟することができないまま、12を受精する。

OLCsは、これらのOLCsを形成するために使用されるプロトコルは、依然として内の初期段階の生殖細胞の形成と発展を研究するためのアッセイとして有用性を有することができる機能することができないままであるが、インビトロ系で閉じた。そうからOLCsの形成を議論初版発行マチック幹細胞は、幹細胞源8として胎児のブタ皮膚を利用した。分化誘導時に早期に形成されたPGC様細胞は、OCT4としてOLCsと急行などPGCマーカーにVASA、STELLA、C-KIT、及びDAZL 13の前駆体であることが示されたその研究に拡大。このデータは、in vitroでの生殖細胞の形成と分化を研究するために、このシステムを利用する可能性をサポートしています。新生児マウスの皮膚からOLCsを形成するために利用プロトコルはこのビデオの記事で実証される。このプロトコルは、in vitroモデルにおけるそれら増殖および分化に重要な要素を明らかにするための手段を提供することができる生殖細胞の発達を研究するために提供する。

Protocol

1。メディアの準備実験が行われる細胞培養インキュベーターで緩めキャップを使用し、場所の前にメディア2-3時間を準備します。現在のプロトコルで使用されるメディア: 1×B27、40 ngの/ mlのbFGFを、および20 ngの/ mlのEGFを補ったDMEM/F12から成る細胞培地を食い止める準備。 0.05 IUのFSH、0.03 IU LH、3 mg / mlのBSA、5μL/ mlのITS、0.23 mMのピルビン酸ナトリウム、1 mg / mlのフェツ?…

Representative Results

最初に細胞が培養皿の底に付着すると広がる。分化小さな浮遊OCT4陽性細胞に42から72時間後に形成し、増殖する( 図1A)。まもなくこれらの細胞の可視化後大半が消え、付着した細胞は、培養底に密集コロニー凝集体を形成します。数日の後、これらの凝集体は、培養表面からデタッチします。これらの凝集体のいくつかにおいて大きなセル( 図1bおよび図1c)…

Discussion

官能OLCsを最新の状態にすると、in vitroアッセイを使用して完全に開発されていない。最近、林による研究は、in vitroで形成されており、さらなる開発14 インビボで導入細胞PGC-等から子孫を産生することができた。それらはインビボで移植後に回収し、細胞のようPGCを形成することができたES細胞または人工多能性細胞で始まるが、成熟受精、および…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

PWDは、ウエスタン大学のジェラルドM.キダーにヘルスリサーチフェローシップ(CIHR)とCIHR助成のカナダの協会によってサポートされています。著者はまた、ここで提示されたプロトコルの開発を支援するためのゲルフ大学でJulang李を承認したいと思います。

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
DMEM/F12 Invitrogen 12500
B27 Invitrogen 17504044
EGF Invitrogen PHG0311
bFGF Invitrogen PHG0266
ITS Invitrogen 41400-045
BSA Sigma A-6003
Sodium Pyruvate Invitrogen 11360-070
Fetuin Sigma F3385
FSH Sioux Biochemicals 915
LH Sioux Biochemicals 925
M199 Invitrogen 31100-035
24 well plates Nunc 144530
10 cm dishes VWR 25384-088
15 ml tubes BD 352095

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Citazione di questo articolo
Dyce, P. W. Differentiation of Newborn Mouse Skin Derived Stem Cells into Germ-like Cells In vitro. J. Vis. Exp. (77), e50486, doi:10.3791/50486 (2013).

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