Summary

Transplantatie van geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide mesoangioblast-achtige myogene voorlopers in muismodellen van spierregeneratie

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

Geïnduceerde pluripotente stamcel (iPSC)-afgeleide myogene voorlopers zijn veelbelovende kandidaten voor celtherapiestrategieën om spierdystrofieën te behandelen. Dit protocol beschrijft transplantatie en functionele metingen die nodig zijn om de engraftment en differentiatie van iPSC-afgeleide mesoangioblasten (een type spiergenitors) te evalueren in muismodellen van acute en chronische spierregeneratie.

Abstract

Patiënt-afgeleide iPSC’s kunnen een onschatbare bron van cellen zijn voor toekomstige autologe celtherapieprotocollen. iPSC-afgeleide myogene stam-/voorlopercellen die lijken op pericyt-afgeleide mesoangioblasten (iPSC-afgeleide mesoangioblast-achtige stam/voorlopercellen: IDEM’s) kunnen worden vastgesteld op basis van iPSC’s die worden gegenereerd door patiënten die getroffen zijn door verschillende vormen van spierdystrofie. Patiëntspecifieke IDEMs kunnen genetisch worden gecorrigeerd met verschillende strategieën(bijv. lentivirale vectoren, menselijke kunstmatige chromosomen) en worden versterkt in hun myogene differentiatiepotentieel bij overexpressie van de myogeneseregulator MyoD. Dit myogene potentieel wordt vervolgens in vitro beoordeeld met specifieke differentiatietesten en geanalyseerd door immunofluorescentie. Het regeneratieve potentieel van IDEM’s wordt verder in vivogeëvalueerd , bij intramusculaire en intra-arteriële transplantatie in twee representatieve muismodellen met acute en chronische spierregeneratie. De bijdrage van IDEMs aan de gastheer skeletspier wordt vervolgens bevestigd door verschillende functionele tests bij getransplanteerde muizen. In het bijzonder wordt de verbetering van de motorische capaciteit van de dieren bestudeerd met loopbandtests. Celengraftatie en differentiatie worden vervolgens beoordeeld door een aantal histologische en immunofluorescentietesten op getransplanteerde spieren. Over het algemeen beschrijft dit artikel de assays en tools die momenteel worden gebruikt om de differentiatiecapaciteit van IDEM’s te evalueren, met de nadruk op de transplantatiemethoden en daaropvolgende uitkomstmaten om de effectiviteit van celtransplantatie te analyseren.

Introduction

Mesoangioblasten (MABs) zijn met vaten geassocieerde spierfogenen afgeleid van een subset van pericyten1-3. Het belangrijkste voordeel van MABs ten opzichte van canonieke spiervoorlopers zoals satellietcellen4 ligt in hun vermogen om de vaatwand over te steken wanneer ze intra-arteriële worden geleverd en dragen dus bij aan skeletspierregeneratie in celtherapieprotocollen. Deze functie is geëvalueerd en bevestigd in zowel murine- als hondenmodellen van spierdystrofie1,5,6. Deze preklinische studies hebben de basis gelegd voor een first-in-man fase I/II klinische studie op basis van intra-arteriële transplantatie van donor HLA-identieke BLB’s bij kinderen met Duchenne spierdystrofie (EudraCT nr. 2011-000176-33; momenteel in het San Raffaele Ziekenhuis in Milaan, Italië). Een van de belangrijkste hindernissen van celtherapiebenaderingen, waarbij miljarden cellen nodig zijn om de spier van een heel lichaam te behandelen, is het beperkte proliferatieve potentieel van het “geneesmiddel” (de cellen). Bovendien is onlangs aangetoond dat het niet mogelijk is om BBB’s te verkrijgen van patiënten die getroffen zijn door sommige vormen van spierdystrofieën, omdat het voorkomt bij spierdystrofie 2D (LGMD2D; OMIM #608099)7.

Om deze beperkingen te overwinnen, is onlangs een protocol opgesteld voor het afleiden van MAB-achtige stam-/voorlopercellen uit menselijke en muriene iPSC’s7. Deze procedure genereert gemakkelijk uitbreidbare celpopulaties met een vasculaire gensignatuur en immunofenotype dat sterk lijkt op volwassen spier-afgeleide MABs. Bij expressie van de myogene regulerende factor MyoD ondergaan zowel muriene als menselijke IDEMs (respectievelijk MIDEMs en HIDEMs) terminale skeletspierdifferentiatie. Om dit doel te bereiken kunnen IDEMs worden getransduceerd met vectoren die myoD-expressie kunnen stimuleren, constitutief of op een inductieve manier8-10. Er wordt een lentivirale vector gebruikt die MyoD cDNA bevat die is gefuseerd met de oestrogeenreceptor (MyoD-ER), waardoor de nucleaire translocatie op tamoxifen (een oestrogeenanaloog) toediening11mogelijk is. Deze strategie resulteert in de vorming van hypertrofische multinucleated myotubes, met een hoog rendement7. Met name IDEM’s zijn niet-tumorigeen, kunnen bij transplantatie in gastheerspieren worden getransgrafteerd en onderscheiden en kunnen genetisch worden gecorrigeerd met behulp van verschillende vectoren(bijv. lentivirussen of menselijke kunstmatige chromosomen), waardoor de weg wordt vrijgemaakt voor toekomstige autologe therapeutische strategieën. De afleiding, karakterisering en transplantatie van IDEM’s zijn beschreven in de bovenstaande publicatie7. Dit protocoldocument beschrijft de tests die zijn uitgevoerd om de in vitro myogene differentiatie van IDEM’s te evalueren en de daaropvolgende uitkomstmetingen om de werkzaamheid van hun transplantatie in muismodellen van spierregeneratie te testen.

Protocol

1. Beoordeling van myogene en engraftmentpotentiaal In vitro: MyoD-geïnduceerde differentiatie Genereer een stabiele cellijn van IDEM’s die worden getransduceerd met de tamoxifen-inducerende MyoD-ER lentivirale vector, waarbij de multipliciteit van infectie (MOI; b.v. 1, 5 en 50) waarbij de in punt 1.1.9 (MyHC) beschreven kleuring wordt gebruikt als resultaat van de efficiëntie van de procedure. Bedek een schaal van 3,5 cm met 1 ml 1% Matrigel en incubeer gedurende 30 min…

Representative Results

De gerapporteerde representatieve resultaten volgen de belangrijkste in vitro/in vivo-assays die in de workflow in figuur 1worden weergegeven . 48 uur na toediening van 4OH-tamoxifen MyoD-positieve kernen zijn identificeerbaar binnen MyoD-ER-getransduceerde IDEM’s in cultuur (Figuur 2A). De cellen fuseren en differentiëren vervolgens in multinucleated myotubes (Figuur 2B). Wanneer IDEM’s intramusculair worden getransplanteerd in een murien model van acuut spier…

Discussion

iPSC ‘s kunnen voor onbepaalde tijd worden uitgebreid met behoud van hun zelfvernieuwingspotentieel en dus worden gericht op differentiering in een breed scala aan cellijnen12. Om deze en andere redenen worden iPSC-afgeleide stam-/voorlopercellen beschouwd als een veelbelovende bron voor autologe gen- en celtherapiebenaderingen13. Een eerder gepubliceerd werk van de auteurs rapporteerde de generatie van muis- en menselijke myogene voorlopers van iPSC’s met een fenotype vergelijkbaar met dat van peri…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs danken Giulio Cossu, Martina Ragazzi en het hele laboratorium voor nuttige discussie en ondersteuning, en Jeff Chamberlain voor het vriendelijk leveren van MyoD-ER vector. Alle experimenten met levende dieren werden voltooid in overeenstemming met en in overeenstemming met alle relevante regelgevende en institutionele instanties, voorschriften en richtsnoeren. Het werk in het auteurslaboratorium wordt ondersteund door de Uk Medical Research Council, de 7e kaderprojecten Optistem and Biodesign van de Europese Gemeenschap en het Italiaanse Duchenne Parent Project.

Materials

REAGENTS
MegaCell DMEM Sigma M3942
DMEM Sigma D5671
IMDM Sigma I3390
Horse serum Euroclone ECS0090L
Foetal Bovine Serum Lonza DE14801F
PBS Calcium/Magnesium free Lonza BE17-516F
L-Glutammine Sigma G7513
Penicilline/Streptomicin Sigma P0781
2-Mercaptoethanol Gibco 31350-010
ITS (Insulin-Transferrin-Selenium) Gibco 51500-056
Non-essential amino acid solution Sigma M7145
Fer-In-Sol Mead Johnson
Ferlixit Aventis
Oleic Acid Sigma 01257-10 mg
Linoleic Acid Sigma L5900-10 mg
Human bFGF Gibco AA 10-155
Grow factors-reduced Matrigel Becton Dickinson 356230
Trypsin Sigma T3924
Sodium heparin Mayne Pharma
Trypan blue solution Sigma T8154 HARMFUL
Patent blue dye Sigma 19, 821-8
EDTA Sigma E-4884
Paraformaldehyde TAAB P001 HARMFUL
Tamoxifen Sigma T5648
4-OH Tamoxifen Sigma H7904
pLv-CMV-MyoD-ER(T) Addgene 26809
Cardiotoxin Sigma C9759 HARMFUL
Povidone iodine
Tragachant gum MP biomedicals 104792
Isopenthane VWR 24,872,323
Tissue-tek OCT Sakura 4583
Sucrose VWR 27,480,294
Polarized glass slides Thermo J1800AMNZ
Eosin Y Sigma E4382
Hematoxylin Sigma HHS32
Masson's trichrome Bio-Optica 04-010802
Mouse anti Myosin Heavy Chain antibody DSHB MF20
Mouse anti Lamin A/C antibody Novocastra NLC-LAM-A/C
4/11/13 Cappel 559762
Hoechst 33342 Sigma fluka B2261
Rabbit anti Laminin antibody Sigma L9393
MATERIALS AND EQUIPMENT
Adsorbable antibacteric suture 4-0 Ethicon vcp310h
30G needle syringe BD 324826
Treadmill Columbus instrument
Steromicroscope Nikon SMZ800
Inverted microscope Leica DMIL LED
Isoflurane unit Harvad Apparatus
Fiber optics Euromecs (Holland) EK1
Heating pad Vet Tech C17A1
Scalpels Swann-Morton 11REF050
Surgical forceps Fine Scientific Tools 5/45
High temperature cauteriser Bovie Medical AA01
MEDIA COMPOSITION
Media composition is detailed below.
HIDEMs growth medium:
  • MegaCell Dulbecco's Modified Eagle Medium (MegaCell DMEM)
  • 5% fetal bovine serum (FBS)
  • 2 mM glutamine
  • 0.1 mM β-mercaptoethanol
  • 1% non essential amino acids
  • 5 ng / ml human basic fibroblast growth factor (bFGF)
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
Alternatively, if some of the above reagents are not available, HIDEMs can be grown in:
  • Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)
  • 10 % FBS
  • 2 mM glutamine
  • 0.1 mM β-mercaptoethanol
  • 1% Non essential amino acids (NEAA)
  • 1% ITS (insulin / transferrin / selenium)
  • 5 ng / ml human bFGF
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
  • 0.5 μM oleic and linoleic acids
  • 1.5 μM Fe2+ (Fer-In-Sol)
  • 0.12 μM Fe3+ (Ferlixit)
MIDEMs growth medium:
  • DMEM
  • 20 % FBS
  • 2 mM glutamine
  • 5 ng / ml human bFGF
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
Differentiation medium:
  • DMEM
  • 2 % Horse Serum (HS)
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
  • 2 mM glutamine


Table 1. List of Reagents, Materials, Equipment, and Media.

Riferimenti

  1. Dellavalle, A., et al. Pericytes of human skeletal muscle are myogenic precursors distinct from satellite cells. Nat. Cell Biol. 9, 255-267 (2007).
  2. Minasi, M. G., et al. The meso-angioblast: a multipotent, self-renewing cell that originates from the dorsal aorta and differentiates into most mesodermal tissues. Development. 129, 2773-2783 (2002).
  3. Dellavalle, A., et al. Pericytes resident in postnatal skeletal muscle differentiate into muscle fibres and generate satellite cells. Nat. Commun. 2, 499 (2011).
  4. Tedesco, F. S., Dellavalle, A., Diaz-Manera, J., Messina, G., Cossu, G. Repairing skeletal muscle: regenerative potential of skeletal muscle stem cells. J. Clin. Invest. 120, 11-19 (2010).
  5. Sampaolesi, M., et al. Cell therapy of alpha-sarcoglycan null dystrophic mice through intra-arterial delivery of mesoangioblasts. Science. 301, 487-492 (2003).
  6. Sampaolesi, M., et al. Mesoangioblast stem cells ameliorate muscle function in dystrophic dogs. Nature. 444, 574-579 (2006).
  7. Tedesco, F. S., et al. Transplantation of Genetically Corrected Human iPSC-Derived Progenitors in Mice with Limb-Girdle Muscular Dystrophy. Sci. Transl. Med. 4, (2012).
  8. Tedesco, F. S., et al. Stem cell-mediated transfer of a human artificial chromosome ameliorates muscular dystrophy. Sci. Transl. Med. 3, (2011).
  9. Lattanzi, L., et al. High efficiency myogenic conversion of human fibroblasts by adenoviral vector-mediated MyoD gene transfer. An alternative strategy for ex vivo gene therapy of primary myopathies. J. Clin. Invest. 101, 2119-2128 (1998).
  10. Chaouch, S., et al. Immortalized skin fibroblasts expressing conditional MyoD as a renewable and reliable source of converted human muscle cells to assess therapeutic strategies for muscular dystrophies: validation of an exon-skipping approach to restore dystrophin in Duchenne muscular dystrophy cells. Hum. Gene Ther. 20, 784-790 (2009).
  11. Kimura, E., et al. Cell-lineage regulated myogenesis for dystrophin replacement: a novel therapeutic approach for treatment of muscular dystrophy. Hum. Mol. Genet. 17, 2507-2517 (2008).
  12. Yamanaka, S. Induced pluripotent stem cells: past, present, and future. Cell Stem Cell. 10, 678-684 (2012).
  13. Wu, S. M., Hochedlinger, K. Harnessing the potential of induced pluripotent stem cells for regenerative medicine. Nat. Cell Biol. 13, 497-505 (2011).
check_url/it/50532?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Gerli, M. F. M., Maffioletti, S. M., Millet, Q., Tedesco, F. S. Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration. J. Vis. Exp. (83), e50532, doi:10.3791/50532 (2014).

View Video