Summary

Dans la migration cellulaire in vitro et Invasion dosages

Published: June 01, 2014
doi:

Summary

Couramment utilisés, des méthodes très accessibles pour examiner la migration cellulaire et l'invasion in vitro sont décrits. La première méthode est la fermeture de la plaie dosage de cellules qui mesure la motilité cellulaire. La deuxième méthode est la migration et l'invasion essai transwell qui évalue la capacité chimiotactique et invasif des cellules.

Abstract

Migration is a key property of live cells and critical for normal development, immune response, and disease processes such as cancer metastasis and inflammation. Methods to examine cell migration are very useful and important for a wide range of biomedical research such as cancer biology, immunology, vascular biology, cell biology and developmental biology. Here we use tumor cell migration and invasion as an example and describe two related assays to illustrate the commonly used, easily accessible methods to measure these processes. The first method is the cell culture wound closure assay in which a scratch is generated on a confluent cell monolayer. The speed of wound closure and cell migration can be quantified by taking snapshot pictures with a regular inverted microscope at several time intervals. More detailed cell migratory behavior can be documented using the time-lapse microscopy system. The second method described in this paper is the transwell cell migration and invasion assay that measures the capacity of cell motility and invasiveness toward a chemo-attractant gradient. It is our goal to describe these methods in a highly accessible manner so that the procedures can be successfully performed in research laboratories even just with basic cell biology setup.

Introduction

La motilité est une caractéristique essentielle de cellules vivantes. La migration cellulaire est impliquée dans la conception de la vie, le développement embryonnaire, la réponse immunitaire, et de nombreux processus pathologiques, tels que les métastases du cancer et l'inflammation 9.1. Par conséquent, les méthodes pour étudier le comportement migratoire cellule sont des outils de recherche très utiles pour un large éventail de disciplines en sciences biomédicales, biologie, bio-ingénierie, et des domaines connexes.

L'étude de la migration cellulaire dans la recherche sur le cancer est d'un intérêt particulier comme la principale cause de décès chez les patients atteints de cancer est lié à la progression métastatique. Pour le cancer de se propager et diffuser dans tout le corps, les cellules cancéreuses doivent migrer et envahir par la matrice extracellulaire (ECM), intravasate dans la circulation sanguine, attacher à un site distant, et enfin s'extravaser pour former foyers distants 1,10-12. Diverses méthodes biologiques peuvent être utilisés pour étudier ces événements en détail. La culture cellulaire enroulé une fermetured la migration transwell et d'invasion des essais sont largement utilisés dans la communauté scientifique 1,10. Ces tests peuvent fournir les données nécessaires pouvant permettre une compréhension de la façon dont un type cellulaire particulier peut spontanément migrer ou répondre à une chimio-attractif et directionnelle migrer vers elle. Plusieurs phénotypes migratoires ont été décrits. Les cellules peuvent migrer dans une forme de cellule unique tel que vu dans mésenchymateuses ou mouvement amiboïde comme ou par le mouvement multicellulaire marqué la migration ou de la cellule collective streaming 13. Procédé de mouvement utilisée dans les cellules mobiles peut être facilement observée à l'aide de la culture cellulaire essai de fermeture de plaie.

Parmi les nombreuses façons d'étudier la migration cellulaire, l'essai de fermeture de plaie de la cellule est l'un des plus simples. Cette méthode est utile pour déterminer la capacité de migration des masses de cellules entières. Lorsque franchi une nouvelle étape, il peut être utilisé pour observer les caractéristiques morphologiques de cellules individuelles pendant la migration 14. Suite à l'analyse de la fermeture de la plaie de nombreux phénotypes peuvent être révélés. Mesure de la distance fermé au fil du temps lorsque l'on compare à un contrôle peut révéler des changements de migration spécifiques ou un phénotype migratoire avec facultés affaiblies qui était inconnu auparavant. En outre, seule la formation de lamellipode cellulaire, la queue rentrée, et le mouvement directionnel peuvent donner des indices pour ce qui peut être altérée ou renforcée dans les cellules d'intérêt 14.

La migration des dosages transwell et d'invasion peuvent être utilisées pour analyser la capacité des cellules à répondre de manière directionnelle simples à divers chimio-attractants si elles sont des chimiokines, des facteurs de croissance, des lipides, ou des nucléotides 4,5,8,15,16. On peut également évaluer la capacité migratoire différentielle due à la surexpression d'un récepteur de 1,14. Ces dosages peuvent également être utilisées pour identifier et caractériser les régulateurs clés de la migration cellulaire, tels que la famille Rho des petites GTPases 2. Suite à ces court et facilement accessibles essais, le mode de la migration cellulaire et la capacité d'une cellule à envahir en une matrice 3-D peuvent également être déterminées.

Protocol

1. Culture cellulaire fermeture de la plaie Assay Détacher les cellules de la plaque de culture de tissu en utilisant 0,25% de solution de trypsine-EDTA. cellules à granules dans un tube conique de 15 ml par centrifugation, aspirer le surnageant et les cellules dans un milieu de culture re-suspension. Plate le nombre approprié de cellules dans une plaque à 6 puits à 100% de confluence dans les 24 heures. Remarque: Les essais peuvent être nécessaires pour déterminer le moment et le nombre de cel…

Representative Results

L'essai de fermeture de plaie et la détermination de la migration cellulaire Transwell présentées ici ont été effectuées en utilisant des cellules de souris B16F10 de mélanome comme un système modèle. Dans l'essai de fermeture de plaie, B16F10 cellules ont été ensemencées dans une plaque de culture tissulaire à 6 puits et cultivées jusqu'à 100% de confluence dans les 24 heures. Une plaie d'environ 700 um de large a été générée à l'aide d'une pointe de pipette et la fermeture …

Discussion

La migration cellulaire est un aspect important d'étudier en recherche sur le cancer et il peut également être appliquée à des études de guérison de développement, immunologiques et la plaie. La culture cellulaire enroulé essai de fermeture et la migration des cellules transwell et invasion tests révèlent des informations détaillées sur les comportements migratoires des cellules et peut être utilisée pour étudier les mécanismes moléculaires de la migration des cellules 1,2,10,14. Notre ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Mike Myles, Sam Saunders, and C.W. Elton at the ECU Multimedia & Technology Services for providing assistance in video production. We acknowledge the grant support from North Carolina Biotechnology Center, Golfers against Cancer, Brody Brothers Endowment Fund, American Heart Association, and ECU/Vidant Cancer Research and Education Fund (L.V.Y. and M.J.R.).

Materials

Dulbecco’s modified Eagle medium (DMEM) Gibco 11995-073
Fetal bovine serum (FBS) Gemini 100106
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich A4503-50G
Trypsin EDTA 0.25% Gibco 25200-056
Dulbecco’s phosphate buffered saline (DPBS) Gibco 14190-250
Crystal violet Sigma C0775-100G Dissolved in water at 0.2%
Cell disassociation buffer Gibco 13151-014
Cell culture incubator Thermo Fisher Scientific Model # 3145
SterilGARD biosafety hood The Baker Company, Inc.  Model # VBM-600
EVOS Fl inverted microscope Thermo Fisher Scientific Model # AMF-4302-US
Tissue culture plate Becton Dickinson 353046 Catalog number varies depending on the type of culture plate
Corning Transwell insert Fisher 07-200-150 Catalog number varies depending on the pore size of the membrane

Riferimenti

  1. Castellone, R. D., Leffler, N. R., Dong, L., Yang, L. V. Inhibition of tumor cell migration and metastasis by the proton-sensing GPR4 receptor. Cancer Lett. 312 (2), 197-208 (2011).
  2. Hall, A. The cytoskeleton and cancer. Cancer Metastasis Rev. 28, (2009).
  3. Lauffenburger, D. A., Horwitz, A. F. Cell migration: a physically integrated molecular process. Cell. 84 (3), 359-369 (1996).
  4. Peter, C., et al. Migration to apoptotic "find-me" signals is mediated via the phagocyte receptor G2A. J. Biol. Chem. 283 (9), 5296-5305 (2008).
  5. Radu, C. G., Yang, L. V., Riedinger, M., Au, M., Witte, O. N. T cell chemotaxis to lysophosphatidylcholine through the G2A receptor. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 101 (1), 245-250 (2004).
  6. Buul, J. D., Hordijk, P. L. Signaling in leukocyte transendothelial migration. Arterioscler Thromb. Vasc. Biol. (5), 824-833 (2004).
  7. Yang, L. V., Heng, H. H., Wan, J., Southwood, C. M., Gow, A., Li, L. Alternative promoters and polyadenylation regulate tissue-specific expression of Hemogen isoforms during hematopoiesis and spermatogenesis. 228 (4), 606-616 (2003).
  8. Yang, L. V., Radu, C. G., Wang, L., Riedinger, M., Witte, O. N. Gi-independent macrophage chemotaxis to lysophosphatidylcholine via the immunoregulatory GPCR G2A. Blood. 105 (3), 1127-1134 (2005).
  9. Yoshida, M., Yoshida, K. Sperm chemotaxis and regulation of flagellar movement by Ca2+. Mol. Hum. Reprod. 17 (8), 457-465 (2011).
  10. Albini, A. Tumor and endothelial cell invasion of basement membranes. The matrigel chemoinvasion assay as a tool for dissecting molecular mechanisms. Pathol. Oncol. Res. 4 (3), 230-241 (1998).
  11. Fidler, I. J. Critical determinants of metastasis. Semin. Cancer Biol. 12 (2), 89-96 (2002).
  12. Steeg, P. S. Tumor metastasis: mechanistic insights and clinical challenges. Nat. Med. 12 (8), 895-904 (2006).
  13. Roussos, E. T., Condeelis, J. S., Patsialou, A. Chemotaxis in cancer. Nat. Rev. Cancer. 11 (8), 573-587 (2011).
  14. Zhang, Y., et al. Comparative study of 3D morphology and functions on genetically engineered mouse melanoma cells. Integr. Biol. (Camb. 4 (11), 1428-1436 (2012).
  15. Junger, W. G. Purinergic regulation of neutrophil chemotaxis. Cell. Mol. Life Sci. 65 (16), 2528-2540 (2008).
  16. Lazennec, G., Richmond, A. Chemokines and chemokine receptors: new insights into cancer-related inflammation. Trends Mol. Med. 16 (3), 133-144 (2010).
  17. Huang, H. L., et al. Trypsin-induced proteome alteration during cell subculture in mammalian cells. J. Biomed. Sci. 17, (2010).
  18. Cortesio, C. L., Boateng, L. R., Piazza, T. M., Bennin, D. A., Huttenlocher, A. Calpain-mediated proteolysis of paxillin negatively regulates focal adhesion dynamics and cell migration. J. Biol. Chem. 286 (12), 9998-10006 (2011).
  19. Wehrle-Haller, B., Imhof, B. A. Actin microtubules and focal adhesion dynamics during cell migration. Int. J. Biochem. Cell Biol. 35 (1), 39-50 (2003).
check_url/it/51046?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Justus, C. R., Leffler, N., Ruiz-Echevarria, M., Yang, L. V. In vitro Cell Migration and Invasion Assays. J. Vis. Exp. (88), e51046, doi:10.3791/51046 (2014).

View Video