Summary

Mot Biomimicking Wood: Fabricated Fristående Filmer av nanocellulosa, lignin och en syntetisk polykatjon

Published: June 17, 2014
doi:

Summary

Målet med denna forskning var att bilda syntetiska växtcellväggvävnad med användning av skikt-för-skikt montering av nanocellulosa fibriller och isolerade ligninet hopsatt av utspädda vattenhaltiga suspensioner. Ytans mätteknik av kvartskristallmikrovåg och atomkraftsmikroskopi användes för att övervaka bildningen av polymer-polymer nanokompositmaterial.

Abstract

Träbaserade material består av växtcellväggar som innehåller ett skiktat sekundär cellvägg bestående av strukturella polymerer av polysackarider och lignin. Skikt-vid-skikt (LBL) sammansättningsprocess som förlitar sig på aggregatet av motsatt laddade molekyler från vattenhaltiga lösningar användes för att bygga ett fristående kompositfilm av isolerade trä polymerer av lignin och oxiderad nanofibril cellulosa (NFC). För att underlätta monteringen av dessa negativt laddade polymerer, en positivt laddad polyelektrolyt, poly (diallyldimethylammomium klorid) (PDDA), användes som en sammanlänkande skikt för att skapa denna förenklade modellen cellvägg. Den skiktade adsorptionsförfarande studerades kvantitativt med hjälp av kvartskristall mikrovåg med dissipation övervakning (QCM-D) och ellipsometri. Resultaten visade att skiktet massa / tjocklek per adsorberade lagret ökade som en funktion av totala antalet skikt. Den yttäckning av de adsorberade skikt studerades med atomkraftsmikroskop (AFM).Fullständig täckning av ytan med lignin i alla deponeringscykler hittades för systemet dock yttäckning av NFC ökade med antalet lager. Adsorptionen utfördes efter 250 cykler (500 dubbelskikt) på ett cellulosaacetat-substrat (CA). Transparent fristående LBL monterade nanokomposit filmer erhölls när CA substratet senare löst i aceton. Scanning elektronmikroskopi (SEM) av de brutna tvärsnitt visade en bladstruktur, och tjockleken per adsorptionscykeln (PDDA-Lignin-PDDA-NC) uppskattades till 17 nm för två olika lignintyper som används i studien. Data indikerar en film med mycket kontrollerad arkitektur där nanocellulosa och lignin är rumsligt deponeras på nanonivå (en polymer-polymer nanokompositer), liknande det som observerats i det ursprungliga cellväggen.

Introduction

Intresset är stort för att härleda ytterligare kemikalier och bränslen från biomassa, som kol som lagras i växter under fotosyntesen är en del av den aktuella CO2 cykel. Majoriteten av sequestered kol (42 till 44%) är i form av cellulosa, en polymer som består av β 1-4-bundna glukopyranosenheter; när hydrolyseras, kan glukos användas som primär reaktant för jäsning i alkoholbaserade bränslen. Emellertid har cellväggen arkitektur av vedartade växter utvecklats under tusentals år att skapa ett material som är resistenta mot nedbrytning i naturen 1. Denna stabilitet bär över till industriell bearbetning av trämaterial som energigrödor gör cellulosa svår att nå, isolera, och nedbrytning till glukos. En närmare titt på ultrastrukturen i den sekundära cellväggen visar att det är en polymer nanokomposit består av skiktade parakristallin cellulosa mikrofibriller inbäddade i en amorf matris av lignin och nertillicelluloses 2-4. De i längdled orienterade cellulosa mikrofibriller har en diameter av ungefär 2-5 nm, vilket är aggregerade tillsammans med andra hetero-polysackarider för att bilda större enheter av fibrill knippen 5. Fibrillens buntar är inbäddade i en lignin hemicellulosa komplex bestående av en amorf polymer av fenylpropanol enheter med några kopplingar till andra hetero-polysackarider såsom glucoronoxylan 4. Dessutom är denna struktur ytterligare organiserad i skikt eller lameller, hela förvedade sekundär cellvägg 6-8. Enzymer, såsom cellulaser, har en mycket svår tid att komma cellulosa i cellväggen som det visar i sin ROTHÅR formen och inbäddade i lignin. Den springande punkten i verkligen gör biobaserade bränslen och förnybara kemiska plattformar verklighet är att utveckla processer som ekonomiskt tillåter försockras cellulosa i sin naturliga form.

Nya kemiska och avbildningstekniker är medhjälp i study av de mekanismer som är involverade i försockras cellulosa 9,10. Mycket arbete har handlat om Raman konfokal avbildning 11 och atomkraftsmikroskopi 12 för att studera cellväggen kemiska sammansättning och morfologi. Att kunna följa mekanismer för delignifiering och försockringen är ett viktigt steg framåt, påverkar omvandlingen av cellulosa till glukos. Saccharification modellcellulosaytor analyserades genom att mäta enzymkinetiska priser med en kvartskristall mikrovåg med dissipation övervakning (QCM-D) 13. Emellertid nativa cellväggar är mycket komplexa såsom angivits ovan, och detta skapar tvetydigheten i hur olika omvandlingsprocesser ändra strukturen hos växtcellväggen (polymermolekylvikt, kemiska bindningar, porositet). Fristående modeller av cellväggen ämnen med känd strukturell sammansättning skulle ta itu med detta problem och göra det möjligt att integrera prov till state-of-art kemiska och fantasing utrustning.

Det finns en brist på cellväggsmodeller och de få som finns kan kategoriseras som blandningar av polymera material och regenererad cellulosa eller bakteriell cellulosa 14, enzymatiskt polymeriserade lignin polysackarid kompositer 15-17 eller modellytor 18-21. Vissa modeller som börjar likna cellväggen är de prover som innehåller lignin prekursorer eller analoger polymeriseras enzymatiskt i närvaro av cellulosa i sin mikrofibrillärt form. Dessa material lider av bristen på organiserade lager arkitektur. En enkel väg för skapandet av nanokomposit material med organiserad arkitektur är det lager-för-lager (LBL) monteringsteknik, baserad på sekventiell adsorption av polymerer eller nanopartiklar med kompletterande kostnader eller funktionella grupper för att bilda organiserade flerskiktade sammansatta filmer 22-25. Fristående hybrid nanokompositer av hög hållfasthet, som gjorts av LbL avsättning av polymer och nanoparticles, har rapporterats av Kotov et al. 26-30. Bland många andra tillämpningar, har LBL filmer också undersökts för deras potentiella användning i terapeutisk leverans 31 bränslecellsmembran 32,33, batterier 34, och lignocellulosa fiber ytbearbetning 35-37. Den senaste tidens intresse för nanocellulosabaserade kompositmaterial har lett till framställning och karakterisering av LBL multilager av cellulosananokristaller (CNC) utarbetats av svavelsyra hydrolys av cellulosafibrer, och positivt laddade polyelektrolyter 38-43. Liknande studier har också genomförts med cellulosa nanokristaller som erhållits från marina tunicin och katjoniska polyelektrolyter 44, CNC och xyloglucan 45, samt CNC och chitosan 46. LbL flerskiktsbildning karboxylerade nanofibrillated cellulosor (NFC), erhållna genom högtrycks-homogenisering av massafibrer med katjoniska polyelektrolyter har också varitstuderade 47-49. Beredningen, egenskaper och tillämpning av CNC och nanofibrillated cellulosa har granskats i detalj 50-53.

Den aktuella studien innebär att granskningen av LbL tekniken som en möjlig väg att montera isolerade lignocellulosa polymerer (t.ex. nanocellulosa och lignin) på ett korrekt sätt som det första steget mot en biomimetic lignocellulosa komposit med bladstruktur. LBL teknik valdes för sin godartade processförhållanden som, omgivande temperatur, tryck, och vatten som lösningsmedel, vilka är förutsättningar för naturlig sammansatt formation 54. I denna studie rapporterar vi om den flerskiktiga uppbyggnaden av konstitutiva träkomponenter, nämligen cellulosa mikrofibriller från tetrametylpiperidin 1-oxyl (TEMPO)-medierad oxidation av massa och isolerat lignin i fristående lamellära filmer. Två olika lignin används från olika utvinningstekniker, en teknisk lignin från organosolv massaprocess, och den andra en lignin isolerad från kulmalning med mindre modifiering under isolering. Dessa föreningar kombineras med en syntetisk polyelektrolyt i denna inledande studie för att visa på möjligheterna att göra stabila fristående filmer med arkitektur som liknar det ursprungliga cellväggen.

Protocol

1. Nanofibrillated Cellulosa Förberedelser 55 Setup en 3 L trehalskolv med 2 I avjoniserat vatten, en överliggande omrörare och pH-sond. Lägg delignifierad kraftmassa, 88% ljusstyrka (20 g, 1% (w / v, torrvikt)), 2,2,6,6-tetrametylpiperidin 1-oxyl (TEMPO) (0,313 g, 0,1 mmol / g cellulosa) och natriumbromid (NaBr, 2,0 g, 1 mmol / g cellulosa) till kolven. Blanda massafiber med överliggande omrörare tills fibern dispergeras och inga aggregat kan ses i reaktionen. Anm: …

Representative Results

QCM-D Analys av strukturerade Woody Polymer Film Fabrication LBL adsorption av lignin, har NFC och PDDA övervakas i realtid med QCM-D i två olika experiment med två typer av lignin. Denna analysmetod är väldigt känslig för att upptäcka förändringar i frekvens när molekyler adsorberas till ytan av kvartskristall Figur 1 innehåller en detaljerad beskrivning av QCM-D-svar i en deponeringscykel, vilket innebär två dubbla skikt (PDDA:. HMWL och PDDA: NC). Data represen…

Discussion

Tillverkning av Nanocellulosa

För nanocellulosa tillverkning krävs det framgångsrika oxidation av massafibrer för lättköpt flimmer. Oxidation styrs av tillgängliga natriumhypoklorit, som tillsätts långsamt till kända mängder, baserat på mängden av cellulosa. En anledning till begränsad oxidation uppstår vid lagring av natriumhypokloritlösningen under längre perioder. Denna minskad effektivitet oxidation kan noteras under reaktionen; massasus ska vända en blek-gul färg, delvis…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes främst av forskar Scholar program för Institutet för kritisk teknik och tillämpad vetenskap (Ictas) vid Virginia Tech, Virginia Tech Graduate School för att stödja hållbar Nanoteknik programmet, och också Förenta staternas Department of Agriculture, NIFA licensnummer 2010-65504-20429. Författarna tackar också bidragen från Rick Caudill, Stephen McCartney, och W. Travis kyrkan till detta arbete.

Materials

sulfate pulp Weyerhaeuser  donated brightness level of 88%
organosolv lignin Sigma Aldrich 371017 discontinued
hardwood milled wood lignin see reference in paper
polydiallyldimethylammonium chloride  Sigma Aldrich 409022 Mn = 7.2×10^4, Mw=2.4×10^5
2,2,6,6-Tetramethylpiperidine 1-oxyl (TEMPO)  Sigma Aldrich 214000 catalytic oxidation of primary alcohols to aldehydes with a purity of 98%, molecular weight is 156.25g/mol
sodium bromide Sigma Aldrich S4547 purity ≥99.0%, molecular weight 102.89
sodium hypochlorite Sigma Aldrich 425044 reagent grade, available chlorine 10~15%, molecular weight 74.44g/mol
sodium hydroxide VWR BDH7221-4 0.5N aqueous solution, density 1.02g/ml, molecular weight 40 g/mol
sodium hydroxide Acros Organics AC12419-0010 0.1N aquesous solution, specific gravity 1.0 g/ml, molecular weight 40 g/mol
ammonium hydroxide Acros Organics AC39003-0025 25% solution in water, pH 13.6, density 0.89, molecular weight 35.04 g/mol
hydrogen peroxide Fisher Scientific H325-100 30.0~32.0% certified ACS, pH 3.3, density 1.11
Mica sheets TED Pella NC9655733 Pelco, grade V5, 10×40mm, 23mm T, minimum air and bubbles, very clean
sulfuric acid Fisher Scientific A300-212 95.0~98.0 w/w%, certified ACS plus, molecular weight 98.08 g/mol
cellulose acetate McMaster Carr 8564K44 degree of substitution 2.5
ethanol Decon Laboratories 04-355-223 200 proof (100%), USP
acetone Fisher Scientific A18-4 purity ≥99.5%, certified ACS reagent grade, density 0.79 g/ml, molecular weight 58.08 g/mol
syringy pump Harvard Apparatus 552226 pump 22 infusion/withdraw with standard syringe holder, flow rate 0.002 ul/h~55.1ml/min
Mill-Q water purification system EMD Millipore D3-UV Direct-Q, UV, water conductivity 18.5 MΩ cm with 20 liter reservair
pH meter Mettler Toledo SeverMulti
balance Mettler Toledo AB135-S accuracy 0.1mg
atomic force microscope Asylum Research MFP-3D, Olympic fluorescent microscope stage
ellipsometer Beaglehole Instruments
fiber centrifuge unknown basket style centrifuge
Warring blender Warring Commercial
ultrasonic processor Sonics Sonics 750W, sound enclosure
Quartz crystal microbalance with dissipation monitoring (QCM-D) Q-Sense Inc.  E4 measure fundamental frequency of 5MHz, and monitor odd number overtones/harmonics from 3~13, use gold-coated piezoelectric quartz crystals
automatted dipper arm Lynxmotion

References

  1. Fratzl, P., et al. On the role of interface polymers for the mechanics of natural polymeric composites. Phys. Chem. Chem. Phys. 6, 5575-5579 (2004).
  2. Terashima, N., Fukushima, K., He, L. F., Takabe, K. Forage cell wall structure and digestibity. American Society of Agronomy. , 247-270 (1993).
  3. Himmel, M. E., et al. Biomass Recalcitrance: Engineering Plants and Enzymes for Biofuels Production. Science. 315, 804-807 (2007).
  4. Terashima, N., et al. Nanostructural assembly of cellulose, hemicellulose, and lignin in the middle layer of secondary wall of ginkgo tracheid. J. Wood. Sci. 55, 409-416 (2009).
  5. Fahlén, J., Salmén, L. Pore and Matrix Distribution in the Fiber Wall Revealed by Atomic Force Microscopy and Image Analysis. Biomacromolecules. 6, 433-438 (2005).
  6. Baer, E., et al. Biological and synthetic hierarchical composites. Phys. Today. 45, 60-67 (1992).
  7. Tirrell, D. A., Aksay, I., Baer, E., Calvert, P. D., Cappello, J., Dimarzio, E. A., Evans, E. A., Fessler, J. Hierarchical structures in biology as a guide for new materials technology. National Academy of Sciences. , (1994).
  8. Fengel, D., Wegener, G. . Wood: Chemistry, Ultrastructure, Reactions. , (1984).
  9. Santa-Maria, M., Jeoh, T. Molecular-Scale Investigations of Cellulose Microstructure during Enzymatic Hydrolysis. Biomacromolecules. 11, 2000-2007 (2010).
  10. Saar, B. G., et al. Label-free, real-time monitoring of biomass processing with stimulated Raman scattering microscopy. Angew. Chem. Int. Edit. 49, 5476-5479 (2010).
  11. Schmidt, M., et al. Label-free in situ imaging of lignification in the cell wall of low lignin transgenic Populus trichocarpa. Planta. 230, 589-597 (2009).
  12. Ding, S. -. Y., Himmel, M. E. The maize primary cell wall microfibril: a new model derived from direct visualization. J. Agricul. Food Chem. 54, 597-606 (2006).
  13. Turon, X., et al. Enzymatic kinetics of cellulose hydrolysis: a QCM-D study. Langmuir. 24, 3880-3887 (2008).
  14. Dammströem, S., et al. On the interactions between cellulose and xylan, a biomimetic simulation of the hardwood cell wall. BioResources. 4, 3-14 (2009).
  15. Barakat, A., et al. Studies of xylan interactions and cross-linking to synthetic lignins formed by bulk and end-wise polymerization: a model study of lignin carbohydrate complex formation. Planta. 226, 267-281 (2007).
  16. Micic, M., et al. Study of the lignin model compound supramolecular structure by combination of near-field scanning optical microscopy and atomic force microscopy. Colloids Surf. B Biointerfaces. 34, 33-40 (2004).
  17. Li, Z., et al. Nanocomposites prepared by in situ enzymatic polymerization of phenol with TEMPO-oxidized nanocellulose. Cellulose. 17, 57-68 (2010).
  18. Gradwell, S. E., et al. Surface modification of cellulose fibers: towards wood composites by biomimetics. C. R. Biologies. 327, 945-953 (2004).
  19. Kaya, A., et al. Surface plasmon resonance studies of pullulan and pullulan cinnamate adsorption onto cellulose. Biomacromolecules. 10, 2451-2459 (2009).
  20. Gustafsson, E., et al. Direct adhesive measurements between wood biopolymer model surfaces. Biomacromolecules. 13, 3046-3053 (2012).
  21. Karabulut, E., Wagberg, L. Design and characterization of cellulose nanofibril-based freestanding films prepared by layer-by-layer deposition technique. Soft Matter. 7, 3467-3474 (2011).
  22. Decher, G., Hong, J. D. Buildup of ultrathin multilayer films by a self-assembly process: II. consecutive adsorption of anionic and cationic bipolar amphiphiles and polyelectrolytes on charged surfaces. Ber. Bunsen. Phys. Chem. 95, 1430-1434 (1991).
  23. Decher, G. Fuzzy nanoassemblies: toward layered polymeric multicomposites. Science. 277, 1232 (1997).
  24. Hammond, P. T. Form and function in multilayer assembly: new applications at the nanoscale. Adv. Mater. 16, 1271-1293 (2004).
  25. Decher, G., Schlenoff, J. B. . Multilayer thin films- sequential assembly of nanocomposite materials. , (2003).
  26. Mamedov, A. A., Kotov, N. A. Free-standing layer-by-layer assembled films of magnetite nanoparticles. Langmuir. 16, 5530-5533 (2000).
  27. Mamedov, A. A., et al. Molecular design of strong single-wall carbon nanotube/polyelectrolyte multilayer composites. Nat. Mater. 1, 257-257 (2002).
  28. Podsiadlo, P., et al. Fusion of seashell nacre and marine bioadhesive analogs: high-strength nanocomposite by layer-by-layer assembly of clay and L-3,4-dihydroxyphenylalanine polymer. Adv. Mater. 19, 949-955 (2007).
  29. Podsiadlo, P., et al. Ultrastrong and stiff layered polymer nanocomposites. Science. 318, 80-83 (2007).
  30. Podsiadlo, P., et al. Can nature’s design be improved upon? High strength, transparent nacre-like nanocomposites with double network of sacrificial cross links. J. Phys. Chem. B. 112, 14359-14363 (2008).
  31. Becker, A. L., et al. Layer-by-layer-assembled capsules and films for therapeutic delivery. Small. 6 (17), (2010).
  32. Taylor, A. D., et al. Fuel cell membrane electrode assemblies fabricated by layer-by-layer electrostatic self-assembly techniques. Adv. Funct. Mater. 18, 3003-3009 (2008).
  33. Ashcraft, J. N., et al. Structure-property studies of highly conductive layer-by-layer assembled membranes for fuel cell PEM applications. J. Mater. Chem. 20, 6250-6257 (2010).
  34. Lee, S. W., et al. High-power lithium batteries from functionalized carbon-nanotube electrodes. Nat. Nano. 5, 531-537 (2010).
  35. Eriksson, M., et al. The influence on paper strength properties when building multilayers of weak polyelectrolytes onto wood fibres. J. Colloid Interf. Sci. 292, 38-45 (2005).
  36. Lvov, Y. M., et al. Dry and wet strength of paper: layer-by-layer nanocoating of mill broken fibers for improved paper. 21, 552-557 (2006).
  37. Lin, Z., et al. Nanocomposite-based lignocellulosic fibers 1. Thermal stability of modified fibers with clay-polyelectrolyte multilayers. Cellulose. 15, 333-346 (2008).
  38. Cranston, E. D., Gray, D. G., Barrett, C. J. Abstracts; 32nd Northeast Regional Meeting of the American Chemical Society. , (2004).
  39. Podsiadlo, P., et al. Molecularly engineered nanocomposites: layer-by-layer assembly of cellulose nanocrystals. Biomacromolecules. 6, 2914-2918 (2005).
  40. Cranston, E. D., Gray, D. G. Formation of cellulose-based electrostatic layer-by-layer films in a magnetic field. Sci. Tech. Adv. Mater. 7, 319-321 (2006).
  41. Cranston, E. D., Gray, D. G. Morphological and optical characterization of polyelectrolyte multilayers incorporating nanocrystalline cellulose. Biomacromolecules. 7, 2522-2530 (2006).
  42. Jean, B., et al. Structural details of cellulose nanocrystals/polyelectrolytes multilayers probed by neutron reflectivity and AFM. Langmuir. 24, 3452-3458 (2008).
  43. Renneckar, S., Zink-Sharp, A., Esker Alan, R., Johnson Richard, K., Glasser Wolfgang, G. Cellulose Nanocomposites. ACS Symposium Series. , 78-96 (2006).
  44. Podsiadlo, P., et al. Layer-by-layer assembled films of cellulose nanowires with antireflective properties. Langmuir. 23, 7901-7906 (2007).
  45. Jean, B., et al. Non-electrostatic building of biomimetic cellulose-xyloglucan multilayers. Langmuir. 25, 3920-3923 (2009).
  46. de Mesquita, J. P., et al. Biobased nanocomposites from layer-by-layer assembly of cellulose nanowhiskers with chitosan. Biomacromolecules. 11, 473-480 (2010).
  47. Wågberg, L., et al. The build-up of polyelectrolyte multilayers of microfibrillated cellulose and cationic polyelectrolytes. Langmuir. 24, 784-795 (2008).
  48. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  49. Aulin, C., et al. Self-organized films from cellulose I nanofibrils using the layer-by-layer technique. Biomacromolecules. 11, 872-882 (2010).
  50. Azizi Samir, M. A., et al. Review of recent research into cellulosic whiskers, their properties and their application in nanocomposite field. Biomacromolecules. 6, 612-626 (2005).
  51. Siró, I., Plackett, D. Microfibrillated cellulose and new nanocomposite materials: a review. Cellulose. 17, 459-494 (2010).
  52. Eichhorn, S., et al. Review: current international research into cellulose nanofibres and nanocomposites. J. Mat. Sci. 45, 1-33 (2010).
  53. Habibi, Y., et al. Cellulose nanocrystals: chemistry, self-assembly, and applications. Chem. Rev. 110, 3479 (2010).
  54. Teeri, T. T., et al. Biomimetic engineering of cellulose-based materials. Trends Biotechnol. 25, 299-306 (2007).
  55. Saito, T., et al. Homogeneous suspensions of individualized microfibrils from TEMPO-catalyzed oxidation of native cellulose. Biomacromolecules. 7, 1687-1691 (2006).
  56. Pillai, K. V., Renneckar, S. Cation-π Interactions as a Mechanism in Technical Lignin Adsorption to Cationic Surfaces. Biomacromolecules. 10, 798-804 (2009).
  57. Notley, S. M., Norgren, M. Adsorption of a strong polyelectrolyte to model lignin surfaces. Biomacromolecules. 9, 2081-2086 (2008).
  58. Aulin, C., et al. Buildup of polyelectrolyte multilayers of polyethyleneimine and microfibrillated cellulose studied by in situ dual-polarization interferometry and quartz crystal microbalance with dissipation. Langmuir. 24, 2509-2518 (2008).
  59. Argun, A. A., et al. Highly conductive, methanol resistant polyelectrolyte multilayers. Adv. Mater. 20, 1539-1543 (2008).
  60. Li, Q., Renneckar, S. Molecularly thin nanoparticles from cellulose: isolation of sub-microfibrillar structures. Cellulose. 16, 1025-1032 (2009).
  61. Höök, F., et al. Variations in coupled water, viscoelastic properties, and film thickness of a Mefp-1 protein film during adsorption and cross-linking: a auartz crystal microbalance with dissipation monitoring, ellipsometry, and surface plasmon resonance study. Anal. Chem. 73, 5796-5804 (2001).
  62. Naderi, A., Claesson, P. M. Adsorption properties of polyelectrolyte-surfactant complexes on hydrophobic surfaces studied by QCM-D. Langmuir. 22, 7639-7645 (2006).
  63. Kaufman, E. D., et al. Probing protein adsorption onto mercaptoundecanoic acid stabilized gold nanoparticles and surfaces by quartz crystal microbalance and z-potential measurements. Langmuir. 23, 6053-6062 (2007).
  64. Glasser, W. G., Barnett, C. A., Sano, Y. Classification of lignins with different genetic and industrial origins. J. Appl. Polym. Sci.: Appl. Polym. Symp. , (1983).
  65. Van de Steeg, H. G. M., et al. Polyelectrolyte adsorption: a subtle balance of forces. Langmuir. 8, 2538-2546 (1992).
check_url/51257?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Pillai, K., Navarro Arzate, F., Zhang, W., Renneckar, S. Towards Biomimicking Wood: Fabricated Free-standing Films of Nanocellulose, Lignin, and a Synthetic Polycation. J. Vis. Exp. (88), e51257, doi:10.3791/51257 (2014).

View Video