Cellemærkning og Injektion i Udvikling Embryonale Mouse Hjerter
Summary
Vi beskriver en række metoder til at injicere farvestoffer, DNA-vektorer, virus og celler for at overvåge både celleskæbnen og fænotype af endogene og podede celler afledt fra embryonale eller pluripotente celler i musefostre på embryonisk dag (E) 9,5 og senere stadier udvikling.
Abstract
Test skæbne embryonale eller pluripotente stamceller-derivater i in vitro-protokoller har ført til kontroversielle resultater, som ikke nødvendigvis afspejler deres in vivo potentiale. Helst bør disse celler placeres i en ordentlig embryonale miljø med henblik på at erhverve deres bestemt fænotype. Desuden har celleafstamning opsporing studier i mus efter mærkning af celler med farvestoffer eller retrovirusvektorer forblev det meste begrænset til tidlige fase museembryoer med stadig dårligt udviklede organer. For at overvinde disse begrænsninger, vi har designet standard og ultralyd-medieret mikroinjektion protokoller til at injicere forskellige agenter i målrettede områder af hjertet i museembryoer på E9.5 og senere stadier af udvikling. Embryonale eksplantat eller embryoner dyrkes derefter eller venstre for at videreudvikle i livmoderen. Disse midler indbefatter fluorescerende farvestoffer, virus, shRNAs eller stamceller progenitorceller. Vores tilgang giver mulighed for bevarelse af den fulnction af orglet under overvågning migration og skæbne af mærkede og / eller injicerede celler. Disse teknologier kan udvides til andre organer, og vil være meget nyttigt at tage fat på centrale biologiske spørgsmål i biologi udvikling.
Introduction
Mere end et årti siden, har menneskelige embryonale stamceller (HuESCs) stammer fra humane blastocyster 1. Siden da har disse celler bliver genstand for en vigtig forskningsområde, som omhandler uopfyldte spørgsmål i menneskets udviklingsmæssige biologi. HuESCs har desuden forudsat håb i regenerativ medicin. I de senere år har menneskelige induceret pluripotente stamceller (iPSCs) blevet genereret fra patient-specifikke somatiske celler, der giver modeller af genetiske sygdomme 2. Mange in vitro-protokoller til differentiering af embryonale eller induceret pluripotente stamceller i retning af forskellige cellelinier, herunder hjerte slægter 3, er blevet rapporteret. De differentierede celler er ofte fænotypebestemmes ved analyse af RNA-ekspression og proteinekspression, immunfarvning, og / eller in vitro-funktionelle tests. Men pluripotente stamceller derivater har, skal placeres i en ordentlig embryonale miljø med henblik på at teste, om de fuldt erhverve cell skæbne deres embryonale modpart og om de rekapitulere den ægte in vivo funktion som reaktion på de regionale signaler. Mens tissue engineering er lovende, betyder det endnu ikke give alle de kendte og ukendte tidskoder af den rette in vivo udviklingslande embryonale væv 4,5.
Cell mærkning med farvestoffer eller retrovirusvektorer i embryoner, herunder museembryoer har bragt vigtige oplysninger om den embryonale oprindelse celleafstamninger under hjerte-udvikling 6. For eksempel farvestof injektion i perikardial rum musefostre ex vivo, efterfulgt af in vitro dyrkning af isolerede hjerter, blev anvendt til at mærke epikardielle celler og deres efterkommere 7. Imidlertid har farvestof og retroviral cellemærkning været det meste anvendt på tidlig museembryoer med stadig dårligt udviklede organer eller kyllingefostre, som er mere let tilgængelige 8.. En undtagelse er i hjernen, som er lettere at målrette i embryos 9,10. En sådan fremgangsmåde er endnu ikke blevet anvendt på at slå embryonale mus hjerte.
Som supplement til direkte mærkning med farvestoffer eller virus og til at udføre afstamning opsporing i mere fremskredne stadie museembryoer og voksne mus, har den tilgang cellemærkning blevet kombineret med en analyse af transgene mus ved hjælp af Cre / Lox teknologi. Cre / Lox tilgang 11 dog har visse begrænsninger på grund af Spatiotemporal specificiteten af de genomiske regulatoriske regioner anvendes til at drive ekspression af rekombinasen, og effektiviteten af Cre / Lox rekombination 12. Hertil kommer, at denne tilgang ikke fuldt ud løse de konkrete spørgsmål om migration drevet erhvervelse af celle skæbne celle, da det kun kan mærke en forløber efter aktivering af de lovgivningsmæssige område bruges til at drive Cre udtryk. Det kan heller ikke anvendes på menneskelige embryoner af indlysende etiske spørgsmål.
På baggrund af disse begrænsninger, har vi designet en række nye protocols at indsprøjte en række celle mærkningsordninger, såsom fluorescerende farvestoffer, virus, genekspression modulatorer såsom shRNAs og DNA-baserede celle mærkning af vektorer eller celler i mus embryo på E9.5 og senere stadier af udvikling i målrettede områder af hjerte.
DNA / celle injektioner bruge et stereomikroskop og en enkel mikroinjektion enhed kombineret med ex vivo embryo kultur op til 48 timer, eller isolerede hjerte eller embryonale explant kultur for 48-72 timer. Vi rapporterer også en ultralyd-medieret mikroinjektion protokollen i mus embryonale hjerter i livmoderen. Denne teknik gør det muligt at overvåge udviklingen af embryoner 13 og giver mulighed for langsigtet opfølgning af injectates og / eller mærkede celler.
Vi fandt, at disse tilgange bevare funktionen af organet og give en mere repræsentativ miljøet end in vitro-test af stamceller potentiale. Det giver også mulighed for at følge migrationmærket og / eller injiceres celler til at overvåge deres skæbne. I sidste ende bør det give en bedre forståelse af den regionale væv mønster og vigtige biologiske processer.
Protocol
Representative Results
Discussion
De intra-kardiale ex vivo injektion protokoller, der er beskrevet ovenfor, er beregnet til at bevare myokardie funktion i mindst 48 timer i midten af scenen (E9.5-E11.5) museembryoer. Disse injektion fremgangsmåder giver mulighed for rumligt målrettet injektion af DNA eller celler. De få eksempler er vist i figur 1-3 giver proof of concept for afgrænsning ex vivo og in vivo molekylære mekanismer for udviklingsmæssige processer, der finder sted i begrænsede hjerte regioner, såso…
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Forfatterne erkender Foundation Leducq (mitral) og Agence Nationale pour la Recherche (indrømme ANR Specistem) for at finansiere denne forskning.
Materials
| Setups / Hardware | |||
| 40 MHz Transducer | VisualSonics | MS550S | |
| Microinjector | VisualSonics | ||
| Microinjector | Eppendorf | 5242 | |
| Micromanipulator | Eppendorf | 5171 | |
| Nitrogen | required to pressurize the injector | ||
| Rail system | VisualSonics | ||
| rotator | to rotate glass tube with embryos inside the incubator | ||
| Standard incubator | 5% CO2, 37 C | ||
| stereomicroscope | Zeiss | Discovery. V8 | |
| Vevo 2100 | VisualSonics | ||
| Microinjection | |||
| borosilicate capillary tubes | World Precision Instrument | KTW-120-6 | 1.2 mm external diameter |
| pipette puller | Sutter | Model P87 | |
| microinjection needles | Origio-Humagen | C060609 | OD/ID 1.14mm/53mm, with 50/35 um OD/ID tip |
| Hamilton syringes | |||
| Petridishes | 10 cm diameter | ||
| Mineral oil | Sigma | M8410 | |
| Silicon membrane | Visualsonics | 4.3×4.3 cm | |
| Play-Doh | |||
| Isoflurane | Vet One | ||
| hair removal agent | Nair | ||
| eye lubricant | Optixcare | 31779 | |
| Electrode gel (Signa) | Parker | ||
| Suture | Sofsilk 5-0 | S1173 | |
| Ultrasound gel | Aquasonic | ||
| Buprenex Buprenex (buprenorphine hydrochloride) | Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc. | NDC 12496-0757-1 | 0.05-0.1 mg/kg in saline |
| Altro | |||
| Silicone Elastomer | Dow Corning | Sylgard 184 | |
| Glass petridishes | Fine Science Tools | 60mm diameter | |
| insect pins | Fine Science Tools | 26002-20 | |
| Media and culture reagents | |||
| Optimem medium | Life Technologies | 51985026 | |
| M2 medium | Sigma | M7167 | |
| Dulbecco’s Eagle Medium | Lonza | BE12-640F | high glucose and 50% rat serum |
| M16 medium | Sigma | M7292 | |
| rat serum | Janvier | ODI 7158 | |
| pennicilin/streptomycin | Life Technologies | 15140-12 | |
| oxygen 40% | Air liquid | required to oxygenate the embryo culture medium | |
| fetal calf serum | Fisher | RVJ35882 | |
| matrigel | BD | 356230 | |
| collagen type I | BD | 354236 | to coat culture dishes for explant culture |
| culture dishes | Dutcher /Orange | 131020 | |
| Injectates | |||
| CDCFDA-SE | Invitrogen/Molecular Probes | C1165 | 25mg/ml DMSO. Store at -20 C. Dilute 1:100-200 in saline before use. |
| PGK-GFP-expressing lentivirus | ~8E9 transducing units/ml DMEM | ||
| lipofectamine 2000 | Life Technologies | 11668019 |
Riferimenti
- Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
- Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
- Mummery, C. L., et al. Differentiation of human embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells to cardiomyocytes: a methods overview. Circ. Res. 111, 344-358 (2012).
- Badylak, S. F., Taylor, D., Uygun, K. Whole-organ tissue engineering: decellularization and recellularization of three-dimensional matrix scaffolds. Annu. Rev. Biomed. Eng. 13, 27-53 (2011).
- Dickinson, L. E., Kusuma, S., Gerecht, S. Reconstructing the differentiation niche of embryonic stem cells using biomaterials. Macromol. Biosci. 11, 36-49 (2011).
- Van Vliet, P., Zaffran, S., Wu, S., Puceat, M. Early cardiac development: a view from stem cells to embryos. Cardiovasc. Res. In press, (2012).
- Cai, C. L., et al. A myocardial lineage derives from Tbx18 epicardial cells. Nature. 454, 104-108 (2008).
- Boulland, J. L., Halasi, G., Kasumacic, N., Glover, J. C. Xenotransplantation of human stem cells into the chicken. J. Vis. Exp. , (2010).
- Liu, A., Joyner, A. L., Turnbull, D. H. Alteration of limb and brain patterning in early mouse embryos by ultrasound-guided injection of Shh-expressing cells. Mech. Dev. 75, 107-115 (1998).
- Pierfelice, T. J., Gaiano, N. Ultrasound-guided microinjection into the mouse forebrain in utero at E9.5. J. Vis. Exp. , (2010).
- Nagy, A. Cre recombinase: the universal reagent for genome tailoring. Genesis. 26, 99-109 (2000).
- Buckingham, M. E., Meilhac, S. M. Tracing cells for tracking cell lineage and clonal. Dev. Cell. 21, 394-409 (2011).
- Phoon, C. K. Imaging tools for the developmental biologist: ultrasound biomicroscopy of mouse embryonic development. Pediatr. Res. 60, 14-21 (2006).
- Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat. Protoc. 1, 241-245 (2006).
- Dyer, L. A., Patterson, C. A Novel Ex vivo Culture Method for the Embryonic Mouse. J. Vix. Exp. , (2013).
- Runyan, R. B., Markwald, R. R. Invasion of mesenchyme into three-dimensional collagen gels: a regional and temporal analysis of interaction in embryonic heart tissue. Dev. Biol. 95, 108-114 (1983).
