Summary

Método para obtenção de células do cancro do ovário primárias de amostras sólidas

Published: February 04, 2014
doi:

Summary

Este estudo descreve um método detalhado para o isolamento e caracterização de células de cancro do ovário a partir de espécimes clínicos primários sólidos. Espécimes clínicos de câncer de ovário são submetidos a digestão enzimática para obter, câncer viável sem fibroblastos epitelial de ovário células (EdC) altamente adequados para aplicações a jusante.

Abstract

Ferramentas confiáveis ​​para investigar a iniciação do câncer de ovário e progressão são urgentemente necessários. Embora a utilização de linhas celulares de cancro do ovário permanece uma ferramenta valiosa para a compreensão do cancro do ovário, o seu uso tem muitas limitações. Estas incluem a falta de heterogeneidade e a pletora de alterações genéticas associadas com passagens em extensas in vitro. Aqui nós descrevemos um método que permite a criação rápida de células de câncer de ovário primários formar espécimes clínicos sólidos coletados no momento da cirurgia. O método consiste em submeter as amostras clínicas para a digestão enzimática durante 30 minutos. A suspensão de células isoladas é deixada crescer e podem ser usadas para aplicação a jusante, incluindo o rastreio de drogas. A vantagem de linhas celulares de cancro do ovário primários mais linhas de células de câncer de ovário estabelecidos é que eles são representativos dos espécimes clínicos específicos originais são derivadas e podem ser derivadas a partir de diferentes locais quer primacâncer de ovário ry ou metastático.

Introduction

Apesar da sua relativa baixa incidência, o câncer de ovário é o mais mortal das doenças ginecológicas ea quinta causa de morte por câncer entre as mulheres 1,2. Isto é principalmente devido à falta de ferramentas confiáveis ​​e modelos que recapitulam fielmente a iniciação ea progressão da doença 3. A maioria do nosso conhecimento hoje sobre o câncer de ovário foi possível através do uso de células imortalizadas ovarianos epiteliais da superfície (IOSEs), linhas de células de câncer de ovário e células de câncer de ovário primários recuperados de líquido ascítico 4-7. Infelizmente, a sua utilização tem várias limitações, incluindo uma série de mudanças genéticas e fenotípicas associadas com o processo de imortalização ou em passagens in vitro e a heterogeneidade da população resultante da preparação de fluido ascítico.

Portanto, as células de câncer de ovário primários derivados de amostras sólidas identificáveis ​​e específicos do câncer de ovário representam uma unique ferramenta para estudar a progressão do câncer de ovário.

As principais dificuldades na obtenção dessas células malignas são devido a um crescimento excessivo de células do estroma ou fibroblastos, juntamente com perda de viabilidade e prematuro falta de capacidade proliferativa na cultura destas células EOC. Vários métodos para criar suspensões de célula única de tumores sólidos existem actualmente, através de meios mecânicos ou de dissociação enzimática, contudo certas técnicas de produzir uma quantidade maior do resultado preferido 8. Aqui, vamos mostrar que a digestão enzimática com dispase II resulta em uma recuperação eficaz de células EOC sem fibroblastos viáveis. As culturas EOC assim obtidos são altamente susceptíveis a manipulação genética e são também úteis em ensaios de rastreio de drogas, o que indica que estas culturas EOC são adequadas para muitas aplicações a jusante.

Protocol

Declaração de Ética Amostras sólidas de câncer de ovário foram obtidos a partir da Facilidade Universidade de Minnesota colheita de tecidos (TPF) após o Comitê de Revisão Institucional Board: Conselho Assunto Humano (IRB) de aprovação. 1. Setup Reagente Prepare meio DMEM completo, completando DMEM com FBS a 10%, e 100 unidades de penicilina-estreptomicina. Armazenar o meio a 4 ° C e aquecer a 37 ° C antes de usar. Alíquota dispase II…

Representative Results

Espécimes clínicos frescas de cancro do ovário são recolhidas após a cirurgia (Figura 1) e cortado em pequenos pedaços (Figuras 2A e 2B), que constituem a suspensão de células. Isto permite uma exposição óptima dos espécimes para o tratamento enzimático. Suspensão de células é exposto a digestão enzimática e foram incubadas a 37 ° C durante 30 min. Durante o tempo de incubação da suspensão torna-se cada vez mais turva (especialmente depois de cada …

Discussion

Uma melhor compreensão da etiologia do câncer de ovário e de desenvolvimento é crucial para melhorar o resultado de mulheres afetadas por esta doença devastadora. Neste contexto, a utilização de estabelecida e "comercialmente disponível" linha de células de cancro do ovário, sem dúvida, tem sido extremamente útil. No entanto, hoje sabemos que linhas celulares de cancro não são representativos do tumor humano que originou, em muitos aspectos, incluindo a falta de heterogeneidade 9,10. <…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gostaríamos de agradecer ao pessoal da Facilidade de recolha de tecidos, da Universidade de Minnesota para obter ajuda com a coleta de amostras de tecido do paciente. Este trabalho foi apoiado pelo Programa do Departamento de Defesa do ovário Cancer Research (OCRP) OC093424 a MB, pelo Randy Shaver Cancer Research Fund e da Comunidade para MB, pelo Minnesota cancro do ovário Aliança para MB e pelo fundo de Oncologia Ginecológica Departamental de MB. Os financiadores não tiveram nenhum papel no desenho do estudo, coleta de dados e análise, decisão de publicar ou preparação do manuscrito.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
REAGENTS:
1X PBS, sterile  Invitrogen 14190-144
 Screw lid, polypropylene specimen container, sterile (Thermoscientific) Thermoscientific 02 1090
 DMEM medium, sterile  Invitrogen 11995-065
 Fetal bovine serum, sterile Thermo Scientific Hyclone SH30396.03
 100x penicillin-streptomycin, liquid (Invitrogen) Invitrogen 15140-122
 Dispase II, sterile (Roche) Roche 04942 078 001
 Small fine-tip forceps and scalpel blade, sterile Fisher Scientific forceps: 08-953E, blades: 08-927-5D
 Small dissecting scissors, sterile Fisher Scientific 08-945
 15 ml conical capped tubes, sterile (BD Falcon) BD, Falcon 352097
50 ml conical capped tubes, sterile (BD Falcon) BD, Falcon 352027
 10 ml serological pipette, sterile  Corning 13-678-11E
6 ml syringe plunger, sterile  Tyco Healthcare 8881516911
Nylon filter (70 μm ) cell strainer, sterile (BD Falcon) BD Falcon 352350
5-cm Petri dish, sterile  Corning 430166
10-cm Petri dish, sterile  Corning 430167

Riferimenti

  1. Kurman, R. J., Visvanathan, K., Roden, R., Wu, T. C., Ie M, S. h. i. h. Early detection and treatment of ovarian cancer: shifting from early stage to minimal volume of disease based on a new model of carcinogenesis. Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (4), 351-356 (2008).
  2. Kuhn, E., Kurman, R. J., Shih, I. M. Ovarian Cancer Is an Imported Disease: Fact or Fiction. Curr. Obstet. Gynecol. Rep. 1 (1), 1-9 (2012).
  3. Sarojini, S., et al. Early detection biomarkers for ovarian. J. Oncol. , (2012).
  4. Shepherd, T. G., Theriault, B. L., Campbell, E. J. Nachtigal M.W. Primary culture of ovarian surface epithelial cells and ascites-derived ovarian cancer cells from patients. Nat. Protoc. 1 (6), 2643-2649 (2006).
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  9. Rockwell, S. In vivo-in vitro tumour cell lines: characteristics and limitations as models for human cancer. Br. J. Cancer Suppl. 41 (4), 118-122 (1980).
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Citazione di questo articolo
Pribyl, L. J., Coughlin, K. A., Sueblinvong, T., Shields, K., Iizuka, Y., Downs, L. S., Ghebre, R. G., Bazzaro, M. Method for Obtaining Primary Ovarian Cancer Cells From Solid Specimens. J. Vis. Exp. (84), e51581, doi:10.3791/51581 (2014).

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