Summary

مقايسة الوظيفية للفجوة صلي فحص. Electroporation للمن الخلايا الملتصقة على الإنديوم أكسيد القصدير

Published: October 18, 2014
doi:

Summary

This presentation demonstrates a method whereby electroporation of adherent, cultured cells is used for the study of intercellular, junctional communication, while the cells grow on a slide coated with conductive and transparent indium-tin oxide.

Abstract

In this technique, cells are cultured on a glass slide that is partly coated with indium-tin oxide (ITO), a transparent, electrically conductive material. A variety of molecules, such as peptides or oligonucleotides can be introduced into essentially 100% of the cells in a non-traumatic manner.  Here, we describe how it can be used to study intercellular, gap junctional communication. Lucifer yellow penetrates into the cells when an electric pulse, applied to the conductive surface on which they are growing, causes pores to form through the cell membrane. This is electroporation. Cells growing on the nonconductive glass surface immediately adjacent to the electroporated region do not take up Lucifer yellow by electroporation but do acquire the fluorescent dye as it is passed to them via gap junctions that link them to the electroporated cells. The results of the transfer of dye from cell to cell can be observed microscopically under fluorescence illumination. This technique allows for precise quantitation of gap junctional communication. In addition, it can be used for the introduction of peptides or other non-permeant molecules, and the transfer of small electroporated peptides via gap junctions to inhibit the signal in the adjacent, non-electroporated cells is a powerful demonstration of signal inhibition.

Introduction

تطبيق التيار الكهربائي إلى خلية يسبب تشكيل المسام على غشاء الخلية، من خلال عملية تسمى Electroporation لل. مسام تسمح بمرور مجموعة متنوعة من الجزيئات nonpermeant من خلال الغشاء. يمكن التحكم في المجال الكهربائي على وجه التحديد، بحيث المسام شكلت صغيرة جدا وreclose بسرعة، مع الحد الأدنى من اضطراب في الفيزيولوجيا الخلوية. ومن المثير للاهتمام، الخلايا الملتصقة يمكن زراعتها على شريحة زجاجية مغطاة موصل وشفافة أكسيد الإنديوم والقصدير (ايتو) وelectroporated في الموقع، وهذا هو على السطح حيث تنمو، دون أن يتم فصل electroporated في تعليق. خلايا يمكن أن تنمو بشكل جيد جدا على هذا السطح، وبما أنها تابعة والموسعة، الملاحظة المجهرية مفصلة ممكن. باستخدام هذه التقنية، جزيئات صغيرة nonpermeant يمكن إدخال الفور وبشكل أساسي إلى 100٪ من الخلايا، مما يجعل هذه التقنية مناسبة خاصة بالنسبة للدراسات حول تفعيل شركاتonents من مسار التالية التحفيز يجند لمستقبلات (مراجعة في 1).

وقد استخدم Electroporation للفي الغالب لإدخال الحمض النووي (وتسمى أيضا electrotransfection). ومع ذلك، يمكن Electroporation للفي الموقع أن تكون ذات قيمة لإدخال مجموعة كبيرة ومتنوعة من الجزيئات، مثل الببتيدات 2-4، أليغنوكليوتيد]، مثل العقاقير RNA، المزدوج تقطعت بهم السبل الحمض النووي [أليغنوكليوتيد شرك لمنع عامل النسخ ملزمة، أو سيرنا 3،5، 6، 7-10 النيوكليوتيدات المشعة، والبروتينات 11 12 أو الموالية للمخدرات 13. بعد Electroporation لل، والخلايا هي lysed يمكن للالتحليلات الكيميائية الحيوية أو ثابتة وملطخة الأجسام المضادة.

طلاء ايتو موصل رقيقة جدا، 800-1،000Å، بحيث لا تشعر بالانزعاج نمو الخلايا بواسطة الفرق في ارتفاع السطوح اثنين، كما تنمو الخلايا عبر حافة طلاء موصل. وهذا يوفر ميزة أنه غير electrop-خلايا orated يمكن زراعتها جنبا إلى جنب مع تلك electroporated، لتكون بمثابة الضوابط. يمكن استخدام نفس النهج لفحص موصلي الفجوة والاتصال بين الخلايا (GJIC)، كما هو موضح في الفيديو.

تقاطعات الفجوة هي القنوات التي تربط الداخلية من الخلايا المجاورة 14. الفجوة موصلي والاتصال بين الخلايا تلعب دورا هاما في تشكيل الورم والانبثاث، في حين أن الجينات المسرطنة مثل SRC قمع GJIC 15،16. لدراسة GJIC صبغة الفلورسنت مثل لوسيفر الأصفر (LY) غالبا ما أدخلت الخلايا المستزرعة من خلال حقن مكروي أو كشط التحميل 17 و لوحظ انتشار الصبغة في الخلايا المجاورة مجهريا تحت إضاءة مضان. لكن هذه التقنيات دائما يسبب تلف الخلايا. وصفنا الآن تقنية حيث تزرع الخلايا على شريحة زجاجية التي وهي مغلفة جزئيا مع ايتو 18. تم تطبيق نبضة كهربائية في وجود LY (أو الأصباغ الأخرى) كاليفورنياباستخدام انتشارها في الخلايا المتزايد من جانب موصل من الشريحة، في حين صبغ الهجرة إلى الخلايا المجاورة، غير electroporated، وقد لوحظ من خلال المجهر مضان الإضاءة. لتجنب الخلايا الحساسة المزعجة التي قد تميل إلى فصل من أحادي الطبقة، جمعية صمم التي لا تتطلب إلكترود لتوضع على رأس من الخلايا لتطبيق الحالي 19 الكهربائي. يقدم هذا النهج القدرة ل quantitate GJIC في عدد كبير من الخلايا، ودون أي اضطراب يمكن كشفها لالأيض الخلوي، كما يدل على ذلك عدم وجود تأثير على طول المرحلة G1 التالية التحفيز المصل 12، وزيادة في مستويات منظمات المزارعين البروتين protooncogene (Raptis، غير منشورة) أو اثنين تحركات المرتبطة بالإجهاد الخلوي، خنزير P38 أو JNK / SAPK كيناز 1. هذا النهج جعل من الممكن فحص الارتباط بين مستويات الجين الورمي التعبير والتحول وGJIC 18، فضلا عن تأثير SRC وSTAT3 على GJIC في مجموعة متنوعة من أنواع الخلايا، بما فيها الخلايا المستزرعة حديثا من عينات ورم الرئة 20-23. بالإضافة إلى ذلك، Electroporation للالموقعي مع الإعداد الذي وصفه تفتقر إلى القطب العلوي واستخدمت بنجاح لمظاهرة من إغلاق الفجوة تقاطع على التمايز adipocytic، على الرغم من التعلق الخلوي إلى الركيزة يتم تخفيض في تلك المرحلة في 19،24.

Protocol

1. طلاء الخلايا في Electroporation للغرف في غطاء الصفحي التدفق، يعرض للتريبسين الخلايا باستخدام تقنية معقمة كالمعتاد. ملاحظة: من المهم جدا للقضاء بواسطة الطرد المركزي كل آثار التربسين، لأنها قد تعيق انتشار الخلايا على ال…

Representative Results

ويبين الشكل 2 كبد الفئران خلايا الظهارية T51B 22، electroporated مع LY وتصويرها تحت مضان (لوحة A و B)، أو على النقيض من المرحلة (C) الإضاءة، وبعد التثبيت والغسيل. في لوحة A، يتم وضع علامة على حافة منطقة الجزاء electroporated باللون الأحمر. التدرج من مضان على يمين الخط الأحمر ?…

Discussion

الخطوات الحاسمة في البروتوكول

المواد Electroporated
نقاء المواد التي سيتم electroporated مهم جدا. إذا كانت الخلايا مسطحة جدا، ثم تركيزات أعلى من تتبع صبغة يجب استخدام (تصل إلى 20 ملغ / مل لLY) وفي مثل هذه الحالات، والنقاء هو أكثر أهمية…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Lowell Cochran for expert videography assistance. The financial assistance of the Canadian Institutes of Health Research (CIHR), the Canadian Breast Cancer Foundation (CBCF, Ontario Chapter), the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC), the Canadian Breast Cancer Research Alliance, the Ontario Centers of Excellence, the Breast Cancer Action Kingston and the Clare Nelson bequest fund through grants to LR is gratefully acknowledged. SG was the recipient of an NSERC studentship. MG was supported by a postdoctoral fellowship from the US Army Breast Cancer Program, the Ministry of Research and Innovation of the Province of Ontario and the Advisory Research Committee of Queen’s University.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DMEM Cellgro http://www.cellgro.com/ 50-013-PB
DMEM without Calcium Hyclone (Thermo scientific: http://www.thermoscientific.com) SH30319-01
Donor Calf Serum  PAA: http://www.paa.com/ Cat.# B15-008
Fetal Bovine Serum PAA: http://www.paa.com/ Cat.# A15-751
Electroporation apparatus Cell Projects Ltd UK: http://www.cellprojects.com/ ACE-100
Chambers Cell Projects Ltd UK ACE-04-CC 4-wells
Chambers Cell Projects Ltd UK ACE-08-CC 8-wells
Lucifer Yellow Cell Projects Ltd UK ACE-25-LY High purity
CelTak BD Biosciences 354240 Cell and tissue adhesive
Fibronectin Sigma Aldrich F1141
Collagen BD Biosciences 354236
Poly-Lysine Sigma Aldrich P8920

Riferimenti

  1. Raptis, L., et al. Electroporation of Adherent Cells in Situ for the Study of Signal Transduction and Gap Junctional Communication. Electroporation protocols. , 167-183 (2008).
  2. Giorgetti-Peraldi, S., Ottinger, E., Wolf, G., Ye, B., Burke, T. R., Shoelson, S. E. Cellular effects of phosphotyrosine-binding domain inhibitors on insulin receptor signalling and trafficking. Mol Cell Biol. 17, 1180-1188 (1997).
  3. Boccaccio, C., Ando, M., Tamagnone, L., Bardelli, A., Michielli, P., Battistini, C., Comoglio, P. M. Induction of epithelial tubules by growth factor HGF depends on the STAT pathway. Nature. 391, 285-288 (1998).
  4. Bardelli, A., Longati, P., Gramaglia, D., Basilico, C., Tamagnone, L., Giordano, S., Ballinari, D., Michieli, P., Comoglio, P. M. Uncoupling signal transducers from oncogenic MET mutants abrogates cell transformation and inhibits invasive growth. Proc Nat Acad Sci USA. 95, 14379-14383 (1998).
  5. Gambarotta, G., Boccaccio, C., Giordano, S., Ando, M., Stella, M. C., Comoglio, P. M. Ets up-regulates met transcription. Oncogene. 13, 1911-1917 (1996).
  6. Arulanandam, R., Vultur, A., Raptis, L. Transfection techniques affecting Stat3 activity levels. Anal Biochem. 338 (1), 83-89 (2005).
  7. Boussiotis, V. A., Freeman, G. J., Berezovskaya, A., Barber, D. L., Nadler, L. M. Maintenance of human T cell anergy: blocking of IL-2 gene transcription by activated Rap1. Science. 278 (5335), 124-128 (1997).
  8. Brownell, H. L., Firth, K. L., Kawauchi, K., Delovitch, T. L., Raptis, L. A novel technique for the study of Ras activation; electroporation of [alpha-32]GTP. DNA Cell Biol. 16, 103-110 (1997).
  9. Tomai, E., Vultur, A., Balboa, V., Hsu, T., Brownell, H. L., Firth, K. L., Raptis, L. In situ electroporation of radioactive compounds into adherent cells. DNA Cell Biol. 22, 339-346 (2003).
  10. Raptis, L., Vultur, A., Tomai, E., Brownell, H. L., Firth, K. L. In situ electroporation of radioactive nucleotides: assessment of Ras activity and 32P-labelling of cellular proteins. Cell Biology A Laboratory Handbook, Celis, Ed. 43, 329-339 (2006).
  11. Nakashima, N., Rose, D., Xiao, S., Egawa, K., Martin, S., Haruta, T., Saltiel, A. R., Olefsky, J. M. The functional role of crk II in actin cytoskeleton organization and mitogenesis. J Biol Chem. 274, 3001-3008 (1999).
  12. Raptis, L., Firth, K. L. Electroporation of adherent cells in situ. DNA Cell Biol. 9, 615-621 (1990).
  13. Marais, R., Spooner, R. A., Stribbling, S. M., Light, Y., Martin, J., Springer, C. J. A cell surface tethered enzyme improves efficiency in gene-directed enzyme prodrug therapy. Nat Biotechnol. 15, 1373-1377 (1997).
  14. Nielsen, M. S., Nygaard, A. L., Sorgen, P. L., Verma, V., Delmar, M., Holstein-Rathlou, N. H. Gap junctions. Compr Physiol. 2 (3), 1981-2035 (2012).
  15. Geletu, M., Trotman-Grant, A., Raptis, L. Mind the gap; regulation of gap junctional, intercellular communication by the SRC oncogene product and its effectors. Anticancer Res. 32 (10), 4245-4250 (2012).
  16. Vinken, M., Vanhaecke, T., Papeleu, P., Snykers, S., Henkens, T., Rogiers, V. Connexins and their channels in cell growth and cell death. Cell Signal. 18 (5), 592-600 (2006).
  17. Fouly, M. H., Trosko, J. E., Chang, C. C. Scrape-loading and dye transfer: A rapid and simple technique to study gap junctional intercellular communication. Exp Cell Res. 168, 430-442 (1987).
  18. Raptis, L., Brownell, H. L., Firth, K. L., MacKenzie, L. W. A novel technique for the study of intercellular, junctional communication; electroporation of adherent cells on a partly conductive slide. DNA & Cell Biol. 13, 963-975 (1994).
  19. Anagnostopoulou, A., Cao, J., Vultur, A., Firth, K. L., Raptis, L. Examination of gap junctional, intercellular communication by in situ electroporation on two co-planar indium-tin oxide electrodes. Mol Oncol. 1, 226-231 (2007).
  20. Tomai, E., Brownell, H. L., Tufescu, T., Reid, K., Raptis, S., Campling, B. G., Raptis, L. A functional assay for intercellular, junctional communication in cultured human lung carcinoma cells. Lab Invest. 78, 639-640 (1998).
  21. Tomai, E., Brownell, H. L., Tufescu, T., Reid, K., Raptis, L. Gap junctional communication in lung carcinoma cells. Lung Cancer. 23, 223-231 (1999).
  22. Geletu, M., Chaize, C., Arulanandam, R., Vultur, A., Kowolik, C., Anagnostopoulou, A., Jove, R., Raptis, L. Stat3 activity is required for gap junctional permeability in normal epithelial cells and fibroblasts. DNA Cell Biol. 28, 319-327 (2009).
  23. Geletu, M., Arulanandam, R., Greer, S., Trotman-Grant, A., Tomai, E., Raptis, L. Stat3 is a positive regulator of gap junctional intercellular communication in cultured, human lung carcinoma cells. BMC Cancer. 12, 605 (2012).
  24. Brownell, H. L., Narsimhan, R., Corbley, M. J., Mann, V. M., Whitfield, J. F., Raptis, L. Ras is involved in gap junction closure in mouse fibroblasts or preadipocytes but not in differentiated adipocytes. DNA & Cell Biol. 15, 443-451 (1996).
  25. Weber, P. A., Chang, H. C., Spaeth, K. E., Nitsche, J. M., Nicholson, B. J. The permeability of gap junction channels to probes of different size is dependent on connexin composition and permeant-pore affinities. Biophys J. 87 (2), 958-973 (2004).
  26. Graham, F. L., vander Eb, A. J. A new technique for the assay of infectivity of human Adenovirus 5 DNA. Virology. 52, 456-467 (1973).
  27. Arulanandam, R., Vultur, A., Cao, J., Carefoot, E., Truesdell, P., Elliott, B., Larue, L., Feracci, H., Raptis, L. Cadherin-cadherin engagement promotes survival via Rac/Cdc42 and Stat3. Mol Cancer Res 7. , 1310-1327 (2009).
  28. Williams, E. J., Dunican, D. J., Green, P. J., Howell, F. V., Derossi, D., Walsh, F. S., Doherty, P. Selective inhibition of growth factor-stimulated mitogenesis by a cell-permeable Grb2-binding peptide. J. Biol. Chem. 272, 22349-22354 (1997).
  29. Raptis, L., Brownell, H. L., Vultur, A. M., Ross, G., Tremblay, E., Elliott, B. E. Specific inhibition of Growth Factor-stimulated ERK1/2 activation in intact cells by electroporation of a Grb2-SH2 binding peptide. Cell Growth Differ. 11, 293-303 (2000).
  30. Meda, P. Assaying the molecular permeability of connexin channels. Methods Mol Biol. 154, 201-224 (2001).
  31. Hofgaard, J. P., Mollerup, S., Holstein-Rathlou, N. H., Nielsen, M. S. Quantification of gap junctional intercellular communication based on digital image analysis. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 297 (2), R243-R247 (2009).
  32. Raptis, L., Lamfrom, H., Benjamin, T. L. Regulation of cellular phenotype and expression of polyomavirus middle T antigen in rat fibroblasts. Mol Cell Biol. 5, 2476-2486 (1985).
  33. Raptis, L., Marcellus, R. C., Whitfield, J. F. High membrane-associated protein kinase C activity correlates to tumorigenicity but not anchorage-independence in a clone of mouse NIH 3T3 cells. Exp Cell Res. 207, 152-154 (1993).
  34. Vultur, A., Cao, J., Arulanandam, R., Turkson, J., Jove, R., Greer, P., Craig, A., Elliott, B. E., Raptis, L. Cell to cell adhesion modulates Stat3 activity in normal and breast carcinoma cells. Oncogene. 23, 2600-2616 (2004).
  35. Vultur, A., Arulanandam, R., Turkson, J., Niu, G., Jove, R., Raptis, L. Stat3 is required for full neoplastic transformation by the Simian Virus 40 Large Tumor antigen. Mol Biol Cell. 16, 3832-3846 (2005).
check_url/it/51710?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Geletu, M., Guy, S., Firth, K., Raptis, L. A Functional Assay for Gap Junctional Examination; Electroporation of Adherent Cells on Indium-Tin Oxide. J. Vis. Exp. (92), e51710, doi:10.3791/51710 (2014).

View Video