Summary

Enkelt Polyakrylamid-baserte multiwell Stivhet analysen for studier av Responses Stivhet-avhengige Cell

Published: March 25, 2015
doi:

Summary

Here, a method that enables quick, efficient, and inexpensive preparation of polyacrylamide gels in a multiwell plate format is described. The method does not require any specialized equipment and could be easily adopted by any research laboratory. It would be particularly useful in research focused on understanding stiffness-dependent cell responses.

Abstract

Currently, most of the in vitro cell research is performed on rigid tissue culture polystyrene (~1 GPa), while most cells in the body are attached to a matrix that is elastic and much softer (0.1 – 100 kPa). Since such stiffness mismatch greatly affects cell responses, there is a strong interest in developing hydrogel materials that span a wide range of stiffness to serve as cell substrates. Polyacrylamide gels, which are inexpensive and cover the stiffness range of all soft tissues in the body, are the hydrogel of choice for many research groups. However, polyacrylamide gel preparation is lengthy, tedious, and only suitable for small batches. Here, we describe an assay which by utilizing a permanent flexible plastic film as a structural support for the gels, enables the preparation of polyacrylamide gels in a multiwell plate format. The technique is faster, more efficient, and less costly than current methods and permits the preparation of gels of custom sizes not otherwise available. As it doesn’t require any specialized equipment, the method could be easily adopted by any research laboratory and would be particularly useful in research focused on understanding stiffness-dependent cell responses.

Introduction

De fleste vev i kroppen er myke viskoelastiske materialer med en elastisitetsmodul i området fra 0,1 kPa til hjernen til 100 kPa for myk brusk, men de fleste in vitro celle forskning er gjennomført på vevskulturpolystyren (TCP) som har en elastisitetsmodul på ~ 1 GPa . 1 Dette stivhet mismatch i stor grad påvirker hvordan cellene reagerer på sine omgivelser. En økende mengde forskning er derfor viet til å belyse virkningen av substratet stivhet på skjebnen til forskjellige celletyper, inkludert 2,3 stamceller. 4 Som et resultat av dette har flere hydrogeler blitt utviklet for å hjelpe til i forståelsen av stivheten-avhengige celle biologi inkludert polyakrylamid (PA), 5-7 polyetylenglykol (PEG), 8,9 polydimethylsiloxane (PDMS), 10 og alginat. 11 Mens bevis for at underlaget stivhet har en betydelig innvirkning på celle skjebne er økende, er de fleste studier gjennomført på liten skala med et lite antall av samples. Systematiske, flerdimensjonale studier på effekten av underlaget stivhet for en rekke celletyper eller miljøforhold er sjeldne. 12

Flere lovende high-throughput hydrogel teknologi har blitt utviklet, inkludert PEG-baserte mikromatriser, 13 microfluidic enheter for produksjon av agarose hydrogel mikroperler, 14 eller mikro og nanostenger hvor stivhet er modulert av diameter og høyden på microrods. 15 Men de teknologier for å forberede slike substrater er sofistikert og tilgjengelig for begrenset antall laboratorier. Mye forskning som involverer stivhets modulert celle responser anvender polyakrylamid (PA) geler som ikke bare er billig og enkel å gjennomføre, men oppviser også en fysiologisk relevant spekter av Youngs modul, nemlig 0,3 -. 300 kPa 16-22 imidlertid eksisterende metoder for å fremstille PA Geler for cellekultur er arbeidskrevende og følgelig prepared i små grupper. Noen av de problemer forbundet med fremstillingen av PA-geler som celle substrater stammer fra kravet om at gelene må fremstilles: 1) i fravær av oksygen for å sikre fullstendig polymerisering, 2) med en plan og glatt overflate for å tillate ensartet celle festing og utspredning, og 3) permanent festet på undersiden av cellekulturskål for å hindre flytende.

Flere grupper har forsøkt å fremstille PA geler og cellekultur i store partier. Semler et al. Fremstilte tykke ark av PA-geler som så ble "klippe" med et hull, og som er lagt inn i 96-brønners plater. 23 Imidlertid er denne fremgangsmåte begrenset til stivere geler, dvs.> 1 kPa i Youngs modul, fordi mykere gels er "sticky", vanskelig å kutte, og lett skadet. MIH et al., Utviklet en mer avansert teknikk som gjør det mulig for de geler som skal polymeriseres direkte på en glassbunn flere brønner plate. <sopp> 6 Dette ble oppnådd ved å helle gel løsninger i funksjonglassbunn plater og danne geleer av "sandwiching" dem med en tilpasset dekkglass array. 6 selv om svært lovende, små kanteffekter ble likevel observert med denne teknikken. I tillegg krever teknikken en spesialdesignet rekke ikke umiddelbart tilgjengelig for mange laboratorier samt kostbare glassbunn multibrønnplater.

Dette notatet beskriver en enkel og rimelig måte å montere PA gels i en multiwell plate som kan være lett vedtatt av noen laboratorium. Her er en fleksibel plast støtte utnyttet, som har to sider – en hydrofob en, som er frastøtende å PA gels, og en hydrofil en, som kovalent binder PA gel ved deponering. Når PA gel ark samles og permanent festet til den fleksible plaststøtte, gjør det håndtering geler av en hvilken som helst tykkelse eller stivhet og kutte dem i hvilken som helst ønsket form. Dette ca.oach ikke bare produserer tilpassede plastdekk '' i størrelser som ikke er kommersielt tilgjengelige, men også unngår nødvendigheten av å forbehandle glassoverflater, enten dekkglass eller brønnene i kostbare glassbunn multibrønnplater, med en PA-bindende løsning, som er en omstendelig og tidkrevende trinn. Til slutt kan ensartede PA geler ark være forberedt i store partier og lagret de-hydrert i flere måneder.

Oppsummert analysen som presenteres her er en forbedring i forhold til eksisterende metoder i flere aspekter. For det første er prosessen med flerbrønn plateenhet effektiv, og de samlede kostnadene av de nødvendige materialer er lav. For det andre er de hydrogeler som produseres i store partier i en enkelt homogen gel-film. Til slutt er det bare materialer som er kommersielt tilgjengelige som kreves. Nytten av analysen er illustrert ved å utforske virkningen av substratet stivhet på cellemorfologi og sprer området.

Protocol

1. Fremstilling av hydrogel-tilknyttede løsninger og Aliquoter Utarbeidelse av polyacrylamidgel forløper løsning. Forbered polyakrylamid gel-forløper-løsning ved blanding av akrylamid (A) (40% vekt / volum, M r 71,08 g / mol), tverrbindings bisakrylamid (B) (2% w / v, M r 154,17 g / mol), og de- ionisert vann i volumprosenter som er angitt i tabell 1. MERK: Disse oppløsninger kan fremstilles i store porsjoner og lagret ved 4 ° C i opptil flere mån…

Representative Results

Polyakrylamid (PA) hydrogeler er mye brukt for å teste stivhets-avhengig celle-responser. 17,24 Ved å blande forskjellige konsentrasjoner av akrylamid (A) og bis-akrylamid (B) kan man foreta PA geler som spenner stivheten utvalg av de fleste myke vev i kroppen – 0,3 -.. 300 kPa Elastisitetsmodul en Imidlertid er fremstillingen av polyakrylamidgeler kjedelig og tidkrevende, ofte begrenser deres nytte i "high-throughput" applikasjoner så som for eksempel medikamentscreening 12…

Discussion

Polyakrylamidgeler, som opprinnelig ble utviklet for elektroforese, 28 er nå rutinemessig brukt som cellekultur substrater for å studere effektene av substratet stivhet på cellemorfologi, motilitet, og kommunikasjon 3,24,29 blant andre celleegenskaper. Polyakrylamid tillater manipulering av substratet stivhet til å omfatte stivheten av alle myke vev i kroppen (0,3 til 300 kPa) 1 med en enkel endring i polymerforløperen konsentrasjon (figur 2, tabell 1, også se refe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by start-up funds provided to Dr. Silviya Zustiak by Saint Louis University as well as by a President’s Research Fund (PRF) grant awarded to Dr. Silviya Zustiak by Saint Louis University. We thank Naveed Ahmed and Keval Shah for technical assistance.

Materials

Reagents
40% Acrylamide Bio-Rad 161-0140
2% Bis-acrylamide Bio-Rad 161-0142
Ammonium Persulfate Bio-Rad 161-07000
TEMED Sigma Aldrich T9281
Sulfo-SANPAH Thermo Scientific 22589
Collagen Type 1, from Rat tail, 3.68 mg/mL BD Biosciences 354236
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Fisher Scientific  BP231-100
Hydrophobic solution – Repel Silane  GE Healthcare Bio-Sciences 17-1332-01
PBS (1x), pH 7.4 HyClone SH30256.01
Polydimehylsiloxane (PDMS) [Slygard 182 Elastomer Kit] Elsworth Adhesives 3097358-1004
Tyrpsin/EDTA (10x) Sigma Aldrich 44174
RPMI-1640 Medium (1x) HyClone SH30027-02
Fetal Bovine Serum HyClone SH30073-03
Penicillin Streptomycin MP Biomedicals 1670046
Detergent – Triton-X Sigma Aldrich T8787
Formaldehyde 37% Solution Sigma Aldrich F1635
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma Aldrich A2153
BSA-based cell adhesion blocking kit – ECM Cell Adhesion Array Kit Chemicon International ECM540
Disposable lab equipment
flexible plastic support – GelBond PAG Film for Polyacrylamide Gels GE Healthcare Bio-Sciences 309819
Glass Plates Slumpys GBS4100SFSL
50 mL Conicals Fisher Scinetific 3181345107
15 mL Conicals FALCON 352097
Micro centrifuge tubes Fisher Scinetific 2 mL: 02681258
96-well plate (flat bottom) Fisher Scinetific 12565501
Disposable Pipettes (1 mL, 2mL, 5mL, 10mL, 25 mL, 50mL) Fisher Scinetific 1 mL: 13-678-11B, 2mL: 05214038, 5mL(FALCON): 357529, 10mL: 13-678-11E, 25mL: 13-678-11, 50mL: 13-678-11F
Glass Transfer Pipettes Fisher Scinetific 5 3/4": 1367820A, 9":136786B
Pipette Tips (1-200uL, 101-1000uL) Fisher Scinetific 2707509
Plastic Standard Disposable Transfer Pipettes Fisher Scientific 13-711-9D
Parafilm PARAFILM  PM992
Powder Free Examination Gloves Quest 92897
Silicone spacers – Silicone sheet, 0.5 mm thick/13 cm x 18 cm Grace Bio-Labs JTR-S-0.5
Large/non-disposable lab equipment
Light and Flourescent Microscope (Axiovert 200M) Zeiss 3820005619
Microscope Software Zeiss AxioVision Rel. 4.8.2
UV oven UVITRON UV1080
Vacuum chamber/degasser BelArt 999320237
Vacuum pump for degasser KNF Lab 5097482
Tissue Culture Hood NUAIRE NU-425-600
Chemical Fume Hood KEWAUNEE 99151
Inverted Microscope (Axiovert 25) Zeiss 663526
Incubator NUAIRE NU-8500
Pipette Aid Drummond Scientific Co. P-76864
Hemacytometer Bright-Line 383684

References

  1. Levental, I., Georges, P. C., Janmey, P. A. Soft biological materials and their impact on cell function. Soft Matter. 3, 299-306 (2007).
  2. Minton, K. Mechanotransduction: A stiff response. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (8), 500-500 (2014).
  3. Yeung, T., et al. Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion. Cell motility and the cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).
  4. Watt, F. M., Huck, W. T. Role of the extracellular matrix in regulating stem cell fate. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (8), 467-473 (2013).
  5. Zustiak, S., Nossal, R., Sackett, D. L. Multiwell stiffness assay for the study of cell responsiveness to cytotoxic drugs. Biotechnology and bioengineering. 111 (2), (2014).
  6. Mih, J. D., et al. A multiwell platform for studying stiffness-dependent cell biology. PLoS One. 6 (5), e19929 (2011).
  7. Sunyer, R., Jin, A. J., Nossal, R., Sackett, D. L. Fabrication of hydrogels with steep stiffness gradients for studying cell mechanical response. PloS one. 7 (10), e46107 (2012).
  8. Herrick, W. G., et al. PEG-phosphorylcholine hydrogels as tunable and versatile platforms for mechanobiology. Biomacromolecules. 14 (7), 2294-2304 (2013).
  9. Tokuda, E. Y., Leight, J. L., Anseth, K. S. Modulation of matrix elasticity with PEG hydrogels to study melanoma drug responsiveness. Biomaterials. 35 (14), 4310-4318 (2014).
  10. Feng, J., et al. Substrate stiffness influences the outcome of antitumor drug screening in vitro. Clinical hemorheology and microcirculation. 55 (1), 121-131 (2013).
  11. Ramamoorthi, K., Hara, J., Ito, C., Asuri, P. Role of Three-Dimensional Matrix Stiffness in Regulating the Response of Human Neural Cells to Toxins. Cellular and Molecular Bioengineering. 7 (2), 1-7 (2014).
  12. Tilghman, R. W., et al. Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype. PloS one. 5 (9), e12905 (2010).
  13. Gobaa, S., et al. Artificial niche microarrays for probing single stem cell fate in high throughput. Nature methods. 8 (11), 949-955 (2011).
  14. Kumachev, A., et al. High-throughput generation of hydrogel microbeads with varying elasticity for cell encapsulation. Biomaterials. 32 (6), 1477-1483 (2011).
  15. Fu, J., et al. Mechanical regulation of cell function with geometrically modulated elastomeric substrates. Nature Methods. 7 (9), 733-736 (2010).
  16. Pelham, R. J., Wang, Y. Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate flexibility. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (25), 13661-13665 (1997).
  17. Tse, J. R., Engler, A. J., et al. Preparation of hydrogel substrates with tunable mechanical properties. Current protocols in cell biology / editorial board, Juan S. Bonifacino … [et al.]. 10 (Unit 10 16), (2010).
  18. Yeung, T., et al. Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion. Cell motility and the cytoskeleton. 60 (1), 24-34 (2005).
  19. Lo, C. -. M., Wang, H. -. B., Dembo, M., Wang, Y. -. l. Cell movement is guided by the rigidity of the substrate. Biophysical journal. 79 (1), 144-152 (2000).
  20. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix elasticity directs stem cell lineage specification. Cell. 126 (4), 677-689 (2006).
  21. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -. l. Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. Science. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  22. Young, D. A., Choi, Y. S., Engler, A. J., Christman, K. L. Stimulation of adipogenesis of adult adipose-derived stem cells using substrates that mimic the stiffness of adipose tissue. Biomaterials. 34 (34), 8581-8588 (2013).
  23. Semler, E. J., Lancin, P. A., Dasgupta, A., Moghe, P. V. Engineering hepatocellular morphogenesis and function via ligand-presenting hydrogels with graded mechanical compliance. Biotechnology Bioengineering. 89 (3), 296-307 (2005).
  24. Reinhart-King, C. A., Dembo, M., Hammer, D. A. Cell-cell mechanical communication through compliant substrates. Biophysical journal. 95 (12), 6044-6051 (2008).
  25. Fischer, R. S., Myers, K. A., Gardel, M. L., Waterman, C. M. Stiffness-controlled three-dimensional extracellular matrices for high-resolution imaging of cell behavior. Nature protocols. 7 (11), 2056-2066 (2012).
  26. Quinlan, A. M., Billiar, K. L. Investigating the role of substrate stiffness in the persistence of valvular interstitial cell activation. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 100 (9), 2474-2482 (2012).
  27. Zustiak, S. P., Leach, J. B. Hydrolytically degradable poly(ethylene glycol) hydrogel scaffolds with tunable degradation and mechanical properties. Biomacromolecules. 11 (5), 1348-1357 (2010).
  28. Chrambach, A., Rodbard, D. Polyacrylamide gel electrophoresis. Science. 172 (3982), 440-451 (1971).
  29. Lin, Y. C., et al. Mechanosensing of substrate thickness. Physical review. E, Statistical, nonlinear, and soft matter physics. 82 (4), 041918 (2010).
  30. Chrambach, A. . The Practice of Quantitative Gel Electrophoresis. , (1985).
  31. Sagvolden, G., Giaever, I., Pettersen, E. O., Feder, J. Cell adhesion force microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (2), 471-476 (1999).
  32. Javaherian, S., Li, K. J., McGuigan, A. P. A simple and rapid method for generating patterned co-cultures with stable interfaces. BioTechniques. 55 (1), 21-26 (2013).
  33. Tarone, G., Galetto, G., Prat, M., Comoglio, P. M. Cell surface molecules and fibronectin-mediated cell adhesion: effect of proteolytic digestion of membrane proteins. The Journal of cell biology. 94 (1), 179-186 (1982).
  34. Trujillo, V., Kim, J., Hayward, R. C. Creasing instability of surface-attached hydrogels. Soft Matter. 4 (3), 564-569 (2008).
  35. Saha, K., et al. Surface creasing instability of soft polyacrylamide cell culture substrates. Biophysical journal. 99 (12), L94-L96 (2010).
  36. Buxboim, A., Rajagopal, K., Andre’EX, B., Discher, D. E. How deeply cells feel: methods for thin gels. Journal of Physics: Condensed Matter. 22 (19), 194116 (2010).
  37. Merkel, R., Kirchgessner, N., Cesa, C. M., Hoffmann, B. Cell force microscopy on elastic layers of finite thickness. Biophysical journal. 93 (9), 3314-3323 (2007).
check_url/52643?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Syed, S., Karadaghy, A., Zustiak, S. Simple Polyacrylamide-based Multiwell Stiffness Assay for the Study of Stiffness-dependent Cell Responses. J. Vis. Exp. (97), e52643, doi:10.3791/52643 (2015).

View Video