Summary

Riktad evolution Method in<em> Saccharomyces cerevisiae</em>: Mutant bibliotek Skapande och screening

Published: April 01, 2016
doi:

Summary

We present a detailed protocol to construct and screen mutant libraries for directed evolution campaigns in Saccharomyces cerevisiae.

Abstract

Riktad evolution i Saccharomyces cerevisiae erbjuder många attraktiva fördelar vid utformning av enzymer för biotekniska tillämpningar, en process som involverar konstruktionen, kloning och expression av mutantbibliotek, kopplad till hög frekvens homolog DNA-rekombination in vivo. Här presenterar vi ett protokoll för att skapa och bibliotek skärmen muterade i jäst baserat på exemplet med en svamp aryl-alkoholoxidas (AAO) för att förbättra sin totala verksamhet. Två proteinsegment utsattes för fokuserad riktad evolution genom slumpmässig mutagenes och in vivo DNA-rekombination. Överhäng av ~ 50 bp flankerande varje segment tillåts den korrekta återsammansättning av AAO-fusionsgenen i en linjäriserad vektor som ger upphov till en fullständig autonomt replikerande plasmid. Mutant bibliotek berikade med funktionella AAO varianter screenades i S. cerevisiae supernatanter med en känslig hög genomströmning analys baserad på Fenton reaktion. Den allmänna processen förbibliotekskonstruktion i S. cerevisiae beskrivs här kan tillämpas lätt att utvecklas många andra eukaryota gener, undvika extra PCR-reaktioner, in vitro-DNA-rekombination och ligering steg.

Introduction

Riktad molekylär evolution är en robust, snabb och tillförlitlig metod för att utforma enzymer ett, två. Genom upprepade omgångar av slumpmässig mutation, rekombination och screening, kan genereras förbättrade versioner av enzymer som verkar på nya underlag, i nya reaktioner i icke-naturliga miljöer, eller ens att hjälpa cellen att nå nya metabola mål 3-5. Bland värdarna används i riktad evolution, erbjuder öljäst Saccharomyces cerevisiae en repertoar av lösningar för funktionellt uttryck av komplexa eukaryota proteiner som annars inte finns tillgängliga i prokaryota motparter 6,7.

Används uttömmande i cellbiologiska studier, har denna lilla eukaryot modell många fördelar i form av post-translationella modifieringar, enkel manipulation och transformationseffektiviteten, som alla är viktiga egenskaper att konstruera enzymer genom riktad evolution 8. Dessutom den höga frekvensenav homolog DNA-rekombination i S. cerevisiae kopplad till en effektiv apparat korrekturläsning öppnar ett brett utbud av möjligheter för biblioteks skapande och gensammansättning in vivo, främja utvecklingen av olika system från enstaka enzymer till komplexa artificiella vägar 9-12. Vårt laboratorium har tillbringat det senaste decenniet utforma verktyg och strategier för molekylär evolution av olika ligninaser i jäst (oxidoreduktaser är involverade i nedbrytningen av lignin under trä sönderfall) 13-14. I detta meddelande presenterar vi ett detaljerat protokoll för att förbereda och bibliotek skärmen muterade i S. cerevisiae för en modell flavooxidase, -aryl-alkoholoxidas (AAO 15) -, som lätt kan översättas till många andra enzymer. Protokollet innebär en fokuserad-riktad evolution metoden (MORPHING: mutagen Organiserad Rekombination processen genom homolog di vivo gruppering) biträdd av jästcellen apparaten 16, enda mycket känslig screeningsanalys baserad på Fenton-reaktion i syfte att detektera AAO aktiviteten utsöndras i odlingsbuljongen 17.

Protocol

1. Mutant Library Construction Välj vilka regioner som skall utsättas för MORPHING med hjälp av beräkningsalgoritmer baserat på de tillgängliga kristallstruktur eller homologimodeller 18. Här riktar två regioner i AAO från kungsmussling för slumpmässig mutagenes och rekombination (Met [α1] -Val109, Phe392-Gln566), medan förstärka resten av genen (844 bp) av hifi-PCR (figur 1). Obs: Flera segment kan studeras genom MORPHING i …

Representative Results

AAO från P. eryngii är ett extracellulärt flavooxidase som förser svamp peroxidaser med H2O 2 att börja attackera lignin. Två segment av AAO utsattes för fokuserad riktad evolution genom MORPHING i syfte att öka dess aktivitet och dess uttryck i S. cerevisiae 19. Oberoende av de utländska enzymer hyste av S. cerevisiae, den mest kritiska frågan när man konstruerar muterade bibliotek i jäst avser konstruktion av speci…

Discussion

I den här artikeln har vi sammanfattat de flesta av de tips och tricks som används i vårt laboratorium för att konstruera enzymer genom riktad evolution i S. cerevisiae (med AAO som ett exempel) så att de kan anpassas för användning med många andra eukaryota enzymsystem genom att helt enkelt följa den gemensamma metod som beskrivs här.

I termer av biblioteket skapande, är MORPHING ett snabbt en-pot metod för att införa och rekombinera slumpmässiga mutationer i små pro…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the European Commission project Indox-FP7-KBBE-2013-7-613549; a Cost-Action CM1303-Systems Biocatalysis; and the National Projects Dewry [BIO201343407-R] and Cambios [RTC-2014-1777-3].

Materials

1. Culture media
Ampicillin sodium salt Sigma-Aldrich A0166 CAS Nº 69-52-3 M.W. 371.39
Bacto Agar Difco 214010
Cloramphenicol Sigma-Aldrich C-0378 CAS Nº 56-75-7 M.W. 323.13
D-(+)-Galactose Sigma-Aldrich G0750 CAS Nº 59-23-4 M.W. 180.16
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G5767 CAS Nº 50-99-7 M.W. 180.16
D-(+)-Raffinose pentahydrate Sigma-Aldrich 83400 CAS Nº 17629-30-0 M.W. 594.51
Peptone Difco 211677
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P0662 CAS Nº 7778-77-0 M.W. 136.09
Uracil Sigma Aldrich U1128
Yeast Extract Difco 212750
Yeast Nitrogen Base without Amino Acids Difco 291940
Yeast Synthetic Drop-out Medium Supplements without uracil Sigma-Aldrich Y1501
Name Company Catalog Number Comments
2. PCR Reactions
dNTP Mix Agilent genomics 200415-51 25 mM each
iProof High-Fidelity DNA polymerase Bio-rad 172-5301
Manganese(II) chloride tetrahydrate Sigma-Aldrich M8054 CAS Nº 13446-34-9 M.W. 197.91
Taq DNA Polymerase Sigma-Aldrich D4545 For error prone PCR
Name Company Catalog Number Comments
3. Plasmid linearization
BamHI restriction enzyme New England Biolabs R0136S
Bovine Serum Albumin New England Biolabs B9001S
XhoI restriction enzyme New England Biolabs R0146S
Gel Red Biotium 41003 For staining DNA
Name Company Catalog Number Comments
4. FOX assays
Ammonium iron(II) sulfate hexahydrate Sigma-Aldrich F3754 CAS Nº 7783-85-9 M.W. 392.14
Anysil Alcohol Sigma Aldrich W209902 CAS Nº 105-13-5 M.W. 138.16
D-Sorbitol Sigma-Aldrich S1876 CAS Nº 50-70-4 M.W. 182.17
Hydrogen peroxide 30% Merck Millipore 1072090250 FOX standard curve
Xylenol Orange disodium salt Sigma-Aldrich 52097 CAS Nº 1611-35-4 M.W. 716.62
Agarose gel stuff
Agarose Norgen 28035 CAS Nº 9012-36-6
Gel Red Biotium 41003 DNA analysis dye
GeneRuler 1Kb Ladder Thermo Scientific SM0311 DNA M.W. standard
Loading Dye 6x Thermo Scientific R0611
Low-melting temperature agarose Bio-rad 161-3112 CAS Nº 39346-81-1
Name Company Catalog Number Comments
5. Kits and cells
S. cerevisiae strain BJ5465 LGC Promochem, Spain ATTC 208289 Protease deficient strain with genotype: MATα ura3-52 trp1 leu2-delta1 his3-delta200 pep4::HIS3 prb1-delta1.6R can1 GAL
E. coli XL2-Blue competent cells Agilent genomics 200150 For plasmid purification and amplification
NucleoSpin Gel and PCR Clean-up Kit Macherey-Nagel 740,609,250 DNA gel extraction
NucleoSpin Plasmid Kit Macherey-Nagel 740,588,250 Column miniprep Kit
Yeast Transformation Kit Sigma-Aldrich YEAST1-1KT Included DNA carrier (Salmon testes)
Zymoprep yeast plasmid miniprep I Zymo research D2001 Plasmid extraction from yeast
Name Company Catalog Number Comments
6. Plates
96-well plates Greioner Bio-One 655101 Clear, non-sterile, Polystyrene (for activity measurements)
96-well plates Greioner Bio-One 655161 Clear, sterile, Polystyrene (for microfermentations)
96-well plate lid Greioner Bio-One 656171 Clear, sterile, Polystyrene (for microfermentations)

Riferimenti

  1. Jäckel, C., Hilvert, D. Biocatalysts by evolution. Curr. Opin. Biotechnol. 21 (6), 753-759 (2010).
  2. Bornscheuer, U. T. Engineering the third wave of biocatalysis. Nature. 485 (7397), 185-194 (2012).
  3. Renata, H., Wang, Z. W., Arnold, F. H. Expanding the enzyme universe: accessing non-natural reactions by mechanism-guided directed evolution. Angew. Chem. Int. Ed. 54 (11), 3351-3367 (2015).
  4. Cobb, R. E., Chao, R., Zhao, H. Directed evolution: past, present and future. AIChE J. 59 (5), 1432-1440 (2013).
  5. Abatemarco, J., Hill, A., Alper, H. S. Expanding the metabolic engineering toolbox with directed evolution. Biotechnol. J. 8 (12), 1397-1410 (2013).
  6. Pourmir, A., Johannes, T. W. Directed evolution: selection of the host organism. Comput Struct Biotechnol J. 2 (3), e201209012 (2012).
  7. Krivoruchko, A., Siewers, V., Nielsen, J. Opportunities for yeast metabolic engineering: lessons from synthetic biology. Biotechnol J. 6 (3), 262-276 (2011).
  8. Gonzalez-Perez, D., Garcia-Ruiz, E., Alcalde, M. Saccharomyces cerevisiae in directed evolution: an efficient tool to improve enzymes. Bioeng Bugs. 3, 172-177 (2012).
  9. Alcalde, M. Mutagenesis protocols in Saccharomyces cerevisiae by In Vivo Overlap Extension. Methods Mol. Biol. 634, 3-14 (2010).
  10. Bulter, T., Alcalde, M. Preparing libraries in Saccharomyces cerevisiae. Methods. Mol. Biol. 231, 17-22 (2003).
  11. Ostrov, N., Wingler, L. M., Cornish, W. Gene assembly and combinatorial libraries in S. cerevisiae via reiterative recombination. Methods. Mol. Biol. 978, 187-203 (2013).
  12. Shao, Z., Zhao, H., Zhao, H. DNA assembler, an in vivo genetic method for rapid construction of biochemical pathways. Nucleic Acids Res. 37 (2), e16 (2009).
  13. Alcalde, M. Engineering the ligninolytic enzyme consortium. Trends Biotechnol. 33 (3), 155-162 (2015).
  14. Garcia-Ruiz, E. Directed evolution of ligninolytic oxidoreductases: from functional expression to stabilization and beyond. Cascade Biocatalysis: integrating stereoselective and environmentally friendly reactions. , 1-22 (2014).
  15. Hernandez-Ortega, A., Ferreira, P., Martinez, A. T. Fungal aryl-alcohol oxidase: a peroxide-producing flavoenzyme involved in lignin degradation. Appl. Microbiol. Biotechnol. 93 (4), 1395-1410 (2012).
  16. Gonzalez-Perez, D., Molina-Espeja, P., Garcia-Ruiz, E., Alcalde, M. Mutagenic organized recombination process by homologous in vivo grouping (MORPHING) for directed enzyme evolution. PLoS One. 9, e90919 (2014).
  17. Rhee, S. G., Chang, T., Jeong, W., Kang, D. Methods for Detection and Measurement of Hydrogen Peroxide Inside and Outside of Cells. Mol. Cells. 29 (6), 539-549 (2010).
  18. Sebestova, E., Bendl, J., Brezovsky, J., Damborsky, J. Computational tools for designing smart libraries. Methods. Mol. Biol. 1179, 291-314 (2014).
  19. Viña-Gonzalez, J., Gonzalez-Perez, D., Ferreira, P., Martinez, A. T., Alcalde, M. Focused directed evolution of aryl-alcohol oxidase in yeast using chimeric signal peptides. Appl. Environ. Microbiol. , (2015).
  20. Gay, C., Collins, J., Gebicki, J. M. Hydroperoxide Assay with the Ferric-Xylenol orange Complex. Anal. Biochem. 273 (2), 149-155 (1999).
  21. Reetz, M. T. Biocatalysis in organic chemistry and biotechnology: Past, present, and future. J. Am. Chem. Soc. 135 (34), 12480-12496 (2013).
  22. Mate, D. M., Gonzalez-Perez, D., Mateljak, I., Gomez de Santos, P., Vicente, A. I., Alcalde, M. The pocket manual of directed evolution: Tips and tricks. Biotechnology of Microbial Enzymes: Production, Biocatalysis and Industrial Applications. , .
  23. Chao, R., Yuan, Y., Zhao, H. Recent advances in DNA assembly technologies. FEMS Yeast Res. 15, 1-9 (2015).
check_url/it/53761?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Viña-Gonzalez, J., Gonzalez-Perez, D., Alcalde, M. Directed Evolution Method in Saccharomyces cerevisiae: Mutant Library Creation and Screening. J. Vis. Exp. (110), e53761, doi:10.3791/53761 (2016).

View Video