Summary

Протокол для функциональной оценки цельного белка Насыщенность мутагенеза библиотек Использование высокого секвенирования

Published: July 03, 2016
doi:

Summary

Мы представляем протокол для функциональной оценки комплексных библиотек мутагенеза насыщения Одноузельная белков с использованием высокой пропускной последовательности. Важно отметить, что этот подход использует ортогональные пары праймеров мультиплекс библиотека строительства и последовательности. Представитель результаты с использованием TEM-1 бета-лактамазу, выбранный при клинически значимой дозы ампициллина предоставляются.

Abstract

Site-directed mutagenesis has long been used as a method to interrogate protein structure, function and evolution. Recent advances in massively-parallel sequencing technology have opened up the possibility of assessing the functional or fitness effects of large numbers of mutations simultaneously. Here, we present a protocol for experimentally determining the effects of all possible single amino acid mutations in a protein of interest utilizing high-throughput sequencing technology, using the 263 amino acid antibiotic resistance enzyme TEM-1 β-lactamase as an example. In this approach, a whole-protein saturation mutagenesis library is constructed by site-directed mutagenic PCR, randomizing each position individually to all possible amino acids. The library is then transformed into bacteria, and selected for the ability to confer resistance to β-lactam antibiotics. The fitness effect of each mutation is then determined by deep sequencing of the library before and after selection. Importantly, this protocol introduces methods which maximize sequencing read depth and permit the simultaneous selection of the entire mutation library, by mixing adjacent positions into groups of length accommodated by high-throughput sequencing read length and utilizing orthogonal primers to barcode each group. Representative results using this protocol are provided by assessing the fitness effects of all single amino acid mutations in TEM-1 at a clinically relevant dosage of ampicillin. The method should be easily extendable to other proteins for which a high-throughput selection assay is in place.

Introduction

Мутагенеза уже давно используется в лаборатории для изучения свойств биологических систем и их эволюции, а также для создания мутантных белков или организмов с улучшенными или новыми функциями. В то время как ранние подходы опирались на методы , которые производят случайные мутации в организмах, появление технологии рекомбинантных ДНК позволило исследователям ввести выберите изменения ДНК в сайт-специфической манере, то есть., Сайт-направленный мутагенез 1,2. С учетом современных методов, как правило , с использованием мутагенных олигонуклеотидов в полимеразной цепной реакции (ПЦР), он относительно легкий , чтобы создавать и оценивать небольшое число мутаций (например., Точечные мутации) в данном гене 3,4. Это гораздо сложнее, однако, когда цель подходы, например, создание и оценка всех возможных одноузельных (или более высокого порядка) мутации.

В то время как многое узнали из ранних исследований, пытающихся оценить большое количество мutations в генах, методы , используемые часто трудоемкий, например , требующей оценки каждой мутации независимо друг от друга с помощью нонсенс – супрессоры штаммы 5-7, или были ограничены в количественном способности из – за низкой глубины секвенирование Sanger секвенирования 8. Методы , используемые в этих исследованиях , были в значительной степени вытеснен методами с использованием высокой пропускной способностью технологии секвенирования 9-12. Эти концептуально простые подходы влекут за собой создание библиотеки , содержащей большое количество мутаций, подвергая библиотеку на экран или выбора для функции, а затем глубокого секвенирования (то есть., По порядку> 10 6 секвенирования читает) библиотека , полученные до и после выбора. Таким образом, фенотипические или фитнес эффекты большого количества мутаций, представлен как изменение частоты популяции каждого мутанта, можно оценивать одновременно и более количественно.

Ранее мы ввели Simp(т. е, цельного белка мутагенеза насыщения библиотек) ле подход к оценке библиотек всех возможных мутаций отдельных аминокислот в белках, применимый к генам с длиной более , чем последовательности чтения длину 11,13: Во- первых, каждая позиция аминокислота представляет собой рандомизированное сайт-направленного мутагенных PCR. В ходе этого процесса ген разделен на группы, состоящие из прилежащих позиций с общей длиной размещены путем секвенирования платформы. Мутагенные ПЦР-продукты для каждой группы затем объединяются, и каждая группа независимо друг от друга подвергают селекции и высокой пропускной последовательности. Поддерживая соответствие между расположением мутаций в последовательности и длины последовательности чтения, этот подход имеет преимущество максимизации глубины секвенирования: в то время как можно было бы просто последовательность таких библиотек в коротких окнах без разделения на группы (например, с помощью стандартного дробовика. секвенирование подход), наиболее чтения, полученные бы дикого типа и, следовательно, мajority секвенирования пропускной способности неиспользуемого (например, для целого белка мутагенеза насыщения библиотеки белка кислоты 500 аминокислоты секвенировали в 100 аминокислот (300 пар оснований ) окон, при минимальном 80% читает будет последовательность дикого типа).

Здесь протокол представлен , который использует высокую пропускную способность секвенирования для функциональной оценки целого белка библиотек мутагенеза насыщения, с использованием вышеуказанного подхода (описанной на рисунке 1). Важно отметить, что мы вводим использование ортогональных праймеров в библиотеке процесса клонирования для штрих-кода каждой группы последовательности, которая позволяет им быть мультиплексированы в одну библиотеку, подвергаясь одновременно скрининга или отбора, а затем демультиплексируется для глубокого секвенирования. Так как группы последовательности не подвергаются отбору независимо друг от друга, это снижает нагрузку и гарантирует, что каждая мутация испытывает тот же уровень отбора. ТЕМ-1 β-лактамазы, фермента, который придает устойчивость на высоком уровне дляβ-лактамные антибиотики (например, ампициллин.) в бактерии используют в качестве модельной системы 14-16. Протокол описан для оценки в целом белка насыщения мутагенеза библиотеки TEM-1 в Е. палочка при отборе на приближенном уровне сыворотки для клинической дозы ампициллин (50 мкг / мл) 17,18.

Protocol

Примечание: На рисунке 1 контур протокола. Несколько шагов и реагенты в протоколе требуют меры безопасности (помеченные "ОСТОРОЖНО"). Обратитесь к Паспорта безопасности перед использованием. Все шаги протокола выполняются при комнатной температуре, если не указано друго?…

Representative Results

Карта плазмиды для пяти модифицированных плазмид pBR322 , содержащих ортогональные заливке сайты (pBR322_OP1 – pBR322_OP5) показана на рисунке 2А. Для того, чтобы проверить, является ли ортогональные Праймеры специфичны, ПЦР проводили с использованием каждой пары ортогона…

Discussion

Здесь протокол описан для проведения функциональной оценки целого белка библиотек мутагенеза насыщения, используя высокую пропускную способность технологии секвенирования. Важным аспектом способа является использование ортогональных праймеров во время процесса клонирования. Есл?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R.R. acknowledges support from the National Institutes of Health (RO1EY018720-05), the Robert A. Welch Foundation (I-1366), and the Green Center for Systems Biology.

Materials

Typtone Research Products Intl. Corp. T60060-1000.0
Yeast extract Research Products Intl. Corp. Y20020-500.0
Sodium chloride Fisher Scientific BP358-212
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333-500G
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M7506-500G
Agar Fisher Scientific BP1423-500
Tetracycline hydrochloride Sigma-Aldrich T7660-5G
petri plates Corning 351029
MATLAB  Mathworks http://www.mathworks.com/products/matlab/
Oligonucleotide primers Integrated DNA Technologies https://www.idtdna.com/pages/products/dna-rna/custom-dna-oligos 25 nmol scale, standard desalting
pBR322_AvrII available upon request pBR322 plasmid modified to contain AvrII restriction site downstream of the TEM-1 gene
pBR322_OP1 – pBR322_OP5 available upon request five modified pBR322 plasmids each containing a pair of orthogonal priming sites
Q5 high-fidelity DNA polymerase New England Biolabs M0491L includes 5X PCR buffer and PCR additive (GC enhancer)
15 mL conical tube Corning 430025
Multichannel pipettes (Eppendorf ResearchPlus) Eppendorf
PCR plate, 96 well Fisher Scientific 14230232
96 well plate seal Excel Scientific F-96-100
Veriti 96-well thermal cycler Applied Biosystems 4375786
6X gel loading dye New England Biolabs B7024S
Agarose Research Products Intl. Corp. 20090-500.0
Ethidium bromide Bio-Rad 161-0433
UV transilluminator (FOTO/Analyst ImageTech) Fotodyne Inc. http://www.fotodyne.com/content/ImageTech_gel_documentation
EB buffer Qiagen 19086
96-well black-walled, clear bottom assay plates Corning 3651
Lambda phage DNA New England Biolabs N3011S
PicoGreen dsDNA reagent Invitrogen P7581 dsDNA quantitation reagent, used in protocol step 2.2.4
Victor 3V microplate reader PerkinElmer
DNA purification kit Zymo Research D4003
Microcentrifuge tubes Corning 3621
Long-wavelength UV illuminator Fisher Scientific FBUVLS-80
Agarose gel DNA extraction buffer Zymo Research D4001-1-100
AatII New England Biolabs R0117S
AvrII New England Biolabs R0174L
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202S
EVB100 electrocompetent E. coli Avidity EVB100
Electroporator (E. coli Pulser) Bio-Rad 1652102
Electroporation cuvettes Bio-Rad 165-2089
Spectrophotometer (Ultrospec 3100 pro) Amersham Biosciences 80211237
50 mL conical tubes Corning 430828
Plasmid purification kit Macherey-Nagel 740588.25
8 well PCR strip tubes Axygen 321-10-551
Qubit dsDNA HS assay kit Invitrogen Q32854 dsDNA quantitation reagent
Qubit assay tubes Invitrogen Q32856
Qubit fluorometer Invitrogen Q32866
Ampicillin sodium salt Akron Biotechnology 50824296
MiSeq reagent kit v2 (500 cycles) Illumina MS-102-2003
MiSeq desktop sequencer Illumina http://www.illumina.com/systems/miseq.html alternatively, one could sequence on Illumina HiSeq platform
FLASh software John Hopkins University – open source http://ccb.jhu.edu/software/FLASH/ software to merge paired-end reads from next-generation sequencing data
AatII_F GATAATAATGGTTTCTTAGACGTCAGGTGGC
AvrII_R CTTCACCTAGGTCCTTTTAAATTAAAAATGAAG
AvrII_F CTTCATTTTTAATTTAAAAGGACCTAGGTGAAG
AatII_OP1_R ACCTGACGTCCGTATTTCAACTGTCCGGTCTAAGAAACCATTATTATCATGACATTAAC
AatII_OP2_R ACCTGACGTCCGCTCACGGAGTGTACTAATTAAGAAACCATTATTATCATGACATTAAC
AatII_OP3_R ACCTGACGTCGTACGTCTGAACTTGGGACTTAAGAAACCATTATTATCATGACATTAAC
AatII_OP4_R ACCTGACGTCCCGTTCTCGATACCAAGTGATAAGAAACCATTATTATCATGACATTAAC
AatII_OP5_R ACCTGACGTCGTCCGTCGGAGTAACAATCTTAAGAAACCATTATTATCATGACATTAAC
OP1_F GACCGGACAGTTGAAATACG
OP1_R CGACGTACAGGACAATTTCC
OP2_F ATTAGTACACTCCGTGAGCG
OP2_R AGTATTAGGCGTCAAGGTCC
OP3_F AGTCCCAAGTTCAGACGTAC
OP3_R GAAAAGTCCCAATGAGTGCC
OP4_F TCACTTGGTATCGAGAACGG
OP4_R TATCACGGAAGGACTCAACG
OP5_F AGATTGTTACTCCGACGGAC
OP5_R TATAACAGGCTGCTGAGACC
Group1_F ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNGCATTTTGCCTACCGGTTTTTGC
Group1_R GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNTCTTGCCCGGCGTCAAC
Group2_F ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNGAACGTTTTCCAATGATGAGCAC
Group2_R GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNGTCCTCCGATCGTTGTCAGAAG
Group3_F ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNAGTAAGAGAATTATGCAGTGCTGCC
Group3_R GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNTCGCCAGTTAATAGTTTGCGC
Group4_F ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNCCAAACGACGAGCGTGACAC
Group4_R GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNGCAATGATACCGCGAGACCC
Group5_F ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNCGGCTGGCTGGTTTATTGC
Group5_R GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNTATATGAGTAAACTTGGTCTGACAG
501_F AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTATAGCCTACACTCTTTCCCTACACGAC
502_F AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACATAGAGGCACACTCTTTCCCTACACGAC
503_F AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACCCTATCCTACACTCTTTCCCTACACGAC
504_F AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACGGCTCTGAACACTCTTTCCCTACACGAC
505_F AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACAGGCGAAGACACTCTTTCCCTACACGAC
701_R CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATCGAGTAATGTGACTGGAGTTCAGACGTG
702_R CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATTCTCCGGAGTGACTGGAGTTCAGACGTG

Riferimenti

  1. Hutchison, C. A., et al. Mutagenesis at a specific position in a DNA sequence. J Biol Chem. 253 (18), 6551-6560 (1978).
  2. Mullis, K. B., Faloona, F. A. Specific synthesis of DNA in vitro via a polymerase-catalyzed chain reaction. Methods Enzymol. 155, 335-350 (1987).
  3. Papworth, C., Bauer, J. C., Braman, J., Wright, D. A. Site-directed mutagenesis in one day with >80% efficiency. Strategies. 9 (3), 3-4 (1996).
  4. Higuchi, R., Krummel, B., Saiki, R. K. A general method of in vitro preparation and specific mutagenesis of DNA fragments: study of protein and DNA interactions. Nucleic Acids Res. 16 (15), 7351-7367 (1988).
  5. Rennell, D., Bouvier, S. E., Hardy, L. W., Poteete, A. R. Systematic mutation of bacteriophage T4 lysozyme. J Mol Biol. 222 (1), 67-88 (1991).
  6. Markiewicz, P., Kleina, L. G., Cruz, C., Ehret, S., Miller, J. H. Genetic studies of the lac repressor. XIV. Analysis of 4000 altered Escherichia coli lac repressors reveals essential and non-essential residues, as well as ‘spacers’ which do not require a specific sequence. J Mol Biol. 240 (5), 421-433 (1994).
  7. Kleina, L. G., Miller, J. H. Genetic studies of the lac repressor. XIII. Extensive amino acid replacements generated by the use of natural and synthetic nonsense suppressors. J Mol Biol. 212 (2), 295-318 (1990).
  8. Huang, W., Petrosino, J., Hirsch, M., Shenkin, P. S., Palzkill, T. Amino acid sequence determinants of beta-lactamase structure and activity. J Mol Biol. 258 (4), 688-703 (1996).
  9. Fowler, D. M., et al. High-resolution mapping of protein sequence-function relationships. Nat Methods. 7 (9), 741-746 (2010).
  10. Hietpas, R. T., Jensen, J. D., Bolon, D. N. Experimental illumination of a fitness landscape. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (19), 7896-7901 (2011).
  11. McLaughlin, R. N., Poelwijk, F. J., Raman, A., Gosal, W. S., Ranganathan, R. The spatial architecture of protein function and adaptation. Nature. 491 (7422), 138-142 (2012).
  12. Deng, Z., et al. Deep sequencing of systematic combinatorial libraries reveals beta-lactamase sequence constraints at high resolution. J Mol Biol. 424 (3-4), 150-167 (2012).
  13. Stiffler, M. A., Hekstra, D. R., Ranganathan, R. Evolvability as a Function of Purifying Selection in TEM-1 beta-Lactamase. Cell. 160 (5), 882-892 (2015).
  14. Matagne, A., Lamotte-Brasseur, J., Frere, J. M. Catalytic properties of class A beta-lactamases: efficiency and diversity. Biochem J. 330 (Pt2), 581-598 (1998).
  15. Salverda, M. L., De Visser, J. A., Barlow, M. Natural evolution of TEM-1 beta-lactamase: experimental reconstruction and clinical relevance. FEMS Microbiol Rev. 34 (6), 1015-1036 (2010).
  16. Weinreich, D. M., Delaney, N. F., Depristo, M. A., Hartl, D. L. Darwinian evolution can follow only very few mutational paths to fitter proteins. Science. 312 (5770), 111-114 (2006).
  17. Stewart, S. M., Fisher, M., Young, J. E., Lutz, W. Ampicillin levels in sputum, serum, and saliva. Thorax. 25 (3), 304-311 (1970).
  18. Giachetto, G., et al. Ampicillin and penicillin concentration in serum and pleural fluid of hospitalized children with community-acquired pneumonia. Pediatr Infect Dis J. 23 (7), 625-629 (2004).
  19. Ambler, R. P., et al. A standard numbering scheme for the class A beta-lactamases. Biochem J. 276 (Pt 1), 269-270 (1991).
  20. Magoc, T., Salzberg, S. L. FLASH: fast length adjustment of short reads to improve genome assemblies). Bioinformatics. 27 (21), 2957-2963 (2011).
  21. Melamed, D., Young, D. L., Gamble, C. E., Miller, C. R., Fields, S. Deep mutational scanning of an RRM domain of the Saccharomyces cerevisiae poly(A)-binding protein. RNA. 19 (11), 1537-1551 (2013).
  22. Bank, C., Hietpas, R. T., Jensen, J. D., Bolon, D. N. A systematic survey of an intragenic epistatic landscape. Mol Biol Evol. 32 (1), 229-238 (2015).
  23. Dove, S. L., Joung, J. K., Hochschild, A. Activation of prokaryotic transcription through arbitrary protein-protein contacts. Nature. 386 (6625), 627-630 (1997).
  24. Romero, P. A., Tran, T. M., Abate, A. R. Dissecting enzyme function with microfluidic-based deep mutational scanning. Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (23), 7159-7164 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Stiffler, M. A., Subramanian, S. K., Salinas, V. H., Ranganathan, R. A Protocol for Functional Assessment of Whole-Protein Saturation Mutagenesis Libraries Utilizing High-Throughput Sequencing. J. Vis. Exp. (113), e54119, doi:10.3791/54119 (2016).

View Video