Summary

תיוג של xenografts הנגזר חולה סרטן השד עם כתבים לעקיבים עבור צמיחת גידולים וגרורים מחקרים

Published: November 30, 2016
doi:

Summary

אנו מתארים שיטת תיוג יציב של xenografts נגזרות החולות (PDXs) עם חלקיקי lentiviral להביע כתבי חלבון בלוציפראז ירוקים-ניאון. שיטה זו מאפשרת מעקב צמיחת PDXs המצוי באתר הראשי, כמו גם באיתור גרורות ספונטניות ניסיון באמצעות במערכות הדמית vivo.

Abstract

The use of preclinical models to study tumor biology and response to treatment is central to cancer research. Long-established human cell lines, and many transgenic mouse models, often fail to recapitulate the key aspects of human malignancies. Thus, alternative models that better represent the heterogeneity of patients’ tumors and their metastases are being developed. Patient-derived xenograft (PDX) models in which surgically resected tumor samples are engrafted into immunocompromised mice have become an attractive alternative as they can be transplanted through multiple generations,and more efficiently reflect tumor heterogeneity than xenografts derived from human cancer cell lines. A limitation to the use of PDXs is that they are difficult to transfect or transduce to introduce traceable reporters or to manipulate gene expression. The current protocol describes methods to transduce dissociated tumor cells from PDXs with high transduction efficiency, and the use of labeled PDXs for experimental models of breast cancer metastases. The protocol also demonstrates the use of labeled PDXs in experimental metastasis models to study the organ-colonization process of the metastatic cascade. Metastases to different organs can be easily visualized and quantified using bioluminescent imaging in live animals, or GFP expression during dissection and in excised organs. These methods provide a powerful tool to extend the use of multiple types of PDXs to metastasis research.

Introduction

התפתחות xenografts גידול נגזר החולה (PDXs), שבו ניתוח דגימות גידול resected הן engrafted ישירות לעכברי חיסון נפגע, מציעה מספר יתרונות על פני מודלי xenograft תא-קו רגילים ומייצגת התקדמות גדולה בחקר סרטן 1,2. PDXs יכול להישמר והרחיב על ידי קטעים רצופים עם שינוי מזערי של תכונות גנטיות וביולוגיות של הגידול גדל במעבר הראשון; ועוד לשקף במדויק ההטרוגניות גידול מ xenografts נגזר שורות תאים אנושיים סרטן 3-8. מודלים אלה נמצאים כיום בשימוש נרחב כפלטפורמה אישית בריפוי הסרטן 9,10, בתור פלטפורמה פרה בפיתוח תרופות 6,11 וככלי ניסיוני לחקר הביולוגיה סרטן 4,12.

רוב PDXs מושתל מופץ תת עורי, אשר יתכן מאפשר מדידה של גידול לאורך זמן באמצעות מחוגה. למרות זאתהמחלה, גרורתי כבר יותר קשה מודל באמצעות PDXs. באופן ספציפי לסרטן השד, xenografts עם קיבולת גרורתי לאיברים שונים תואר 3,5,13, אבל התדר של הפצה ספונטנית לאתרים גרורתי הוא נמוך ביותר. איפה דוח זיהוי וכימות של ניטל גרורתי מסתמכים בבדיקה היסטולוגית מייגעת של אברי מטרה שלאחר מוות. שורות תאים סרטניים המבטאים bioluminescent (בלוציפראז, לוק) או פלורסנט (חלבון פלואורסצנטי ירוק, GFP) לכתבי גן משמשות בדרך כלל במודל ניסיוני של גרורות סרטן השד למוח, ריאות, עצמות וכבדות לאחר intracardiac, זנב-וריד, intrafemoral הזרקת טחול 14-16. בעוד המודלים האלה לעקוף הפצה מן הגידולים הראשוניים, הם בעלי ערך כדי לחקור את המנגנונים של כמיהות איברי קולוניזציה גרורתית. עם זאת, בתאים שמקורם בגידולים ו PDXs מטופל עיקריים יכולים להיות שיעורי תמרה או transfection נמוך usinנהלים קבועים גרם. חלופה אחת היא להקים שורות תאי PDX-derived במבחנת 17, אשר יכול להיות מתויג מכן באמצעות פרוטוקולים בתרבית רקמה קונבנציונליים. גישה זו לעומת זאת, אינה מתאימה התיוג ביותר PDXs, עבורו גזירת תא אונליין קשה והוא יכול לשנות את הפנוטיפ של התאים. כאן אנו מציגים פרוטוקול התמרה של תאים סרטניים PDX-ניתק עם וקטורים lentiviral מתאים הדמיה in vivo. בנוסף, אנו מתארים גרורים הניסיונות באמצעות הזרקת intracardiac של תאי PDX-GFP לוק שכותרתו ניתקו בעכברי immunocompromised.

פרוטוקול בסיסי עבור התמרה של organoids PDX-ניתק עם lentivirus להביע כתב הגן בעבר תוארה 18. בפרוטוקול הנוכחי אנו מתארים שיטות נוספות להעשיר עבור תאים סרטניים אנושיים ולקבל ליד יעילות התמר 100%, כמו גם את השימוש PDXs שכותרתו לגילוי סרטן השד הניסיוןגרורות. פרוטוקול זה יכול להיות מותאם עבור תיוג סוגי הסרטן מרובים של PDXs עם סמנים זורחים ניאון שונים כמו גם אפנון של ביטוי גנים (כלומר, shRNA מציאה של גנים של עניין).

Protocol

כל הצעדים המחייבים את השימוש בבעלי חיים בפרוטוקול זה פועל בהתאם להנחיות של אוניברסיטת ועדת האתיקה במחקר בבעלי חיים קולורדו (IACUC). 1. הכנת מכשירים, מדיה התרבות ריאגנטים אחרים הכן 100 מ"ל mammosphere…

Representative Results

שיטה זו מתארת ​​את התמרה של תאים סרטניים בשד PDX-ניתק באמצעות וקטורים lentiviral כייל גבוה pSIH1-H1-copGFP-T2a-פורו ו הפאג-EF1aL בלוציפראז-UBC-GFP-W. וקטורים אלה מבטאים בסמן פלורסנטי המאפשר לאמוד את היעילות של תמרה במבחנה, מוקדם ככל 24 שעות לאחר ההדבקה (איור 1 …

Discussion

צעדים קריטיים בתוך הפרוטוקול:

שימוש חלקיקי lentiviral גבוהה כייל (> 10 8 TU / ml) הוא צעד חיוני בהצלחתה של פרוטוקול זה, כמו מאפשר שליטה קפדנית של רכב התקשורת במהלך תמרה במבחנה. בעוד מספר שיטות לייצור חלקיקים נגיפיים גבו…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מודים ד"ר דארל Kotton באוניברסיטת בוסטון למתן וקטור הפאג-EF1aL-dsRed-UBC-GFP-W ופרוטוקולים לייצור lentiviral כייל גבוה שימוש במחקרים אלה. עבודה זו מומנה על ידי DOD BCRP W81XWH-11-1-0101 (DMC), ACS IRG # 57-001-53 (DMC), NCI K22CA181250 (DMC) ו R01 CA140985 (CAS) .NCI P30CA046934 מרכז נתמך מענק בתחום ההדמיה vivo תרבות רקמות ליבות באוניברסיטת קולורדו AMC.

Materials

DMEM/F12 (1:1) Hyclone SH30023.01
bFGF BD Biosciences 354060
EGF BD Biosciences 354001
Heparin Sigma H4784
B27 Gibco/Thermo Fisher 17504-44
Anti-fungi-antibiotics Hyclone SV30010
Accumax Innovative Cell Technologies AM-105-500 Digestion Buffer
FBS Atlanta Biologicals S11550
HBSS Red Ca++/Mg++ free Hyclone SH30031.02
Hepes
10X PBS Hyclone SH30258.01
Cultrex Cultrex 3433-005-01 Basement Matrix Extract (BME)
30C shaker NewBrunswick Scientific CO. INC Series 25 Incubator Shaker
70um filters Falcon 7352350
scalpels Fisher 22079690
Clorhexidine disinfectant Durvet  NDC# 30798-624-35
Red blood  cell lysis reagent Sigma R7757
Neuraminidase Sigma N7885-1UN
EpCAM (CD326+) microbeads* Miltenyil Biotec 130-061-101
Lineage cell depletion Kit, mouse* Miltenyil Biotec 130-090-858
MiniMACS Separator  Miltenyil Biotec 130-042-102
Mini MACS Magnetic Stand Miltenyil Biotec 130-042-303
MS Columns Miltenyil Biotec 130-042-201 MS or LS columns can be used, adjust to number of cells.
Illumatool Tunable light system Lightools research Various For in vivo fluorescence imaging
Xenogen IVIS200 imaging device Xenogen Various For in vivo luminiscence imaging
Human Cytokeratin Clone MNF116 Monoclonal antibody DAKO M0821 Pan-cytokeratin 
Epidermal Growth factor receptor antibody Cell signaling 4267S EGFR

Riferimenti

  1. Jin, K., et al. Patient-derived human tumour tissue xenografts in immunodeficient mice: a systematic review. Clin Transl Oncol. 12 (7), 473-480 (2010).
  2. Siolas, D., Hannon, G. J. Patient-derived tumor xenografts: transforming clinical samples into mouse models. Cancer Res. 73 (17), 5315-5319 (2013).
  3. DeRose, Y. S., et al. Tumor grafts derived from women with breast cancer authentically reflect tumor pathology, growth, metastasis and disease outcomes. Nat Med. 17 (11), 1514-1520 (2011).
  4. Kabos, P., et al. Patient-derived luminal breast cancer xenografts retain hormone receptor heterogeneity and help define unique estrogen-dependent gene signatures. Breast cancer research and treatment. 135 (2), 415-432 (2012).
  5. Zhang, X., et al. A renewable tissue resource of phenotypically stable, biologically and ethnically diverse, patient-derived human breast cancer xenograft models. Cancer Res. 73 (15), 4885-4897 (2013).
  6. Lum, D. H., Matsen, C., Welm, A. L., Welm, B. E. Overview of human primary tumorgraft models: comparisons with traditional oncology preclinical models and the clinical relevance and utility of primary tumorgrafts in basic and translational oncology research. Curr Protoc Pharmacol. , (2012).
  7. Marangoni, E., et al. A new model of patient tumor-derived breast cancer xenografts for preclinical assays. Clin Cancer Res. 13 (13), 3989-3998 (2007).
  8. Garrido-Laguna, I., et al. Tumor engraftment in nude mice and enrichment in stroma- related gene pathways predict poor survival and resistance to gemcitabine in patients with pancreatic cancer. Clin Cancer Res. 17 (17), 5793-5800 (2011).
  9. Landis, M. D., Lehmann, B. D., Pietenpol, J. A., Chang, J. C. Patient-derived breast tumor xenografts facilitating personalized cancer therapy. Breast Cancer Res. 15 (1), 201 (2013).
  10. Norum, J. H., Andersen, K., Sorlie, T. Lessons learned from the intrinsic subtypes of breast cancer in the quest for precision therapy. Br J Surg. 101 (8), 925-938 (2014).
  11. Tentler, J. J., et al. Patient-derived tumour xenografts as models for oncology drug development. Nat Rev Clin Oncol. 9 (6), 338-350 (2012).
  12. Zhang, H., et al. Patient-derived xenografts of triple-negative breast cancer reproduce molecular features of patient tumors and respond to mTOR inhibition. Breast Cancer Res. 16 (2), R36 (2014).
  13. Liu, H., et al. Cancer stem cells from human breast tumors are involved in spontaneous metastases in orthotopic mouse models. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (42), 18115-18120 (2010).
  14. Kang, Y. Analysis of cancer stem cell metastasis in xenograft animal models. Methods Mol Biol. 568, 7-19 (2009).
  15. Thibaudeau, L., et al. Mimicking breast cancer-induced bone metastasis in vivo: current transplantation models and advanced humanized strategies. Cancer Metastasis Rev. 33 (2-3), 721-735 (2014).
  16. Francia, G., Cruz-Munoz, W., Man, S., Xu, P., Kerbel, R. S. Mouse models of advanced spontaneous metastasis for experimental therapeutics. Nat Rev Cancer. 11 (2), 135-141 (2011).
  17. Powell, E., et al. p53 deficiency linked to B cell translocation gene 2 (BTG2) loss enhances metastatic potential by promoting tumor growth in primary and metastatic sites in patient-derived xenograft (PDX) models of triple-negative breast cancer. Breast Cancer Res. 18 (1), (2016).
  18. DeRose, Y. S., et al. Patient-derived models of human breast cancer: protocols for in vitro and in vivo applications in tumor biology and translational medicine. Curr Protoc Pharmacol. , (2013).
  19. Wang, X., McManus, M. Lentivirus production. J Vis Exp. (32), (2009).
  20. Indumathi, S., et al. Lineage depletion of stromal vascular fractions isolated from human adipose tissue: a novel approach towards cell enrichment technology. Cytotechnology. 66 (2), 219-228 (2014).
  21. Hines, W. C., Yaswen, P., Bissell, M. J. Modelling breast cancer requires identification and correction of a critical cell lineage-dependent transduction bias. Nat Commun. 6, 6927 (2015).
  22. Campbell, J. P., Merkel, A. R., Masood-Campbell, S. K., Elefteriou, F., Sterling, J. A. Models of bone metastasis. J Vis Exp. (67), e4260 (2012).
  23. Kang, Y. Imaging TGFbeta Signaling in Mouse Models of Cancer Metastasis. Methods Mol Biol. 1344, 219-232 (2016).
  24. Jenkins, D. E., Hornig, Y. S., Oei, Y., Dusich, J., Purchio, T. Bioluminescent human breast cancer cell lines that permit rapid and sensitive in vivo detection of mammary tumors and multiple metastases in immune deficient mice. Breast Cancer Res. 7 (4), R444-R454 (2005).
  25. Lawson, D. A., et al. Single-cell analysis reveals a stem-cell program in human metastatic breast cancer cells. Nature. 526 (7571), 131-135 (2015).
check_url/it/54944?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Hanna, C., Kwok, L., Finlay-Schultz, J., Sartorius, C. A., Cittelly, D. M. Labeling of Breast Cancer Patient-derived Xenografts with Traceable Reporters for Tumor Growth and Metastasis Studies. J. Vis. Exp. (117), e54944, doi:10.3791/54944 (2016).

View Video