Summary

Xenopus ovociti: Metodi ottimizzate per microiniezione, la rimozione di strati di cellule follicolari e cambiamenti soluzione veloce in esperimenti di elettrofisiologia

Published: December 31, 2016
doi:

Summary

Optimized procedures for the isolation of single follicles, cytoplasmic RNA microinjections, the removal of surrounding cell layers, and protein expression in Xenopus oocytes are described. In addition, a simple method for fast solution changes in electrophysiological experiments with ligand-gated ion channels is presented.

Abstract

L'oocita di Xenopus come un sistema di espressione eterologa di proteine, è stato descritto da Gurdon et al. 1 ed è stato ampiamente utilizzato dalla sua scoperta (Riferimenti 2 – 3, e riferimenti ivi). Una caratteristica che rende l'ovocita attraente per l'espressione canale estero è la scarsa abbondanza di canali ionici endogeni 4. Questo sistema di espressione è dimostrato utile per la caratterizzazione di molte proteine, tra i quali canali ionici ligando-dipendenti.

L'espressione dei recettori GABA in oociti di Xenopus e la loro caratterizzazione funzionale è descritto qui, compreso l'isolamento degli ovociti, microiniezioni con cRNA, la rimozione di strati di cellule follicolari e soluzione cambia veloci esperimenti elettrofisiologici. Le procedure sono state ottimizzate in questo laboratorio 5,6 e si discostano da quelli utilizzati di routine 7-9. Tradizionalmente, gli ovociti denudati vengono preparaticon un trattamento prolungato collagenasi di lobi ovariche a temperatura ambiente, e questi ovociti denudati sono microiniezione con mRNA. Utilizzando i metodi ottimizzati, diverse proteine di membrana sono state espresse e studiato con questo sistema, come ricombinanti recettori GABA A 10-12, canali del cloro ricombinanti umani 13, canali di potassio trypanosome 14, e un trasportatore myo-inositolo 15, 16.

I metodi qui descritti possono essere applicati alla espressione di qualsiasi proteina di scelta in oociti di Xenopus, e la variazione rapida soluzione possono essere utilizzati per studiare altri canali ionici ligando-dipendenti.

Introduction

Ovociti di Xenopus sono ampiamente utilizzati come un sistema di espressione (Riferimenti 2 – 3, e riferimenti ivi). Essi sono in grado di assemblare correttamente e integrare proteine ​​multisubunit funzionalmente attivi nelle loro membrane plasmatiche. Utilizzando questo sistema, è possibile indagare funzionalmente proteine ​​di membrana da solo o in combinazione con altre proteine, per studiare le proprietà dei mutanti, chimerici, o proteine ​​concatenati, e allo schermo potenziali farmaci.

Vantaggi di usare ovociti rispetto ad altri sistemi di espressione eterologhi includono la semplice manipolazione delle cellule giganti, l'alta percentuale di cellule che esprimono informazioni genetiche estranee, il semplice controllo dell'ambiente dell'ovocita mediante bagno di perfusione, e il controllo del potenziale di membrana .

L'inconveniente di questo sistema di espressione è la variazione stagionale osservato in molti laboratori 17-20. La ragione di questa variazioneè tutt'altro che chiaro. Inoltre, la qualità degli ovociti è spesso osservato variare fortemente. I metodi tradizionali 7-9 hanno incluso l'isolamento di lobi dell'ovaia, l'esposizione dei lobi ovariche di collagenasi per alcune ore, la selezione di ovociti denudati, e la microiniezione ovocita. Qui, una serie di alternative, procedure veloci sono riferito che ci hanno permesso di lavorare con questo sistema di espressione per più di 30 anni senza variazioni stagionali e piccole variazioni nella qualità degli ovociti.

I metodi modificati e migliorati qui descritte per l'isolamento di ovociti, microiniezione con cRNA, e la rimozione di strati di cellule follicolari possono essere usate per l'espressione di qualsiasi proteina di scelta nel oocita di Xenopus. Il metodo molto semplice per modifiche soluzione veloce del mezzo intorno l'ovocita può essere applicato allo studio di qualsiasi recettore ionotropico e dei vettori.

Protocol

Gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dal comitato locale del cantone di Berna Kantonstierarzt, Kantonaler Veterinärdienst Berna (BE85 / 15). 1. Preparazione di Xenopus ovociti Mantenere rane (Xenopus laevis) su un 12 h / 12 h luce / buio ciclo in acqua che viene rigorosamente mantenuta a 20 ° C. Rimuovere i lobi delle ovaie da rane femmina 9. NOTA: La rimozione dei lobi è uno stimolo per la rigenerazione, e spesso la q…

Representative Results

Oociti di Xenopus sono stati individuati meccanicamente utilizzando un'ansa di platino (Figura 1). Gli ovociti sono stati microiniettati con mRNA codificante per il GABA A subunità alfa 4, ß 2, δ, 0.5: 0.5: 2.5 fmol / ovocita (Figura 2). Dopo 4 d, strati di cellule follicolari sono stati rimossi (figura 3). Gli oociti sono stati bloccati tensione a -80 mV e esposte a concentrazioni crescen…

Discussion

I metodi descritti in questo articolo si discostano da quelli utilizzati tradizionalmente 7-9. È standard per esporre i lobi delle ovaie ad un 1 a 2 h trattamento collagenasi 8; isolare intatti, ovociti denudati; e li inietta con mRNA utilizzando dispositivi di iniezione commerciali. Questa procedura classica presenta i seguenti inconvenienti: 1) Gli oociti sono suscettibili di essere danneggiato dalla lunga esposizione ad alte concentrazioni di collagenasi. 2) Gli ovociti denudati instabili devon…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Swiss National Science Foundation grant 315230_156929/1. M.C.M. is a recipient of a fellowship (Beca Chile Postdoctorado from CONICYT, Ministerio de Educacion, Chile).

Materials

NaCl Sigma 71380
KCl Sigma P-9541
NaHCO3 Sigma S6014
MgSO4  Sigma M-1880
CaCl2  Sigma 223560
Ca(NO3)2  Sigma C1396
HEPES Sigma H3375
Penicilin/streptomycin Gibco 15140-148 100 μg penicillin/ml and 100 μg streptomycin/ml
Platinum wire loop home-made
Micropipette puller Zeitz-Instruments GmBH DMZ
Hamilton syringe  Hamilton 80300 10 μl, Type 701N
Thick walled polytetrafluoroethylene tubing Labmarket GmBH 1.0 mm OD 
Paraffin oil Sigma 18512
Nylon net, gauge 0.8 mm  ZBF Züricher Beuteltuchfabrik AG
Borosilicate glass tube  Corning 99445-12 PYREX
Collagenase NB Standard Grade SERVA 17454
Trypsin inhibitor type I-S Sigma T-9003
EGTA Sigma E3389
Glass capillary Jencons (Scientific ) LTD. H15/10 1.35 ID mm (for perfusion), alternative company: Harvard Apparatus Limited
Borosilicate glass capillary Harvard Apparatus Limited 30-0019 1.0 OD X  0.58 ID X 100 Length mm (for microinjection) 
Borosilicate glass capillary  Harvard Apparatus Limited 30-0044 1.2 OD X 0.69 ID X 100 Length mm (for two-electrode voltage clamp)
γ-Aminobutyric acid (GABA) Sigma A2129
3α,21-Dihydroxy-5α-pregnan-20-one (THDOC) Sigma P2016
grill motor Faulhaber  DC micromotor Type 2230 with gear Type 22/2
micrometer screw Kiener-Wittlin 10400 TESA, AR 02.11201
Sterile plastic transfer pipettes Saint-Amand  Mfg. 222-20S

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Maldifassi, M. C., Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Xenopus Oocytes: Optimized Methods for Microinjection, Removal of Follicular Cell Layers, and Fast Solution Changes in Electrophysiological Experiments. J. Vis. Exp. (118), e55034, doi:10.3791/55034 (2016).

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