Summary

Xenopus Oócitos: Métodos otimizados para microinjeção, remoção de camadas de células foliculares e rápidas mudanças Solução em experimentos eletrofisiológicos

Published: December 31, 2016
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Summary

Optimized procedures for the isolation of single follicles, cytoplasmic RNA microinjections, the removal of surrounding cell layers, and protein expression in Xenopus oocytes are described. In addition, a simple method for fast solution changes in electrophysiological experiments with ligand-gated ion channels is presented.

Abstract

A oócitos de Xenopus como um sistema de expressão heteróloga de proteínas, foi primeiramente descrito por Gurdon et ai. 1 e tem sido amplamente utilizadas desde a sua descoberta (Referências: 2 – 3, e suas referências). Uma característica que faz com que o oócito atraente para expressão do canal estrangeira é o pobre abundância de canais de iões endógenos 4. Este sistema de expressão tem se mostrado útil para a caracterização de muitas proteínas, entre eles, canais iónicos dependentes de ligandos.

A expressão de receptores de GABAA em oócitos de Xenopus e sua caracterização funcional é aqui descrita, incluindo o isolamento de oócitos, micro-injecções com ARNc, a remoção das camadas de células foliculares, e alterações solução rápida em experiências electrofisiológicas. Os procedimentos foram otimizados neste laboratório 5,6 e desviar os utilizados rotineiramente 7-9. Tradicionalmente, os oócitos são desnudados preparadocom um tratamento prolongado colagenase de lóbulos de ovário à TA, e estes são desnudados oócitos microinjectados com ARNm. Usando os métodos optimizados, proteínas de membrana diferentes foram expressos e estudada com este sistema, tais como os receptores recombinantes GABA A, os canais de cloreto 10-12 recombinantes humanos de tripanosomas, 13 canais de potássio 14, e um transportador 15 de mio-inositol, 16.

Os métodos descritos aqui podem ser aplicados para a expressão de qualquer proteína de escolha em oócitos de Xenopus, e a mudança rápida solução pode ser utilizada para estudar outros canais iónicos dependentes de ligandos.

Introduction

Oócitos de Xenopus são amplamente utilizados como um sistema de expressão (Referências: 2 – 3, e suas referências). Eles são capazes de montar correctamente e incorporar proteínas de múltiplas subunidades funcionalmente activos nas suas membranas plasmáticas. Usando este sistema, é possível investigar funcionalmente proteínas da membrana por si só ou em combinação com outras proteínas, a fim de estudar as propriedades de mutantes, ou proteínas quiméricas concatenados, e para pesquisar potenciais drogas.

Vantagens da utilização de oócitos em relação a outros sistemas de expressão heterólogos incluem o manuseamento simples das células gigantes, a elevada proporção de células que expressam a informação genética estrangeira, o controlo simples do ambiente do oócito por meio de perfusão de banho, e o controlo do potencial de membrana .

O inconveniente deste sistema de expressão é a variação sazonal observado em muitos laboratórios 17-20. A razão para esta variaçãoestá longe de ser clara. Além disso, a qualidade dos oócitos é frequentemente observado de variar fortemente. Os métodos tradicionais 7-9 incluíram o isolamento de lóbulos de ovário, a exposição dos lóbulos de ovário de colagenase para algumas horas, a selecção de oócitos desnudados, e a microinjecção de oócitos. Aqui, uma série de procedimentos alternativos, rápidos são informou que nos permitiram trabalhar com este sistema de expressão por mais de 30 anos sem variação sazonal e pouca variação na qualidade do oócito.

Os métodos melhorados e modificados descritos aqui para o isolamento de oócitos, microinjecção com ARNc, e a remoção de camadas de células foliculares podem ser utilizados para a expressão de qualquer proteína de escolha no oócito de Xenopus. O método muito simples para modificações solução rápida do meio em volta do oócito pode ser aplicada ao estudo de qualquer receptor ionotrópico e dos transportadores.

Protocol

Experiências com animais foram aprovados pelo comitê local do cantão de Berna Kantonstierarzt, Kantonaler Veterinärdienst Bern (BE85 / 15). 1. Preparação de Xenopus Os oócitos Manter rãs (Xenopus laevis) em uma de 12 h / 12 h de luz / escuro no ciclo de água, que é estritamente mantida a 20 ° C. Retire os lobos dos ovários de rãs do sexo feminino 9. NOTA: A remoção dos lóbulos é um estímulo para a regeneração, e mui…

Representative Results

Oócitos de Xenopus foram mecanicamente escolhido usando uma ansa de platina (Figura 1). Os oócitos foram micro-injectados com ARNm que codifica para as subunidades GABA A do receptor a 4, P 2, δ, 0,5: 0,5: 2,5 fmol / oócito (Figura 2). Após 4 d, camadas de células foliculares foram removidos (Figura 3). Os oócitos foram voltagem fixada em -80 mV e expostos a concentrações cres…

Discussion

Os métodos descritos neste artigo desviar os utilizados tradicionalmente 7-9. É padrão para expor os lóbulos do ovário para uma 1 a 2 h colagenase tratamento 8; isolar intactas, oócitos desnudados; e injectar-los com mRNA usando dispositivos de injecção comerciais. Este procedimento clássico tem os seguintes inconvenientes: 1) Os oócitos são susceptíveis de ser danificadas pela longa exposição a altas concentrações de colagenase. 2) Os oócitos desnudados instáveis ​​deve ser a…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Swiss National Science Foundation grant 315230_156929/1. M.C.M. is a recipient of a fellowship (Beca Chile Postdoctorado from CONICYT, Ministerio de Educacion, Chile).

Materials

NaCl Sigma 71380
KCl Sigma P-9541
NaHCO3 Sigma S6014
MgSO4  Sigma M-1880
CaCl2  Sigma 223560
Ca(NO3)2  Sigma C1396
HEPES Sigma H3375
Penicilin/streptomycin Gibco 15140-148 100 μg penicillin/ml and 100 μg streptomycin/ml
Platinum wire loop home-made
Micropipette puller Zeitz-Instruments GmBH DMZ
Hamilton syringe  Hamilton 80300 10 μl, Type 701N
Thick walled polytetrafluoroethylene tubing Labmarket GmBH 1.0 mm OD 
Paraffin oil Sigma 18512
Nylon net, gauge 0.8 mm  ZBF Züricher Beuteltuchfabrik AG
Borosilicate glass tube  Corning 99445-12 PYREX
Collagenase NB Standard Grade SERVA 17454
Trypsin inhibitor type I-S Sigma T-9003
EGTA Sigma E3389
Glass capillary Jencons (Scientific ) LTD. H15/10 1.35 ID mm (for perfusion), alternative company: Harvard Apparatus Limited
Borosilicate glass capillary Harvard Apparatus Limited 30-0019 1.0 OD X  0.58 ID X 100 Length mm (for microinjection) 
Borosilicate glass capillary  Harvard Apparatus Limited 30-0044 1.2 OD X 0.69 ID X 100 Length mm (for two-electrode voltage clamp)
γ-Aminobutyric acid (GABA) Sigma A2129
3α,21-Dihydroxy-5α-pregnan-20-one (THDOC) Sigma P2016
grill motor Faulhaber  DC micromotor Type 2230 with gear Type 22/2
micrometer screw Kiener-Wittlin 10400 TESA, AR 02.11201
Sterile plastic transfer pipettes Saint-Amand  Mfg. 222-20S

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Maldifassi, M. C., Wongsamitkul, N., Baur, R., Sigel, E. Xenopus Oocytes: Optimized Methods for Microinjection, Removal of Follicular Cell Layers, and Fast Solution Changes in Electrophysiological Experiments. J. Vis. Exp. (118), e55034, doi:10.3791/55034 (2016).

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